Ein Abonnement von JoVE ist erforderlich, um diesen Inhalt anzuzeigen. Melden Sie sich an oder beginnen Sie noch heute mit einer kostenlosen Testphase.

Methodenartikel

Genetic Engineering eines Unconventional Hefe für Erneuerbare Biokraftstoff- und Biochemie Produktion

14.4K Ansichten

⸱

DOI:

10.3791/54371

⸱

20. September 2016

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Biochemistry, Yong Loo Lin School of Medicine, National University of Singapore, 2NUS Synthetic Biology for Clinical and Technological Innovation (SynCTI), Life Sciences Institute, National University of Singapore, 3Food Science and Chemical Engineering, Singapore Institute of Technology

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir berichten hier über Methoden zur molekulargenetischen Manipulation des Yarrowia lipolytica Po1g-Stammes zur Verbesserung der Gendeletionseffizienz. Die daraus resultierenden gentechnisch veränderten Y. lipolytica-Stämme haben potenzielle Anwendungen in der Biokraftstoff- und biochemischen Produktion.

Zusammenfassung

Yarrowia lipolytica ist ein nicht-pathogen, dimorphic und streng aeroben Hefe - Arten. Aufgrund seiner besonderen physiologischen Eigenschaften und metabolischen Eigenschaften, diese unkonventionelle Hefe ist nicht nur ein gutes Modell für die Untersuchung der grundlegenden Natur der Pilz-Differenzierung, sondern auch eine vielversprechende mikrobielle Plattform für biochemische Produktion und verschiedene biotechnologische Anwendungen, die umfangreiche genetische Manipulationen erfordern. Allerdings genetische Manipulationen von Y. lipolytica sind begrenzt aufgrund des Fehlens einer effizienten und stabilen genetischen Transformationssystems sowie sehr hohe Raten von nicht-homologe Rekombination , die vor allem auf die KU70 - Gen zugeschrieben werden. Hier berichten wir über ein einfaches und schnelles Protokoll für die effiziente genetische Transformation und für die Gen - Deletion in Y. lipolytica Po1g. Zuerst wird ein Protokoll für die effiziente Transformation von exogener DNA in Y. lipolytica Po1g gegründet wurde. Second, die verbesserte Doppel-crossover homologe Rekombinationsrate für weitere Deletion von Zielgenen zu erreichen, wurde das KU70 - Gens durch Transformieren einer Unterbrechungskassette tragenden 1 kb Homologiearme gelöscht. Drittens die verstärkte Gen - Deletion Effizienz nach dem Löschen des KU70 - Gens zu zeigen, löschten wir einzeln 11 Zielgene kodieren , Alkoholdehydrogenase und Alkohol - Oxidase die gleichen Verfahren auf der KU70 - Knockout - Plattform Stamm verwenden. Es wurde beobachtet, dass die Rate der präzisen homologe Rekombination im wesentlichen von weniger als 0,5% für die Löschung erhöht des KU70 - Gens in Po1g auf 33% -71% für das einzelne Gen - Deletion der 11 Zielgene in Po1g KU70 Δ. Eine replikative Plasmid, das das Hygromycin B-Resistenzmarker und das Cre / loxP-Systems trug konstruiert, und das Selektionsmarker-Gen in der Hefe knockout Stämme wurde schließlich durch die Expression von Cre-Rekombinase entfernt, um mehrere Runden targe erleichternted genetische Manipulationen. Die sich daraus ergebenden Einzel Gen-Deletionsmutanten haben potentielle Anwendungen in der Biokraftstoff- und Biochemie Produktion.

Einleitung

Im Gegensatz zu Saccharomyces cerevisiae, Yarrowia lipolytica, eine unkonventionelle Hefe kann in Form von Hefe oder Mycel in Reaktion auf Änderungen der Umgebungsbedingungen 1,2 wachsen. Somit ist diese dimorphic Hefe kann für die Untersuchung der Pilzdifferenzierung, Morphogenese und Taxonomie 3,4,5 als gutes Modell verwendet werden. Es wird allgemein als sicher (GRAS) Hefearten angesehen, die allgemein verwendet wird , eine Vielzahl von Lebensmittelzusatzstoffen, wie organische Säuren zu produzieren, Polyalkoholen, Aromastoffen, Emulgatoren und oberflächenaktive Mittel 6,7,8,9. Es ist ein obligat aerob und eine bekannte ölige Hefe fähig ist natürlich Lipide bei hohen Mengen, dh bis zu 70% des Zelltrockengewicht 10 ansammeln. Es kann auch ein breites Spektrum von Kohlenstoffquellen für das Wachstum, einschließlich verschiedener Arten von Rückständen in Abfallressourcen als Nährstoffe 11,12,13 nutzen. All diese einzigartigen Eigenschaften machen Y. lipolytica sehr attraktiv fürverschiedene biotechnologische Anwendungen.

