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Methodenartikel

Ein Protokoll für Functional Assessment of Whole-Protein Sättigungsmutagenese-Bibliotheken mit Hilfe von High-Throughput Sequencing

10.5K Aufrufe

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DOI:

10.3791/54119

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3. Juli 2016

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir stellen ein Protokoll für die funktionelle Bewertung umfassender single-site Sättigungsmutagenese Bibliotheken von Proteinen Hochdurchsatz-Sequenzierung verwendet. Wichtig ist, nutzt dieser Ansatz orthogonalen Primerpaare Bibliothek Konstruktion und Sequenzierung zu multiplexen. Repräsentative Ergebnisse unter Verwendung von TEM-1 β-Lactamase in klinisch relevanter Dosierung von Ampicillin ausgewählt werden bereitgestellt.

Zusammenfassung

Ortsgerichtete Mutagenese wird seit langem als Methode zur Untersuchung der Struktur, Funktion und Evolution von Proteinen verwendet. Jüngste Fortschritte in der massiv-parallelen Sequenzierungstechnologie haben die Möglichkeit eröffnet, die funktionellen oder Fitnesseffekte einer großen Anzahl von Mutationen gleichzeitig zu bewerten. In dieser Arbeit stellen wir ein Protokoll zur experimentellen Bestimmung der Auswirkungen aller möglichen Einzelaminosäuremutationen in einem Protein von Interesse unter Verwendung der Hochdurchsatz-Sequenzierungstechnologie vor, am Beispiel des 263-Aminosäure-Antibiotikaresistenzenzyms TEM-1 β-Lactamase. Bei diesem Ansatz wird eine Gesamtprotein-Sättigungsmutagenese-Bibliothek durch ortsgerichtete mutagene PCR konstruiert, wobei jede Position einzeln auf alle möglichen Aminosäuren randomisiert wird. Die Bibliothek wird dann in Bakterien umgewandelt und auf ihre Fähigkeit hin ausgewählt, Resistenz gegen β-Lactam-Antibiotika zu verleihen. Der Fitnesseffekt jeder Mutation wird dann durch Tiefensequenzierung der Bibliothek vor und nach der Selektion bestimmt. Wichtig ist, dass dieses Protokoll Verfahren einführt, die die Lesetiefe der Sequenzierung maximieren und die gleichzeitige Selektion der gesamten Mutationsbibliothek ermöglichen, indem benachbarte Positionen in Längengruppen gemischt werden, die durch die Leselänge der Hochdurchsatzsequenzierung untergebracht sind, und orthogonale Primer verwendet werden, um jede Gruppe zu codieren. Repräsentative Ergebnisse unter Verwendung dieses Protokolls werden durch die Bewertung der Fitnesseffekte aller einzelnen Aminosäuremutationen in TEM-1 bei einer klinisch relevanten Dosierung von Ampicillin erzielt. Die Methode sollte leicht auf andere Proteine erweiterbar sein, für die ein Hochdurchsatz-Selektionsassay vorhanden ist.

Einleitung

Mutagenese wurde lange im Labor verwendet worden, um die Eigenschaften von biologischen Systemen und ihre Entwicklung zu studieren, und mutierte Proteine ​​oder Organismen mit verbesserten oder neuen Funktionen zu erzeugen. Während die ersten Ansätze auf Methoden verlassen , die in Organismen zufällige Mutationen erzeugen, Forscher das Aufkommen der rekombinanten DNA - Technologie ermöglicht die Einführung wählen Änderungen an DNA in einer ortsspezifisch, dh., Ortsgerichtete Mutagenese 1,2. Mit den derzeitigen Techniken, typischerweise unter Verwendung von mutagenen Oligonukleotide in einer Polymerase - Kettenreaktion (PCR) ist es relativ leicht z....

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Protokoll

Hinweis: Siehe Abbildung 1 für Umriss des Protokolls. Mehrere Schritte und Reagenzien, die in dem Protokoll erfordern Sicherheitsmaßnahmen (mit "Vorsicht" gekennzeichnet). Wenden Sie Sicherheitsdatenblätter vor dem Gebrauch. Alle Protokollschritte werden bei RT, sofern nicht andere angegeben.

1. Bereiten Sie Kultur, Medien und Platten

  1. Vorbereiten und Sterilisieren durch Autoklavieren 1 L gereinigtes Wasser, 100 ml SOB-Medium (SOB; Tabelle 1), 1 L Luria-Bertani - Brühe (LB; Tabelle 2) und 1 l LB-Agar (Tabelle 3). Bereiten Sie separat und zu sterilisieren drei Ku....

