Method Article

Reinigung von nativem Komplexe für die Strukturstudie ein Tandem Affinity Tag-Methode unter Einsatz

DOI:

10.3791/54389

July 27th, 2016

In This Article

Summary

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Die Methode der Tandem-Affinitätsreinigung (TAP) wurde ausgiebig verwendet, um native Komplexe aus zellulärem Extrakt, hauptsächlich eukaryotisch, für die Proteomik zu isolieren. Hier stellen wir ein TAP-Methodenprotokoll vor, das für die Aufreinigung von nativen Komplexen für Strukturstudien optimiert ist.

Abstract

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Affinitätsreinigung Ansätze wurden erfolgreich für Proteomik Charakterisierung zu isolieren nativen Komplexe. Strukturelle Heterogenität und ein gewisses Maß an Heterogenität der Zusammensetzung eines Komplexes nicht behindern in der Regel Fortschritte in solchen Studien durch. Im Gegensatz dazu ist ein Komplex für die strukturelle Charakterisierung bestimmt sind, sollten in einem Zustand gereinigt werden, die sowohl kompositionell und strukturell homogener als auch in einer höheren Konzentration als für die Proteomik erforderlich ist. Seit kurzem gibt es für die Strukturbestimmung großer makromolekularer Komplexe in der Anwendung von Elektronenmikroskopie signifikante Fortschritte. Dies hat das Interesse an Ansätzen erhöhte auf native Komplexe von ausreichender Qualität und Quantität für die Strukturbestimmung mittels Elektronenmikroskopie zu reinigen. Die Tandem Affinity Purification (TAP) Verfahren optimiert wurde , um eine 18-Untereinheit, ~ 0,8 MDa ribonucleoprotein Montage von Bäckerhefe (Saccharomyces cerevisiae) zu extrahieren und zu reinigen

Introduction

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Viele wichtige zelluläre Prozesse werden 1 von großen Protein- und Protein-RNA - Komplexen durchgeführt. Ein wesentlicher Engpass biophysikalische und strukturelle Untersuchungen solcher Komplexe zur Durchführung wird sie in geeigneter Qualität (dh Homogenität) und in einer geeigneten Konzentration zu erhalten. Isolieren eines Komplexes aus einer natürlichen Quelle hat viele Vorteile, einschließlich der Beibehaltung relevanten posttranskriptionales und / oder translationale Modifikationen von Untereinheiten und die richtige komplexe Montage sicherstellt. Jedoch sind große Zellkomplexe oft in einer Zelle bei einer niedrigen Kopienzahl und die Reini....

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Protocol

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Hinweis: Das folgende Protokoll zur Reinigung eines Komplexes von 4 l Zellkultur entwickelt wurde, etwa 40 g Nassgewicht der Zellen. Nach der Vorbereitung sollten alle Puffer bei 4 ° C gelagert und innerhalb eines Monats nach ihrer Herstellung verwendet. Reduktionsmittel und Proteaseinhibitoren werden nur Puffer zugesetzt unmittelbar vor der Verwendung.

1. Herstellung von Gesamtzellextrakt für Tandem Affinity Purification

  1. Das Wachstum von S. cerevisiae - Zellen
    1. Streak die gewünschte TAP markiert S. cerevisiae - Stamm aus dem Speicher (-80 ° C) auf eine Hefe - Pepton Dextrose (YPD) Platte.....

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Results

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Eine modifizierte TAP Methode wurde verwendet , von S. zu reinigen cerevisiae die U1 snRNP, einen 18-Untereinheit Ribonukleoproteinkomplex. Eine anfängliche TAP Reinigung des Komplexes nach dem veröffentlichten Protokoll 2,3 ergab einen Komplex, der heterogene erschienen, die Migration als drei Bänder auf einem silbergefärbten nativen Polyacrylamidgel (2A). Mehrere Runden der Optimierung des TAP - Methode ergab einen Komplex, der in erster Li.......