Obwohl die gesamte Genomsequenz des Y. lipolytica hat 14,15, genetische Manipulation dieser unkonventionellen Hefe veröffentlicht worden ist komplexer als andere Hefearten. Erstens Transformation dieser Hefearten ist viel weniger effizient aufgrund des Fehlens eines stabilen und effizienten genetischen Transformationssystem 16,17. Zweitens mühselige genomische Integration von linearen Expressionskassetten für die Expression von Genen von Interesse allgemein verwendet , da kein natürlicher episomal Plasmid System in dieser Hefe 18 gefunden. Drittens Generation von genetischen Knock-Outs und Knock-Ins begrenzt, da das Gen Effizienz durch genaue homologe Rekombination in dieser Hefe - Targeting ist gering , und die meisten Integrationsereignisse auftreten , durch nicht-homologe Endverbindung (NHEJ) 19.

In dieser Studie berichten wir einen optimierten Transformationsprotokoll für die Y. lipolytica Po1g Stamm, der einfach, schnell, effizient und reproduzierbar ist. Um die Frequenz von präzisen homologe Rekombination steigern, wir löschte das KU70 - Gen, das ein Schlüsselenzym in dem NHEJ Stoffwechselweg kodiert. Durch die optimierte Transformationsprotokoll verwendet und eine lineare Knockout - Kassette transformiert enthält flankierenden Homologiebereiche von 1 kb, das KU70 Gen des Y. lipolytica Po1g wurde erfolgreich gelöscht. Die Robustheit dieser Gen - Deletion Methodik wurde dann durch gezielte Alkoholdehydrogenase und Alkohol - Oxidase - Gene in der Po1g KU70 Δ Stamm demonstriert. Es wurde beobachtet , dass die KU70 Deletionsstamms eine wesentlich höhere Effizienz der homologen Rekombination vermittelten Gen zeigten Targeting als die des Wildtyp - Po1g Stamm. Zusätzlich wurde eine replikative Cre Expressionsplasmid den Hygromycin B-Resistenzmarker trägt, konstruiert marker rescue auszuführen. Die Markerrettung erleichtert mehrere Runden von Gen in th Targetinge Gen-Deletionsmutanten erhalten. Neben Gen - Deletion, unser Protokoll für die genetische Transformation und Gen - Deletion hier beschrieben sind, können auf Gene auf bestimmte Loci einfügen angewendet werden, und die ortsspezifische Mutationen in den Y. einführen lipolytica - Genoms.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Protokoll