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Ergebnisse

Die Plasmid - Karte für die fünf modifizierten pBR322 Plasmiden , die orthogonal Primingstellen (pBR322_OP1 - pBR322_OP5) ist in 2A gezeigt. Um zu testen, ob die orthogonal Primer sind spezifisch, PCRs wurden durchgeführt, um jedes Paar von orthogonalen Primer einzeln, zusammen mit allen fünf pBR322_OP1-5 Plasmiden oder mit allen Plasmiden minus dem Plasmid, das das orthogonale Primerpaars entspricht. Die richtige Produkt wurde nur erhalten , wenn die passenden Plasmid e.......

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Diskussion

Hier ist ein Protokoll zum Durchführen der funktionellen Bewertung des gesamten protein Sättigungsmutagenese Bibliotheken beschriebenen Hochdurchsatz-Sequenzierung Technologie. Ein wichtiger Aspekt des Verfahrens ist die Verwendung von orthogonalen Primern während des Klonens. Kurz gesagt, wird jede Aminosäureposition durch mutagene PCR randomisiert, und zusammen in Gruppen von Positionen, deren kombinierte Sequenzlänge von Hochdurchsatz-Sequenzierung untergebracht ist gemischt. Diese Gruppen kloniert in Plasmid-Vektore.......

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Offenlegungen

Die Autoren erklären, keine konkurrierenden finanziellen Interessen zu haben

Danksagungen

R.R. dankt der Unterstützung durch die National Institutes of Health (RO1EY018720-05), die Robert A. Welch Foundation (I-1366) und das Green Center for Systems Biology.

