Methodenartikel

Primärer Ergebnisbeurteilung in einem Schwein Modell eines akuten Myokardinfarkts

DOI:

10.3791/54021

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14. Oktober 2016

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Experimental Cardiology, University Medical Center Utrecht, 2Department of Cardiology, University Medical Center Utrecht, 3Department of Clinical Chemistry and Hematology, University Medical Center Utrecht, 4Interuniversity Cardiology Institutes of the Netherlands (ICIN)

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Zuverlässige und genaue Erfolgskontrolle ist der Schlüssel für die Übersetzung der präklinischen Therapien in die klinische Behandlung. Das aktuelle Dokument beschreibt, wie in einem Schweine akutem Myokardinfarkt Modell drei klinisch relevanten primären Outcome-Parameter der Herzleistung und Schaden zu beurteilen.

Zusammenfassung

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Die Mortalität nach akutem Myokardinfarkt ist nach wie vor beträchtlich und mit signifikanter Morbidität, wie Herzinsuffizienz, verbunden. Neuartige Therapeutika sind daher erforderlich, um Herzschäden einzudämmen, das Überleben zu fördern und die Krankheitslast durch Herzinsuffizienz zu verringern. Großtierversuche sind ein wesentlicher Bestandteil des translationalen Prozesses von experimentellen zu klinischen Therapien. Um die klinische Translation zu optimieren, sind robuste und repräsentative Ergebnismessungen obligatorisch. Das vorliegende Manuskript zielt darauf ab, diesem Bedarf gerecht zu werden, indem es die Bewertung von drei klinisch relevanten Ergebnismodalitäten in einem Modell für akuten Myokardinfarkt (AMI) bei Schweinen beschreibt: die Infarktgröße in Bezug auf die Färbung des Risikobereichs (IS/AAR), die 3-dimensionale transösophageale Echokardiographie (TEE) und aufnahmebasierte Druck-Volumen-Schleifen (PV). Die Infarktgröße ist die wichtigste Determinante für den Übergang von AMI zu Herzinsuffizienz und kann durch IS/AAR-Färbung quantifiziert werden. Die Echokardiographie ist ein zuverlässiges und robustes Instrument zur Beurteilung der globalen und regionalen Herzfunktion in der klinischen Kardiologie. Hier wird eine Methode zur dreidimensionalen transösophagealen Echokardiographie (3D-TEE) bei Schweinen zur Verfügung gestellt. Umfassende Einblicke in die kardiale Leistungsfähigkeit können durch aufnahmebasierte Druck-Volumen-Schleifen (PV) gewonnen werden, einschließlich intrinsischer Parameter der Myokardfunktion, die unabhängig von der Vor- und Nachlast sind. In Kombination mit einem klinisch durchführbaren experimentellen Studienprotokoll liefern diese Ergebnismessungen den Forschern wesentliche Informationen, um festzustellen, ob neuartige therapeutische Strategien vielversprechende Ziele für zukünftige Tests in klinischen Studien liefern könnten.

Einleitung

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Herzinsuffizienz mit verminderter Ejektionsfraktion (HFrEF) entfallen rund 50% aller Herzversagen Fällen betreffen schätzungsweise 1 bis 2% der Menschen in der westlichen Welt ein. Die häufigste Ursache ist akutem Myokardinfarkt (AMI). Als akute Mortalität nach AMI deutlich aufgrund der erhöhten Bewusstsein und verbesserte Behandlungsmöglichkeiten zurückgegangen ist, Schwerpunkt hat zu seiner chronischen Folgen verschoben; der prominenteste Wesen HFrEF 2,3. Zusammen mit Gesundheitskosten 4 steigt, hebt die wachsende Epidemie von Herzinsuffizienz der Bedarf nach neuen Diagnostik und Therapien, die in einem hochTranslationsSchweineModell nachteiliger Remodeling nach AMI untersucht werden können , wie zuvor beschrieben 5.