1. Erzeugung des Y. lipolytica KU70 Deletionsstamms

  1. Der Bau der Disruptionskassette
    Anmerkung: Siehe Tabelle 1 für alle Primer in der Polymerasekettenreaktion (PCR) Amplifikationen verwendet.
    1. Design Primer 20 der PCR die LEU2 Expressionskassette amplifizieren (siehe Tabelle 1) von einer Y. lipolytica Expressionsvektor und LoxP - Stellen in den 5'- und 3' - Enden der LEU2 Kassette mit einem langen Vorwärtsprimer (# 1; Tabelle 1) einzuführen , und einem langen Rückwärtsprimer (# 2; Tabelle 1), respectively. Um eine zusätzliche Restriktionsstelle für nachfolgende Schritte des Klonprozess einzuführen, fügen Sie eine Einschränkung Bam HALLO Website in Primer # 1.
    2. Führen PCR unter Verwendung eines High-fidelity DNA - Polymerase , wie in Tabelle 2 aufgeführt.
    3. Reinige das PCR-Produkt LoxP--Promotor-LEU2-Terminator-loxP Kassette ein PCR-purificatio mitn-Kit nach den Anweisungen des Herstellers. Hinzufügen , 3'-A - Überhänge an den gereinigten PCR - Produkt gemäß den Anweisungen des Herstellers 21. Verwendung von T4 - DNA - Ligase die A-tailed PCR - Produkt in einen TA - Klonierungsvektor abzubinden das Plasmid T-LEU2 gemäß Tabelle 3 zu ergeben.
    4. PCR das 1 kb 5' - stromaufwärts - Sequenz der Primer # 3 / # 4 von der Y. Verwendung KU70 Gen amplifizieren lipolytica Po1g genomische DNA 22 gemäß Tabelle 2. Man reinige das PCR - Produkt einer PCR Purification Kit nach den Anweisungen des Herstellers.
      1. Doppel verdauen sowohl das gereinigte PCR - Produkt und T-LEU2 - Plasmid mit Sac II und Bam HALLO Enzyme gemäß Tabelle 4. Reinige den Verdauungsgemisch ein PCR Purification Kit nach den Anweisungen des Herstellers verwendet wird . Verwenden Sie T4 - DNA - Ligase das gereinigte und verdaute PCR - Produkt der Sac II / Bam HALLO - Stellen von T-LEU2 abzubinden die zu ergebenPlasmid T-LEU2-5E gemäß Tabelle 3.
    5. PCR das 1 kb 3 'Downstream - Sequenz der Primer # 5 / # 6 von der Y. Verwendung KU70 Gen amplifizieren lipolytica Po1g genomische DNA 22 gemäß Tabelle 2. Man reinige das PCR - Produkt einer PCR Purification Kit nach den Anweisungen des Herstellers. Doppel verdauen sowohl das gereinigte PCR - Produkt und T-LEU2-5E Plasmid mit Not I und Nde I - Enzyme gemäß Tabelle 4.
      1. Man reinigt den Verdauungsmischung ein PCR-Reinigungs-Kits gemäß den Anweisungen des Herstellers verwendet wird. Dann abzubinden das gereinigte und verdaute PCR - Produkt der Not I / Nde I - Stellen von T-LEU2-5E 3 das Plasmid T-KO unter Verwendung von T4 - DNA - Ligase gemäß Tabelle zu erhalten.
    6. Digest das Plasmid T-KO mit Sac II und Nde I - Enzyme gemäß Tabelle 4 die Disruptionskassette zu erzeugen (Abbildung 1 ). Reinige die verdauten DNA-Fragmente unter Verwendung eines PCR-Reinigungs-Kits gemäß den Anweisungen des Herstellers.
  2. Kompetente Zellpräparation und Transformation von Y. lipolytica Po1g Stamm