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
TyptoneResearch Products Intl. Corp.T60060-1000.0
HefeextraktResearch Products Intl. Corp.Y20020-500.0
NatriumchloridFisher ScientificBP358-212
KaliumchloridSigma-AldrichP9333-500G
MagnesiumsulfatSigma-AldrichM7506-500G
AgarFisher ScientificBP1423-500
TetracyclinhydrochloridSigma-AldrichT7660-5G
PetriplattenCorning351029
MATLAB MathworksDNA-Technologien
https://www.idtdna.com/pages/products/dna-rna/custom-dna-oligos25-nmol-Skala, Standard-Entsalzung
pBR322_AvrIIauf AnfragepBR322-Plasmid, modifiziert, um eine AvrII-Restriktionsstelle stromabwärts des TEM-1-Gens zu enthalten
pBR322_OP1 – pBR322_OP5auf Anfrageerhältlich, fünf modifizierte pBR322-Plasmide, die jeweils ein Paar orthogonale Priming-Stellen enthalten
Q5-High-Fidelity-DNA-PolymeraseNew England BiolabsM0491L, enthält 5x PCR-Puffer und PCR-Additiv (GC-Enhancer)
15 ml konisches RöhrchenCorning430025
Mehrkanalpipetten (Eppendorf ResearchPlus)Eppendorf
PCR-Platte, 96-Well-FisherScientific14230232
96-Well-PlattendichtungExcel ScientificF-96-100
Veriti 96-Well-ThermocyclerApplied Biosystems4375786
6x GelladefarbstoffNew England BiolabsB7024S
AgaroseResearch Products Intl. Corp.20090-500.0
EthidiumbromidBio-Rad161-0433
UV-Transilluminator (FOTO/Analyst ImageTech)Fotodyne Inc.
EB-PufferQiagen19086
96-Well-Assay-Platten mit schwarzer Wand, klarer BodenCorning3651
Lambda-Phagen-DNANew England BiolabsN3011S
PicoGreen dsDNA-ReagenzInvitrogenP7581dsDNA-Quantifizierungsreagenz, verwendet im Protokollschritt 2.2.4
Victor 3 V Mikroplatten-ReaderPerkinElmer
DNA-AufreinigungskitZymo ResearchD4003
MikrozentrifugenröhrchenCorning3621
Langwelliger UV-StrahlerFisher ScientificFBUVLS-80
Agarose-Gel-DNA-ExtraktionspufferZymo ResearchD4001-1-100
AatIINew England BiolabsR0117S
AvrIINew England BiolabsR0174L
T4 DNA-LigaseNew England BiolabsM0202S
EVB100 elektrokompetent E. coliAvidityEVB100
Elektroporator (E. coli Pulser)Bio-Rad1652102
ElektroporationsküvettenBio-Rad165-2089
Spektralphotometer (Ultrospec 3100 pro)Amersham Biosciences80211237
konische Gefäße 50 mlCorning430828
Plasmid-AufreinigungskitMacherey-Nagel740588.25
8-Well-PCR-StreifenröhrchenAxygen321-10-551
Qubit dsDNA HS Assay-KitInvitrogenQ32854dsDNA Quantifizierungsreagenz
Qubit AnalyseröhrchenInvitrogenQ32856
Qubit FluorometerInvitrogenQ32866
Ampicillin NatriumsalzAkron Biotechnology50824296
MiSeq Reagenzienkit v2 (500 Zyklen)IlluminaMS-102-2003
MiSeq Desktop-SequenziererIlluminahttp://www.illumina.com/systems/miseq.htmlalternativ könnte man auf der Illumina HiSeq-Plattform
FLASh-SoftwareJohn Hopkins University sequenzieren - Open-Source-http://ccb.jhu.edu/software/FLASH/Software zum Zusammenführen von Paired-End-Reads aus Next-Generation-Sequencing-Daten
AatII_FGATAATAATGGTTTCTTAGACG
TCAGGTGGC
AvrII_RCTTCACCTAGGTCCTTTTAAAT
TAAAAATGAAG
AvrII_FCTTCATTTTTAATTTAAAAGGA
CCTAGGTGAAG
AatII_OP1_RACCTGACGTCCGTATTTCAAC
TGTCCGGTCTAAGAAACCATT
ATTATCATGACATTAAC
AatII_OP2_RACCTGACGTCCGCTCACGGA
GTGTACTAATTAAGAAACCATT
ATTATCATGACATTAAC
AatII_OP3_RACCTGACGTCGTACGTCTGA
ACTTGGGACTTAAGAAACCA
TTATTATCATGACATTAAC
AatII_OP4_RACCTGACGTCCCGTTCTCGAT
ACCAAGTGATAAGAAACCATT
ATTATCATGACATTAAC
AatII_OP5_RACCTGACGTCGTCCGTCGGA
GTAACAATCTTAAGAAACCAT
TATTATCATGACATTAAC
OP1_FGACCGGACAGTTGAAATACG
OP1_RCGACGTACAGGACAATTTCC
OP2_FATTAGTACACTCCGTGAGCG
OP2_RAGTATTATGCGTCAAGGTCC
OP3_FAGTCCCAAGTTCAGACGTAC
OP3_RGAAAAGTCCCAATGAGTGCC
TCACTTGGTATCGAGAACGG
OP4_RTATCACGGAAGGACTCAACG
OP5_FAGATTGTTACTCCGACGGAC
OP5_RTATAACAGGCTGCTGAGACC
Group1_FACACTCTTTCCCTACACGAC
GCTCTTCCGATCTNNNNNGC
ATTTTGCCTACCGGTTTTTGC
Group1_RGTGACTGGAGTTCAGACGTG
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TTGCCCGGCGTCAAC
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Group3_RGTGACTGGAGTTCAGACGTG
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AAACGACGAGCGTGACAC
Group4_RGTGACTGGAGTTCAGACGTG
TGCTCTTCCGATCTNNNNNGC
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Group5_FACACTCTTTCCCTACACGAC
GCTCTTCCGATCTNNNNNCG
GCTGGCTGGTTTATTGC
Group5_RGTGACTGGAGTTCAGACGTG
TGCTCTTCCGATCTNNNNNTAT
ATGAGTAAACTTGGTCTGACAG
501_FAATGATACGGCGACCGA
GATCTACACTATAGCCTACAC
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502_FAATGATACGGCGACCGA
GATCTACACATAGAGGCA
CTCTTTCCCTACACGAC
503_FAATGATACGGCGACCGA
GATCTACACCCTATCCTACAC
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504_FAATGATACGGCGACCGA
GATCTACACGGCTCTGAACA
CTCTTTCCCTACACGAC
505_FAATGATACGGCGACCGA
GATCTACACAGGCGAAGACA
CTCTTTCCCTACACGAC
701_RCAAGCAGAAGACGGCATAC
GAGATCGAGTAATGTGACTG
GAGTTCAGACGTG
702_RCAAGCAGAAGACGGCATAC
GAGATTCTCCGGAGTGACTG
GAGTTCAGACGTG
http://www.mathworks.com/products/matlab/ Oligonukleotid-Primer Integrierte erhältlich , http://www.fotodyne.com/content/ImageTech_gel_documentation der OP4_F

Referenzen

  1. Hutchison, C. A. 3rd, et al. Mutagenesis at a specific position in a DNA sequence. J Biol Chem. 253 (18), 6551-6560 (1978).
  2. Mullis, K. B., Faloona, F. A. Specific synthesis of DNA in vitro via a polymerase-catalyzed chain reaction. Methods Enzymol. 155

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Nachdrucke und Genehmigungen

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