Beide, Determinanten (zB Infarktgröße) und Funktionsprüfungen (zB Echokardiographie) der unerwünschten Umbau werden häufig für Wirksamkeitstests neuer Therapeutika verwendet werden, was die Notwendigkeit einer reliable und relativ kostengünstige Verfahren. Das Ziel des aktuellen Papiers ist es, diesen Bedarf zu begegnen, indem wichtige und verlässliche Ergebnisse Maßnahmen zur Wirksamkeitsprüfung in einem Schweinemodell des akuten Myokardinfarkts einzuführen. Dazu gehören die Infarktgröße (IS) in Bezug auf Risikobereich (AAR), 3D-transösophageale Echokardiographie (3D-TEE) und detaillierte Aufnahme-basierten Druck-Volumen (PV) Schleifenerfassung.

Die Infarktgröße ist der wichtigste Faktor für die negativen Umbau und das Überleben nach AMI 6. Obwohl rechtzeitige Reperfusion von ischämischem Myokard kann reversibel verletzt Kardiomyozyten retten und die Infarktgröße zu begrenzen, Reperfusion selbst verursacht zusätzlichen Schaden durch die Erzeugung von oxidativem Stress und eine unverhältnismäßig hohe Entzündungsreaktion (Ischämie-Reperfusionsschaden (IRI)) 7. Daher wurde IRI als ein vielversprechendes therapeutisches Ziel identifiziert. Die Fähigkeit neuartiger Therapeutika Infarktgröße zu verringern, wird durch die Ermittlung der Infarktgröße im Verhältnis quantifiziertauf dem Gebiet gefährdet (AAR). AAR Quantifizierung ist obligatorisch für interindividuelle Variabilität bei der koronaren Anatomie von Tiermodellen zu korrigieren, als ein größerer AAR auf eine größere absolute Infarktgröße führt. Da die Infarktgröße direkt auf die Herzleistung und Kontraktilität verwandt ist, kann in AAR Variationen studieren Maßnahmen Ergebnis unabhängig von Modalitäten 8 Behandlung beeinflussen.

Dreidimensionale transösophageale Echokardiographie (3D-TEE) ist eine sichere, zuverlässige und, am wichtigsten, klinisch anwendbare kostengünstige Methode die Herzfunktion nicht-invasiv zu messen. Während transthorakale Echokardiographie (TTE) Bilder in 2D parasternal Lang- und Kurz Achse begrenzt sind Ansichten bei Schweinen 9, 3D-TEE kann eine vollständige 3-dimensionale Bilder des linken Ventrikels zu erhalten verwendet werden. Daher erfordert es keine mathematische Annäherungen der linksventrikulären (LV) Volumes wie modifizierten Simpson-Regel 10. Letztere greift zu kurz korrekt Abschätzen LV Volumina nach Remodeling LV aufgrund des Fehlens von zylindrischer Geometrie 11. Außerdem ist die 3D-TEE vorzuziehen epikardiale Echokardiographie , da es nicht chirurgische Eingriffe erfordert, die beobachtet wurden , in dem vorliegenden Modell 12 kardioprotektive Wirkungen auszuüben. Obwohl die Verwendung von 2D-TEE für die Beurteilung der Herzmuskelfunktion , bevor 13,14 beschrieben worden ist , in Bezug auf Beschränkungen Ventrikelgeometrie sind ähnlich denen , beobachtet in 2D-TTE und hängen von dem Ausmaß der LV Umbau. Somit werden, je größer der Infarkt (und damit desto höher die Wahrscheinlichkeit von Herzversagen), desto wahrscheinlicher 2D Messungen fehlerhaft durch falsche geometrische Annahmen und desto höher ist die Notwendigkeit für die 3D-Techniken.

Trotzdem sind die meisten Bildgebungsverfahren beschränkt in ihrer Fähigkeit intrinsischen funktionalen Eigenschaften des Myokards zu beurteilen. PV-Schleifen solche zusätzliche relevante Informationen zur Verfügung stellen und deren Erwerb ist daherim Detail unten beschrieben.