    1. Kompetente Zellpräparation
      1. Impfen eine Kolonie von Y. lipolytica Po1g Stamm aus einem frischen Hefeextrakt-Pepton-Dextrose (YPD) Platte in 10 ml YPD - Medium (1% Hefeextrakt, 2% Pepton, 2% Dextrose und 50 mM Citrat - Puffer pH 4,0) in einem 100 ml Kolben. Inkubieren in einem 30 ° C Schüttelinkubator bei 225 UpM für 20 Stunden bis zur Sättigung (eine OD 600 von etwa 15, unter Verwendung eines Spektrophotometers gemessen).
      2. Pelletieren Sie die Zellen durch 5 min bei 5000 xg bei Raumtemperatur zentrifugiert. Waschen der Zellen mit 20 ml Tris-EDTA (TE) -Puffer (10 mM Tris, 1 mM EDTA, pH 7,5) und pelletieren Sie die Zellen wie in Schritt 1.2.1.2 beschrieben. Resuspendieren der Zellen in 1 ml 0,1 M Lithiumacetat (pH 6,0, eingestellt mit Essigsäure) und Inkubation bei Raum tempe für 10 minrature.
      3. Aliquot der kompetenten Zellen (100 ul) in sterile 1,5 ml-Röhrchen. Fahren Sie mit den Transformationsschritte unten sofort, oder fügen Glycerin bis zu einer Endkonzentration von 25% (v / v) und bei -80 ° C für die Langzeitlagerung.
    2. Transformation
      1. vorsichtig mischen 10 ul denaturiertes Lachssperma-DNA (10 mg / ml) und 1-5 ug der gereinigten Unterbrechungskassette zusammen mit 100 ul kompetenter Zellen und Inkubieren bei 30 ° C für 15 min.
      2. In 700 ul 40% Polyethylenglykol (PEG) -4000 (gelöst in 0,1 M Lithiumacetat pH 6,0), gut mischen und Inkubation in einem 30 ° C Schüttelinkubator bei 225 rpm für 60 min.
        Hinweis: Es ist wichtig, zu verwenden PEG mit einem mittleren Molekulargewicht von 4000, anstelle von PEG-3350 (typischerweise bei der Transformation von herkömmlichen Hefe verwendet).
      3. Hitzeschock Das Transformationsgemisch durch das Rohr in einem 39 ° C Wasserbad für 60 min platziert.
      4. 1 ml YPD-Medium undbei 30 ° C und 225 Upm für 2 Stunden erholen. Zentrifuge bei 9.000 × g für 1 min bei Raumtemperatur, entfernen Sie den Überstand und das Pellet in 1 ml TE-Puffer.
      5. Repellet die Zellen durch Zentrifugation bei 9.000 × g für 1 min bei Raumtemperatur und der Überstand verworfen. Resuspendieren des Pellets in 100 ul Puffer TE und Platte auf selektiven Platten (zB Leucin-defizienten Platten), und Inkubation für 2-3 Tage bei 30 ° C.
      6. Pick 4 bis 10 Einzelkolonien und inokulieren getrennt in 2 ml YPD-Medium. Inkubieren über Nacht in einem 30 ° C Schüttelinkubator bei 225 Umdrehungen pro Minute. Identifizierung positiver Kolonien durch PCR - Analyse der genomischen DNA aus den Trans 22 gemäß Tabelle 5 unter Verwendung von zwei Sätzen von Primern # 55 / # 56 und # 56 / # 57, respectively.
        Hinweis: Die nicht linearisiert ich pYLEX1 Vektor in Y. umgewandelt wird lipolytica Po1g kompetente Zellen , um die Transformationseffizienz zu bestimmen , indem die Zahl Zählenkoloniebildenden Einheiten (cfu) pro & mgr; g Plasmid - DNA verwendet 23.