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Protokoll

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Alle Tierversuche wurden von der Ethikkommission für Tierversuche der University Medical Center Utrecht (Utrecht, Niederlande) und entsprechen dem "Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren" zugelassen.

HINWEIS: Das Protokoll zur Durchführung einer geschlossenen Brust Ballonokklusion nicht Teil des aktuellen Manuskript ist und an anderer Stelle ausführlich 5 beschrieben. Kurz gesagt, Schweinen (60-70 kg) werden bis 75 min transluminaler Ballonokklusion des Mittelteils der linken vorderen absteigenden Arterie (LAD) unterzogen.

Beide, dreidimensionale transösophageale Echokardiographie (3D-TEE) und Druck-Volumen (PV) Schleifenmessungen können zu Beginn der Studie, kurzfristige und langfristigen Follow-up durchgeführt werden. Beachten Sie, dass diese Messungen unzuverlässig in den ersten Stunden nach Myokardinfarkt gelten aufgrund häufiger Arrhythmien in dieser Phase. Infarktgröße (IS) und die Fläche-at-Risk (AAR) Messungen sind preferably beurteilt bei kurzfristigen Follow-up (24-72 h) 15,16, da Änderungen in microvasculature und sekundären Myokardnarbe Ausdünnung in weniger zuverlässige Ergebnisse gipfeln. Die Infarktgröße Färbung wird 2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid unter Verwendung von (TTC) (ACHTUNG, reizend), die in hohem Maße reproduzierbar und relativ kostengünstig angesehen wird. TTC ist ein weißes Pulver, das farblos in Kochsalzlösung auflöst. Bei Kontakt mit verschiedenen Dehydrogenasen, wird sie in einem Ziegelstein rote Farbe umgewandelt. Dadurch unterscheidet es zwischen tragfähige (rot) und toten Myokardgewebe (weiß). Für einen Überblick über sowohl invasive und nicht-invasive Infarktgröße Bestimmung werden die Leser zu einer umfassenden Überprüfung zu diesem Thema 17 gerichtet.

Abbildung 1 zeigt die Timeline einschließlich Anästhesie, OP - Vorbereitung und primäre Endpunkt Messungen in dieser Studie verwendet.

1. Medikamente und Anästhesie

  1. Stellen Sie sicher, dass das Tier nicht isst odermindestens 5 Stunden vor dem Eingriff trinken für. Vorbehandlung, Anästhesie und postoperative Schmerzbehandlung Protokolle wurden an anderer Stelle ausführlich 5 beschrieben.
  2. Kurz gesagt, vor dem Tag der Operation a buprenorfine Patch (5 & mgr; g / h) wird auf die Haut aufgetragen, die aktiv ist für sieben Tage postoperative Schmerzen zu begrenzen. Am Tag der Operation, sedieren Schweine durch intramuskuläre Injektion von 0,4 mg / kg Midazolam, 10 mg / kg Ketamin und 0,014 mg / kg Atropin. Warten Sie ca. 10 bis 15 min. Legen Sie eine 18 G Kanüle in einem der Ohrvenen und zu verwalten, 5 mg / kg Natrium Thiopental zu induzieren.
  3. Intubate das Schwein einen Endotrachealtubus (Größe 8,5 für Schweine von 60 - 70 kg) verwendet wird. Falls erforderlich, Ballon-Beatmung (Frequenz 12 / min) und transportieren das Schwein in den Operationssaal.
  4. Bei der Ankunft im Operationssaal, beginnen mechanische Überdruckbeatmung mit FiO 2 0,50, 10 ml / kg Atemvolumen und einer Frequenz von 12 / min kontinuierlich mitKapnographie Aufnahme.
  5. Beginnen ausgewogene Anästhesie durch kontinuierliche intravenöse Infusion einer Kombination von Midazolam (0,5 mg / kg / h), Sufentanil (2,5 & mgr; g / kg / h) und Pancuronium (0,1 mg / kg / h).
  6. Bestätigen Anästhesie durch den Kornealreflex Testen und Überwachen der Atmung (zB Spontanatmung in Verbindung mit der mechanischen Beatmung zeigt unvollständige Anästhesie). Verwenden Sie Tierarzt Salbe auf die Augen Trockenheit zu verhindern, während das Tier unter Narkose ist.