2. Marker-Rettung

  1. Der Bau des Cre-Expressionsplasmid
    1. Der Bau der pYLEX1-CRE und pYLEX1-HPH
      1. Design - Primer 20 der PCR , die offene Leserahmen von cre und hph verstärken. Fügen Sie ein zusätzliches Adeninnukleotid vor den Start - Codons in den Forward - Primer # 82 und 84 #, und fügen Sie KpnI Restriktionsstellen stromabwärts der Stop - Codons in den Reverse - Primern # 83 und # 85 PCR die offene Leserahmen von cre verstärken und hph von pSH69 (Zugangsnummer HQ412578) 24 gemäß Tabelle 2.
      2. Reinige sowohl cre und hph - Fragmente eine PCR Purification Kit nach den Anweisungen des Herstellers. Digest sowohl die gereinigten cre und hph Fragmente mit KpnI wie pro Tabl Enzyme 4. Verdoppeln Sie die pYLEX1 Plasmid mit Pml I und Kpn I Enzyme verdauen gemäß Tabelle 4. Man reinigt den Verdauungsmischung ein PCR - Reinigungs - Kits gemäß den Anweisungen des Herstellers verwendet wird .
      3. Verwenden Sie T4 - DNA - Ligase gemäß Tabelle 3 die gereinigten und verdaut cre und hph Fragmente PML I / KpnI - Stellen des Y. abzubinden lipolytica Expressionsvektor, wodurch man pYLEX1-CRE und pYLEX1-HPH sind.
    2. Der Bau der pSL16-CRE-HPH
      1. PCR amplifizieren den Promotor-Gen-Terminator - Kassette des cre von pYLEX1-CRE Primern 86 # / # 87 flankieren die Sal I / Pst I - Restriktionsstellen gemäß Tabelle 2. Das PCR - Produkt einer PCR Purification Kit Reinige Verwendung gemäß den Anweisungen des Herstellers .
        1. Doppel verdauen sowohl das gereinigte PCR - Produkt und pSL16-CEN1-1 (227) Plasmid 25 mit Sal I undPst I - Enzyme gemäß Tabelle 4. Man reinigt den Verdauungsmischung ein PCR - Reinigungs - Kits gemäß den Anweisungen des Herstellers verwendet wird . Dann ligieren das gereinigte und verdauten PCR - Produkts in pSL16-CEN1-1 (227) an den entsprechenden Stellen pSL16-CRE unter Verwendung von T4 DNA - Ligase gemäß Tabelle 3 zu schaffen.
      2. PCR amplifizieren den Promotor-Gen-Terminator - Kassette von hph von pYLEX1-HPH Primern # 88 / # 89 flankieren die Xho I / Bgl II - Restriktionsstellen gemäß Tabelle 2. Man reinige das PCR - Produkt einer PCR - Purification - Kit nach den Anweisungen des Herstellers .
        1. Doppel verdauen sowohl das gereinigte PCR - Produkt und pSL16-CRE Plasmids mit Xho I und Bgl II - Enzyme gemäß Tabelle 4. Reinige den Verdauungsgemisch ein PCR Purification Kit nach den Anweisungen des Herstellers verwendet wird . Dann ligieren das gereinigte und verdauten PCR-Produkts in pSL16-CRE an dem entsprechendenWebsites pSL16-CRE-HPH unter Verwendung von T4 - DNA - Ligase gemäß Tabelle 3 zu erzeugen.
          Anmerkung: Die resultierende Cre Expressionsplasmids pSL16-CRE-HPH, einen selektierbaren Hygromycin B Marker trägt und eine Zentromer und episomal replizierender Vektor (Abbildung 2).
      3. Stellen Sie sicher , alle Konstrukte durch Spaltung mit geeigneten Restriktionsenzymen (zB Sal I / Pst I, den Einsatz aus dem Vektor auszuschneiden) gemäß Tabelle 4.
  2. Cre-Rekombinase-vermittelte Markerrettung
    1. Verwandeln pSL16-CRE-HPH in kompetente Zellen des KU70 - Knockout - Stamm nach dem Transformationsprotokoll in Punkt 1.2 beschriebenen. Platte transformierten Zellen auf YPD und Hygromycin B (YPDH) -Platten (enthaltend 400 ug / ml Hygromycin B), und Inkubieren bei 30 ° C für 2-3 Tage.
    2. Führen Kolonie - PCR gemäß Tabelle 5 unter Verwendung der Primer # 84 / # 85 zu identifizieren positiveKolonien pSL16-CRE-HPH-Plasmid nach der Transformation enthält.
      Anmerkung: Der Vorwärts - Primer # 84 und der Rückwärts - Primer # 85 sind innerhalb der kodierenden Region des hph - Gens befindet (Tabelle 1). Nur positive Klone, die ein spezifisches PCR-Produkt in der PCR-Reaktion zu erzeugen.
    3. Wählen Sie einen positiven Klon und impfen in 2 ml YPDH Medium und Inkubation in einem 30 ° C Schüttelinkubator bei 225 rpm über Nacht bis zur Sättigung. Messen Sie die Zelle OD 600 mit einem Spektralphotometer. Ernte der Zellen bei einer OD 600 von ~ 15. Zentrifuge bei 5.000 xg für 5 min bei Raumtemperatur und wäscht einmal mit 2 ml sterilem Wasser.
    4. Re-inokulieren Zellen in 2 ml YPD - Medium mit einer anfänglichen OD 600 von 0,1 und lassen die Zellen über Nacht in einem 30 ° C Schüttelinkubator bei 225 Upm wachsen. Streak die über Nacht Zellkultur auf YPD - Platten einzelne Kolonien 23 zu isolieren. Replica Platte Kolonien auf YPD, YPDH und Leucin-defizienten Platten 23 .
      Hinweis: Die Kolonien , die sowohl LEU2 - Marker und pSL16-CRE-HPH Plasmid , das nur auf YPD - Platten (Abbildung 3) verloren haben , wachsen können.

3. Löschen von Alkoholdehydrogenase und Alkohol-Oxidase-Gene

  1. Führen Sie eine Suche auf dem Y. lipolytica Genomdatenbank des Basic Local Alignment Search Tool (BLAST) mit Hilfe der Gen - Kandidaten für die 26 Löschung zu identifizieren. Geben Sie die Proteinsequenz von S. cerevisiae Alkoholdehydrogenase I in BLAST - Suchwerkzeug (http://www.genome.jp/tools-bin/search_sequence?prog=blast&db=yli&seqid=aa).
    Hinweis: Die BLAST - Suchwerkzeug die ähnlichsten Proteinsequenzen in der Y. zurück lipolytica Genomdatenbank.
  2. Konstruiere die Löschkassetten durch PCR mit den Primern # 7 und # 56 (Tabelle 1), und führen Restriktionsenzym - Verdau und Ligationsreaktionen unter Verwendung der gleichen Verfahren wie oben in 1.1 beschrieben.
  3. PrepNach dem Protokoll in Punkt 1.2 beschriebenen positiven Kolonien # 55, # 58 bis 81 # mit Primern zu identifizieren (Tabelle 1) sind kompetente Zellen des KU70 - Knockout - Stamm, Umwandlungen durchführen und PCR durchführen.
    Anmerkung: Als Beispiel wird das Verfahren für die YALI0E17787g Gendeletion ist in den 4 und 5 beschrieben. Die Wirkungen von 1 kb und 2 kb lange homologe Region auf homologe Rekombination Rate berichtet.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Ergebnisse

Die linearisierte Y. lipolytica - Expressionsvektor wurde in das Genom von Y. in die pBR Andockplattform eingefügt lipolytica Po1g Stamm von 27 eine einzige Crossover - Rekombination durchführen. Durch die schnelle chemische Transformationsverfahren unter Verwendung der in dieser Studie festgestellt, die linearisierte Y. lipolytica - Expressionsvektor wurde in den Wildtyp - Po1g Stamm bei einer Transformationseffizienz von> 100 KBE / ug D...

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Diskussion

Unser Ziel für diese Studie ist eine schnelle und effiziente Erzeugung von gezielten Gen-Knockout in der Y zu ermöglichen lipolytica Po1g Stamm. Mehrere Überlegungen müssen angegangen werden , um dies zu erreichen. Zunächst wird eine hohe Transformationseffizienz erforderlich. Somit ist eine effiziente und bequeme chemischen Transformationsprotokoll für die Y. lipolytica Po1g Stamm wurde in dieser Studie beschrieben. Die Verwendung von PEG-4000 ist ein kritischer Faktor für die erfolg...

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Offenlegungen

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Danksagungen

Wir danken für die finanzielle Unterstützung von der Nationalen Umweltagentur von Singapur (ETRP 1.201.102), die Competitive Research Program der National Research Foundation of Singapore (NRF-CRP5-2009-03), der Agentur für Wissenschaft, Technologie und Forschung von Singapur ( 1324004108), globale F & E-Projekt Programm, das Ministerium für Wissensökonomie, der Republik Korea (N0000677), die Defense Threat Reduction Agency (DTRA, HDTRA1-13-1-0037) und der synthetischen Biologie Initiative der National University of Singapore ( DPRT / 943/09/14).