2. 3D transösophagealen Echokardiographie (TEE)

  1. Damit für Herzfrequenzmessung und Datenerfassung, schließen Sie das Tier zu der 5 führt EKG auf der Echokardiographie Maschine.
  2. Legen Sie das Tier in der rechten Seitenlage. Stellen Sie sicher, dass die Sonde gerade ist und flexibel an der Spitze durch das Betätigungsstück entriegeln.
  3. Öffnen Sie den Mund des Schweins und vorsichtig die Echo-Sonde in die Speiseröhre ein. Verwenden Sie bei Bedarf ein Laryngoskop für visualisation. Seien Sie vorsichtig bei der normalen anatomischen Schiundtasche enden zu vermeiden, die an ein 18 Zenker - Divertikel.
  4. Führen Sie die Sonde für 50 - 60 cm (Maß von der Spitze der Schnauze). Langsam drehen , um die Sonde und biegen den Kopf nach einer linken anterolateralen Position das Herz (2A - B) zu visualisieren. Stellen Sie sicher, dass alle Wände deutlich sichtbar sind.
  5. Verwenden Sie die "3D voller Lautstärke" Option auf dem Display der Echokardiographie Maschine zwei senkrechten Bilder des linken Ventrikels anzuzeigen , wie in 2C gezeigt -. D dann die Sektorbreite zu maximieren , die durch die Auswahl von "FV Opt Volume" erworben wird. Pause Belüftung durch vorübergehend mechanische Belüftung und drücken Sie "Acquire" Abschalten auf volle Lautstärke-Messungen zu erhalten.
  6. Nach Echoerfassung, stellen Sie sicher, dass die Spitze durch Entriegeln des Betätigungsstück flexibel ist. Dann langsam um die Sonde aus dem Tier zu entfernen.
    HINWEIS: Lassen Sie keine the Tier unbeaufsichtigt, bis es genügend Bewusstsein zu halten Brustlage wiedergewonnen hat. Nicht ein Tier zurück, die Operation an die Firma von anderen Tieren unterzogen wurde, bis sie vollständig erholt.
  7. Führen Sie die Offline - Analyse mit validierten Software wie zuvor 19 beschrieben.