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Reagenz/Material
Oligonukleotid-PrimerIntegrated DNA Technologies25 nmol DNA-Oligos
Y. lipolytica Stamm Po1gHefe BiotechLeucin auxotrophes Derivat des Wildtyp-Stammes W29 (ATCC 20460)
Vector pYLEX1Yeast BiotechFYY203-5MGY. lipolytica Expressionsvektor
E. coli TOP10InvitrogenFür die Klonierung und Vermehrung von Plasmiden
pGEM-T-Vektor PromegaA3600TA Klonierungsvektor
QIAprep Spin Miniprep KitQiagen27106Für die Plasmidisolierung
Wizard SV Gel und
PCR Clean-Up System		PromegaA9282Extrahieren Sie DNA-Fragmente aus Agarosegelen
und reinigen Sie PCR-Produkte aus einer Amplifikationsreaktion
Die iProof High-Fidelity
DNA-Polymerase		Bio-Rad172-5302High-Fidelity-DNA-Polymerase
BamHI New England BiolabsR0136SRestriktionsenzym
BglII New England BiolabsR0144LRestriktionsenzym
KpnINew England BiolabsR0142SRestriktionsenzym
NdeI New England BiolabsR0111SRestriktionsenzym
NotINew England BiolabsR0189LRestriktionsenzym
PmlINew England BiolabsR0532SRestriktionsenzym
PstI New England BiolabsR0140SRestriktionsenzym
SacIINew England BiolabsR0157SRestriktionsenzym
SalINew England BiolabsR0138SRestriktionsenzym
XhoINew England BiolabsR0146LRestriktionsenzym
T4 DNA-LigaseNew England BiolabsM0202L
Taq DNA-Polymerase& nbsp;Bio-RadM0267L
AmpicillinGibco-Life Technologies11593-027Antibiotika
Hygromycin BPAAP21-014Antibiotika
GeneRuler 1 kb DNA-LeiterThermo ScientificSM03121 kb DNA-Leiter
PEG4000Sigma95904-F
TrisPromegaH5135
EDTABio-Rad161-0729
Lachs Sperma DNAInvitrogen15-632-011
LithiumacetatSigma
EssigsäureSigma
Glasperlen (425-600 µ m)SigmaG8772
RNAse AThermo ScientificEN0531
DNA Loading FarbstoffThermo ScientificR0611
Bacto HefeextraktBD212750
Bacto PeptonBD211677
D-Glucose1. BaseBIO-1101
YNB ohne AminosäurenSigmaY0626
DO Supplement-LeuClontech630414
GlycerinSigmaG5516
Difco LB BouillonBD244620
Difco LB AgarBD244520
Bacto AgarBD214010
Ausrüstung
PCR-GerätBioradT100 Thermocycler
WasserbadMemmertWNB 14
Stationär-/Schüttel-InkubatorYihderLM-570RD
ThermoschüttlerAllshengMS-100
MikrozentrifugeEppendorf5424R
ZentrifugeEppendorf5810R
SpektralphotometerEppendorf BioPhotometer plus
Gel-ImagerGEAmersham Imager 600