3. Admittance-basierten Druck-Volumen-Loop-Acquisition

  1. Einweichen die Sensorspitzen des 7 F Tetra-polar Eintritt Katheter in 0,9% Kochsalzlösung (Raumtemperatur bis 37 ° C) für mindestens 20 Minuten ausreichende Flüssigkeitszufuhr und eine minimale Basisdruck Drift während des Versuchs 20 zu gewährleisten.
  2. Medikamente verabreichen und Anästhesie, wie in Kapitel 1 beschrieben.
  3. Führen chirurgische Vorbereitung und erhalten Gefäßzugang wie zuvor 5 beschrieben.
    1. Kurz gesagt, rasieren und den Hals reinigen. Desinfizieren Sie den OP-Bereich mit Jod 2% und decken die unsterile Teile der Schweine mit sterilen OP-Tüchern.
    2. Macheneine mediale Inzision in den Hals der A. carotis und V. jugularis interna zu belichten. Legen Sie eine 8 F Hülle in die Arteria carotis und eine 9 F Hülle in die Halsvene.
  4. Legen Sie eine Swan-Ganz (SG) Katheter durch die 9 F Hülle in die Halsvene und zwängen sie in einer kleinen Lungenarterie durch den Ballon an der Spitze des Katheters aufgeblasen wird. Nach ausreichender Platzierung im peripheren Teil der Lunge, zu entleeren, den Ballon. Schließen Sie die SG mit einem externen Herzausgabegerät.
  5. Bringen Sie einen 20-ml-Spritze 0,9% steriler Kochsalzlösung in die Injektionsöffnung enthält, die mit den meisten proximalen Einmündung in das Lumen verbindet. Messung der Herzleistung durch rasche Infusion von 5 ml 0,9% Kochsalzlösung (Raumtemperatur) und der Herzfrequenz erhalten Hubvolumen (SV) zu berechnen. Wiederholen Sie diesen Vorgang dreimal und Berechnung der durchschnittlichen SV.
    HINWEIS: Die Herzleistung ist (automatisch) berechnet, um die Stewart-Hamilton Thermodilution Gleichung und basiert auf Temperaturänderungen in derLungenarterie bei der Infusion von Kochsalzlösung Raumtemperatur 21.
  6. Entfernen Sie den SG-Katheter. Legen Sie einen 8 F Fogarty Katheter durch die 9 F Hülle in die Halsvene und die Position in der unteren Hohlvene.
  7. Kalibrieren Sie das Drucksignal des PV - Loop - Katheter mit Hilfe der "Kurs" und "Fein" Taste, während die Spitze in 0,9% Salzlösung bleibt. Danach erfolgt die Eingabe der gemessenen SV in das System.
  8. Schieben Sie die PV-Loop Katheters durch die 8 F Hülle in der Arteria carotis und in der Mitte die Spitze im linken Ventrikel (LV) unter Durchleuchtung.
  9. Wählen Sie die größte angemessen platziert Segment durch das rohe Leitwert Signal gegen das Drucksignal Plotten. Stellen Sie sicher, dass die Druck Leitwert Schleifen von Rechteckform sind. Phase-Signal wird erwartet, dass eine Sinus-Kurve mit Werten zwischen 3 und 5 Grad zu zeigen. Pause Belüftung und führen Sie scannen, um eine Basislinie Leitwert zu Volume konvertieren.
    1. Übernehmen Sie die Basisdaten von"Weiter" drücken , wenn die Signale sind stabil (keine Arrhythmien), Herzfrequenz ist gleich EKG oder Druck abgeleiteten Herzfrequenz und endsystolischer (ES) / enddiastolischen (ED) Leitfähigkeit werden durch das System 20 angemessen erfasst werden .
      ANMERKUNG: Diese kann durch Auftragen der rohen Leitfähigkeitssignal gegenüber dem Drucksignal und Vergleichen ES / ED Leitwerte von der Basislinie auf Echtzeit-Leitwert abtasten abgeleitet prüft werden. Wenn einer der oben genannten Anforderungen ist das Verfahren nicht erfüllt sind, wiederholen.
  10. Erwerben Basisdruck-Volumen-Schleifen um 10 Aufnahme - 12 aufeinanderfolgende Schläge während Apnoe durch Belüftung pausieren.
  11. Pumpen Sie den Fogarty Katheter unter Röntgendurchleuchtung verringert die Vorspannung und 10 aufnehmen - 12 aufeinanderfolgende Schläge, wie oben beschrieben. Achten Sie darauf, den systolischen Blutdruck bleibt> 60 mmHg und keine Arrhythmien stören die Messungen.
  12. Entfernen Sie die Fogarty und PV-Loop-Katheter. Halten Sie pressur Aufnahme arteriellee vor und während der Entfernung des Katheters PV Schleife für Druckdrift zu ermöglichen Korrektur (dh ex vivo vor und nach dem Verfahrensdifferenz Basisdruck).
    HINWEIS: Lassen Sie das Tier unbeaufsichtigt, bis es genügend Bewusstsein wiedererlangt hat Brustlage zu halten. Nicht ein Tier zurück, die Operation an die Firma von anderen Tieren unterzogen wurde, bis sie vollständig erholt.
  13. Führen Sie die Offline - Analyse von geometrischen Messungen und Funktionsparameter mit validierten Software 22.