Referenzen

  1. Jiménez-Bremont, J. F., Rodrìguez-Hernández, A. A., Rodrìguez-Kessler, M. Development and dimorphism of the yeast Yarrowia lipolytica. Dimorphic fungi: Their importance as models for differentiation and fungal pathogenesis. J, R. uiz-H. errera , 58-66 (2012).
  2. Coelho, M., Amaral, P., Belo, I. Yarrowia lipolytica: an industrial workhorse. Current research, technology and education topics in applied microbiology and microbial biotechnology. Méndez-Vilas, A. , 930-940 (2010).
  3. Martinez-Vazquez, A., et al. Identification of the transcription factor Znc1p, which regulates the yeast-to-hypha transition in the dimorphic yeast Yarrowia lipolytica. Plos One. 8 (6), e66790(2013).
  4. Richard, M., Quijano, R. R., Bezzate, S., Bordon-Pallier, F., Gaillardin, C. Tagging morphogenetic genes by insertional mutagenesis in the yeast Yarrowia lipolytica. J. Bacteriol. 183 (10), 3098-3107 (2001).
  5. Flores, C. L., Martìnez-Costa, O. H., Sánchez, V., Gancedo, C., Aragòn, J. J. The dimorphic yeast Yarrowia lipolytica possesses an atypical phosphofructokinase: characterization of the enzyme and its encoding gene. Microbiology. 151 (5), 1465-1474 (2005).
  6. Domìnguez, Á, et al. Non-conventional yeasts as hosts for heterologous protein production. Int. Microbiol. 1 (2), 131-142 (1998).
  7. Zinjarde, S. S. Food-related applications of Yarrowia lipolytica. Food Chem. 152, 1-10 (2014).
  8. Finogenova, T., Morgunov, I., Kamzolova, S., Chernyavskaya, O. Organic acid production by the yeast Yarrowia lipolytica: a review of prospects. Appl. Biochem. Micro+. 41 (5), 418-425 (2005).
  9. Groguenin, A., et al. Genetic engineering of the β-oxidation pathway in the yeast Yarrowia lipolytica to increase the production of aroma compounds. J. Mol. Catal. B-Enzym. 28 (2), 75-79 (2004).
  10. Meng, X., et al. Biodiesel production from oleaginous microorganisms. Renew. Energ. 34 (1), 1-5 (2009).
  11. Papanikolaou, S., Aggelis, G. Lipid production by Yarrowia lipolytica growing on industrial glycerol in a single-stage continuous culture. Bioresource Technol. 82 (1), 43-49 (2002).
  12. Tai, M., Stephanopoulos, G. Engineering the push and pull of lipid biosynthesis in oleaginous yeast Yarrowia lipolytica for biofuel production. Metab. Eng. 15, 1-9 (2013).
  13. Liu, H. H., Ji, X. J., Huang, H. Biotechnological applications of Yarrowia lipolytica: Past, present and future. Biotechnol. Adv. 33 (8), 1522-1546 (2015).
  14. Liu, L., Alper, H. S. Draft genome sequence of the oleaginous yeast Yarrowia lipolytica PO1f, a commonly used metabolic engineering host. Genome Announc. 2 (4), e00652-e00614 (2014).
  15. Dujon, B., et al. Genome evolution in yeasts. Nature. 430 (6995), 35-44 (2004).
  16. Chen, D. C., Beckerich, J. M., Gaillardin, C. One-step transformation of the dimorphic yeast Yarrowia lipolytica. Appl. Microbial. Biotechnol. 48 (2), 232-235 (1997).
  17. Wang, J. H., Hung, W., Tsai, S. H. High efficiency transformation by electroporation of Yarrowia lipolytica. J. Microbiol. 49 (3), 469-472 (2011).
  18. Matsuoka, M., et al. Analysis of regions essential for the function of chromosomal replicator sequences from Yarrowia lipolytica. Mol. Gen. Genet. 237 (3), 327-333 (1993).
  19. Kretzschmar, A., et al. Increased homologous integration frequency in Yarrowia lipolytica strains defective in non-homologous end-joining. Curr. Genet. 59 (1-2), 63-72 (2013).
  20. Lorenz, T. C. Polymerase Chain Reaction: Basic Protocol Plus Troubleshooting and Optimization Strategies. J. Vis. Exp. (63), e3998(2012).
  21. Kobs, G. Cloning blunt-end DNA fragments into the pGEM-T Vector Systems. Promega Notes. 62, 15-18 (1997).
  22. JoVE Science Education Database. Isolating Nucleic Acids from Yeast. Essentials of Biology 1: yeast, Drosophila and C. elegans. , JoVE. Cambridge, MA. Available from: http://www.jove.com/science-education/5096/isolating-nucleic-acids-from-yeast (2016).
  23. Sanders, E. R. Aseptic laboratory techniques: plating methods. J. Vis. Exp. (63), e3064(2012).
  24. Hegemann, J. H., Heick, S. B. Delete and repeat: a comprehensive toolkit for sequential gene knockout in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae. Methods Mol. Biol. 765, 189-206 (2011).
  25. Yamane, T., Sakai, H., Nagahama, K., Ogawa, T., Matsuoka, M. Dissection of centromeric DNA from yeast Yarrowia lipolytica and identification of protein-binding site required for plasmid transmission. J. Biosci. Bioeng. 105 (6), 571-578 (2008).
  26. McGinnis, S., Madden, T. L. BLAST: at the core of a powerful and diverse set of sequence analysis tools. Nucleic Acids Res. 32 ((Web Server issue)), W20-W25 (2004).
  27. Madzak, C., Tréton, B., Blanchin-Roland, S. Strong hybrid promoters and integrative expression/secretion vectors for quasi-constitutive expression of heterologous proteins in the yeast Yarrowia lipolytica. J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 2 (2), 207-216 (2000).
  28. Nicaud, J. M., Le Clainche, A., Le Dall, M. T., Wang, H., Gaillardin, C. Yarrowia lipolytica, a yeast model for the genetic studies of hydroxy fatty acids biotransformation into lactones. J. Mol. Catal. B-Enzym. 5 (1), 175-181 (1998).

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Nachdrucke und Genehmigungen

Schlagwörter

Yarrowia lipolyticahomologe RekombinationGendeletionKU70 KnockoutDNA TransformationCre LoxP SystemBiokraftstoffproduktiongezielte Genst rung
Genetic Engineering eines Unconventional Hefe für Erneuerbare Biokraftstoff- und Biochemie Produktion
Kontakt
Rückmeldung an Ihre Bibliothek

Datenschutz

Nutzungsbedingungen

Richtlinien

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle Rechte vorbehalten.