4. Risikobereich (AAR) und Infarktgröße (IS) Quantifizierung

  1. Man löst 1,00 g Evans Blau (VORSICHT 23, giftig) in 50 ml 0,9% Kochsalzlösung, füllen zwei 50 ml Luer - Lock - Spritzen mit 20 ml und 30 ml 2% Evans - Blau - Lösung jeweils und halten bei Raumtemperatur.
    HINWEIS: Die Arbeit in einer Abzugshaube und eine Staubmaske tragen Exposition gegenüber gefährlichen Stäuben und Handschuhe und Schutzbrille zu begrenzen Kontakt fr zu verhindernom Haut und Augen.
  2. Unter ähnlichen Vorsichtsmaßnahmen, lösen 1% 2,3,5-Triphenyl-Tetrazoliumchlorid (TTC) (ACHTUNG, reizend) in 37 ° C 0,9% Kochsalzlösung und halten bei 37 ° C.
  3. Chirurgisch bereiten das Tier vaskulären Zugang zu beiden Halsschlagadern zu erhalten. Durchführen einer Sternotomie zur direkten Visualisierung der Wirkung von in vivo Evans Blau Infusions 5 zu ermöglichen.
  4. Legen Sie eine 7 F und eine 8 F Einführschleuse in der jeweiligen A. carotis. Alternativ setzen Sie beide Einführschleusen in einer einzigen Arteria carotis oder für eine der beiden Führungskatheter eine der Oberschenkelarterien verwenden.
  5. Schließen Sie zwei Standard-Y-Anschlüsse zu einem 7 F JL4 und einem 8 F JL4 Führungskatheter sind. Für einen Oberschenkel Ansatz, eine JR4 für die rechte Koronararterie (RCA) und ein JL4 für die linke Haupt Koronararterie (LCMA) verwenden. Schließen Sie eine zusätzliche Dreiwegehahn mit 10 cm Verlängerung für beide Y-Anschlüsse.
  6. Verwalten 100 IE / kg Heparin. Positionieren Sie den 8 F JL4 Führung catheter in dem Ostium der LMCA über einen von zwei Einführungshülsen.
  7. Mit Hilfe eines 0.014 "Führungsdraht, vorab eine Koronar-Dilatationskatheter durch den LCMA Katheter und positionieren Sie den Ballon an der Stelle, wo Koronarokklusion während MI Induktion durchgeführt wurde. Noch nicht aufblasen.
  8. Positionieren Sie den zweiten 8 F JL4 Führungskatheter in das Ostium des RCA über die zweite Einführungshülse.
  9. Führen Sie eine Koronarangiographie (CAG) durch Kontrastmittel unter Röntgendurchleuchtung infundiert korrekte Positionierung der beiden Führungskatheter und den Ballon in den Koronararterien, unter Verwendung von vorne nach hinten und LAO 30 ° Ansichten zu bestätigen.
  10. Bringen Sie die zwei 50 ml-Spritzen, die 30 ml (LCMA) und 20 ml (RCA) 2% Evans-Blau zu den jeweiligen Drei-Wege-Hähnen die an den Y-Verbinder an den Führungskatheter.
  11. Den Ballon und bestätigen Verschluss der Koronararterie durch CAG. Erst wenn der Ballon vollständig blockiert den Durchgang von jedem Kontrastmittel injizieren Evans-Blau dye durch beide Führungskatheter (5 ml / s), während der Ballon aufgeblasen wird.
  12. Unmittelbar nach Abschluss der blauen Infusion Evans, induzieren Kammerflimmern durch eine 9-V-Batterie auf dem Nicht-Infarkt Teil des Herzens platzieren.
  13. Inzision der Hohlvene Druck abzulassen und stellen Sie sicher, eine Absauganlage für die Entwässerung von Blut zu ermöglichen, zur Verfügung.
  14. Entleeren Sie den Ballon, einfahren es zusammen mit den beiden Führungskatheter und das Herz Explantation von umgebenden Membranen sezieren. Eine Quer der großen Gefäße durchtrennt (dh Aorta, Lungenarterie / Venen) ermöglicht eine vollständige Explantation. Rasch Blut und überflüssige Farbstoff auf der Außenfläche abgewaschen und in den Herzhöhlen unter Verwendung von 0,9% Kochsalzlösung.
  15. Sie vorsichtig den linken Ventrikel sezieren und Schnitte in 5 gleich 10 mm dicke Abschnitte von der Spitze zu dem atrioventrikulären (AV) Nut in einer Ebene parallel zur Basis, zu machen.
  16. Fotografieren Sie beide Seiten aller fünf Scheiben separat unter Umgebungslichtbedingungen,als eine mögliche blaue Auswaschen Evans kann im nachfolgenden Schritt erfolgen. Zur Kalibrierung stellen Sie sicher, ein Lineal in dem Bild vorhanden ist.
  17. Inkubieren für 10 min in 1% TTC-Lösung bei 37 ° C, die Abschnitte um nach 5 min bei gleicher Färbung drehen.
  18. Wieder fotografieren, beide Seiten aller fünf separat unter Umgebungslichtbedingungen Scheiben und stellen Sie sicher, ein Lineal in das Bild für die Kalibrierung visualisiert.
  19. Wiegen Sie alle Scheiben. Verwenden Software geeignet für die Analysen 5. Wenn ImageJ (Version 1.47) verwenden, klicken Sie auf "Gerade" Taste. Nun zeichnen Sie eine gerade Linie mit einem bekannten Abstand das Lineal in das Bild ein (zB 5 cm). Klicken Sie auf "Analysieren" -> "Set Maßstab" und den Abstand in der Box "bekannt Abstand" eingeben. Dieses Verfahren ermöglicht die Kalibrierung der Entfernung in Pixeln SI Längeneinheiten.
  20. Mit Hilfe der "Polygon Auswahl", wählen Sie den gesamten Bereich, der in der Gegenwart im an den LV Myokard entsprichtAlter, klicken Sie auf "Analyze" -> "Messen" auf Messungen erwerben. Führen Sie dieses Verfahren für beide Seiten jeder Scheibe von Myokard und durchschnittlich pro Scheibe.
    1. Multiplizieren Sie durch das Gewicht der Scheibe proportional zum Gesamtgewicht aller fünf Scheiben und mitteln diese Messungen für alle Scheiben.
  21. Führen Sie ähnliche Messungen für Risikobereich (AAR) und Infarktgröße (IS). Teilen IS / AAR, AAR / LV und IS / LV und um 100% multiplizieren jeweilige Ergebnis Messungen zu erhalten 5.

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Ergebnisse

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3D transösophageale Echokardiographie

3D transösophageale Echokardiographie (3D-TEE) kann für die Bewertung der globalen Herzfunktion verwendet werden. Nach AMI unterscheidet globale Herzfunktion von gesunden Ausgangswerten. Insbesondere die linksventrikuläre Ejektionsfraktion (LVEF) verringert sich von 59 ± 4% auf 37 ± 6% nach einer Woche der Reperfusion (n = 10) (GPJ van Hout, 2015). Eine Erhöhung der ...

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Diskussion

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Kardialen Remodeling wird abhängig weitgehend auf die myokardiale Infarktgröße und die Qualität der Myokardinfarkt reparieren 6,26. Um die ehemalige in standardisierter Weise beurteilen zu können , ist die vorliegende Manuskript stellt eine elegante Methode der In - vivo - Infusion von Evans - Blau in Kombination mit Ex - vivo - TTC - Färbung, die validiert wurde und ausgiebig genutzt 8,16,27,28. Diese Methode erlaubt eine Quantifizierung des Risikobereich (AAR) ...

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Offenlegungen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Danksagungen

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Die Autoren danken Marlijn Jansen, Joyce Visser, Grace Croft, Martijn van Nieuwburg, Danny Elbersen und Evelyn Velema für ihre hervorragende technische Unterstützung während der Tierversuche.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
3-dimensional Transösophageale Echokardiographie
iE33 Ultraschallgerät
SchallkopfPhilips-Aquasonic
® 100 Ultraschall-TransmissionsgelParker Laboratories Inc.01-34Alternatives Produkt verwendbar
Batteriegriff Typ C (Laryngoskopgriff)Riester12303
Ri-Standard Miller Klinge MIL 4 (Laryngoskopklinge)Riester12225
Qlab 10.0 (3DQ Advanced) AnalysesoftwarePhilips-
NameCompany<strong>KatalognummerKommentare
Druck-Volumen-Schleifenerfassung
HerzdefibrillatorPhilips
0,9% KochsalzlösungBraun
8 F Perkutane Scheide EinführsetPfeilCP-08803Alternatives Produkt kann verwendet werden
9 F Radifokus® Introducer II Standard Bausatz TerumoRS*A90K10SQAlternatives Produkt kann verwendet werden
8 F Fogarty KatheterEdward Life Sciences62080814FAlternatives Produkt kann verwendet werden
7 F Kritik & Handel; SP5107H TD-Katheter (Swan-Ganz)Becton Dickinson (BD)680078Alternatives Produkt kann verwendet werden
Ultraview SL Patientenmonitor und Invasive Command Module (externes Herzzeitvolumengerät)Spacelabs Healthcare91387Alternatives Produkt kann verwendet werden
ADVantage System&Handel;TransonicSciSense-7
F Tetrapolarer Admittanzkatheter (7.0 VSL Pigtail / kein Lumen)Transonic
(Iworx 404)Iworx-Labscribe
V2.0 AnalysesoftwareIworx-AlternativesProdukt kann verwendet werden
NameCompanyKatalognummerKommentare
>Infarktgröße / Quantifizierung des Risikobereichs
Diathermie-AlternativesProdukt kann verwendet werden
LebschMesser-AlternativesProdukt kann verwendet werden
Hammer-AlternativesProdukt kann verwendet werden
KnochenmarkwachsSynetureAlternatives Produkt kann verwendet werden
Klinkenberg-Schere-AlternativesProdukt kann verwendet werden
Retraktor-AlternativesProdukt kann verwendet werden
Chirurgische Schere-7
F Perkutane Scheide Einführset ArrowCP-08703Alternatives Produkt kann verwendet werden
8 F Perkutane Scheide Einführset  PfeilCP-08803Alternatives Produkt kann verwendet werden
7 F JL4 Führungskatheter Boston ScientificH749 34357-662Alternatives Produkt kann verwendet werden
8 F JL4 Führungskatheter Boston ScientificH749 34358-662 Alternatives Produkt kann verwendet werden
COPILOT Bleedback-Regelventile Abbott Vascular1003331Alternatives Produkt kann verwendet werden
BD Connecta™  Franklin Lakes394995Alternatives Produkt kann verwendet werden
KontrastmittelTelebrix
Persuader 9 Steerable Guidewire 9 (0.014", 180 cm, gerade Spitze), hydrophile BeschichtungMedtronic Inc.9PSDR180HSAlternatives Produkt kann verwendet werden
SAPPHIRE™ Koronardilatationskatheter (PTCA-Ballon, geeignet für die Größe der jeweiligen Koronararterie (2,75 - 3,25 mm))OrbusNeich103-3015Alternatives Produkt kann verwendet werden
Evans Blue Sigma-AldrichE2129-100GGiftig. Als alternatives Produkt kann
2,3,5-Triphenyl-tetrazoliumchlorid (TTC)Sigma-AldrichT8877-100GReizstoff verwendet werden. Alternatives Produkt kann verwendet werden
9 V Batterie-
Lineal-
FotokameraSony-ImageJ
National Institutes of Health-Alternatives Produkt kann verwendet werden
Philips-X7-2t SciSense-Mehrkanal-Erfassungssystem

Referenzen

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