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Discussion

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Die TAP-Methode verwendet zwei Tags, die eine Notwendigkeit für strenge und selektive Bindung an ein Affinitätsharz mit dem Wunsch, in der Nähe von physiologischen Lösung Bedingungen aufrechtzuerhalten leichen. Diese Balance dient, mit zusammenwirkenden Faktor (en) für die Nachreinigung Charakterisierung stabile Wechselwirkung (en) des markierten Proteins zu bewahren. Darüber hinaus markiert einzelne TAP ORFs von einer kommerziellen Quelle erhältlich sind, so dass man jeden Hefestamm mit einem markierten Proteins für je.......

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Disclosures

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Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Acknowledgements

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Die Autoren danken Nikolaus Grigorieff für die Unterstützung und den Rat. Wir danken Anna Loveland, Axel Brilot, Chen Xu und Mike Rigney für hilfreiche Diskussionen und EM-Anleitungen. Diese Arbeit wurde von der National Science Foundation, Award No. 1157892, finanziert. Die Brandeis EM-Einrichtung wird durch den Zuschuss P01 GM62580 der National Institutes of Health unterstützt.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
S. cerevisiae TAP-getaggter StammOpen BiosystemsYSC1177Dies ist der primäre Hefestamm, der zur Entwicklung des TAP-Protokolls verwendet wurde. Sein Hintergrund ist S288C: ATCC 201388: MATa, his3Δ 1, leu2Δ 0, met15Δ 0, ura3Δ 0, SNU71::TAP::HIS3MX6
KaffeemühleMr. CoffeeIDS77Wird für die Zelllyse
verwendet Hämozytometer, Bright LineHausser Scientific3120Wird verwendet, um die Zelllyse
zu beurteilen JA 9.100 Zentrifugenrotor Beckman Coulter, Inc.Wird zur Ernte der Hefezellen
JA 20 Festwinkel-ZentrifugenrotorBeckman Coulter, Inc. verwendet.Wird verwendet, um den Zellextrakt von unlöslichem Zellmaterial
zu reinigen Ti 60 FestwinkelzentrifugenrotorBeckman Coulter, Inc.Wird verwendet, um den löslichen Zellextrakt weiter zu reinigen
ThermomixerEppendorfR5355Temperaturgesteuerter Schüttler
Novex GelsystemThermo Fisher Scientific 
IgG-HarzGE Healthcare17-0969-01Sepharose 6 schnell fließendes
Calmodulin-HarzAgilent Technologies, Inc.214303Affinitätsharz
Proteasehemmer Cocktail, Mini-TablettenSigma Aldrich589297Mini cOmplete ultra EDTA-freie Tabletten
Protease-Inhibitor-Cocktail, großeTabletten Sigma Aldrich5892953cOmplete ultra EDTA-freie Tabletten
Phenylmethansulfonylfluorid (PMSF)Gelöst in Isopropanol
2 ml Bio-Spin-SäuleBio-Rad Laboratorien, Inc.7326008Wird zum Verpacken und Waschen der Calmodulin-Säule
10 ml Poly-Prep-SäuleBio-Rad Laboratories, Inc. verwendet.7311550Wird zum Verpacken und Waschen des IgG-Harzes verwendet
native PAGE Bis-Tris GeleLife TechnologiesBN1002Novex NativePAGE Bis-Tris 4 - 16% vorgefertigte Polyacrylamid-Gele NativeMark
ProteinstandardThermo FisherScientific LC0725Ungefärbter Proteinstandard für native PAGE. Belastung 7,5 μ L für ein silberbeflecktes Gel und 5 μ l für ein SYPRO Rubin gefärbtes Gel
Precast SDS PAGE Bis-Tris GeleLife TechnologiesNP0321Novex Nu-PAGE Bis-Tris 4 - 12% vorgefertigte Polyacrylamid-Gele 
PageRuler ProteinstandardThermo Fisher Scientific26614Ungefärbter Proteinstandard für Western Blotting
SDS LaufpufferLife TechnologiesNP00011x NuPAGE MOPS SDS Buffer
TAP AntikörperThermo Fisher ScientificPrimärer Antikörper gegen CBP-Tag
Sekundärer AntikörperThermo Fisher Scientific31341Ziegen-Anti-Kaninchen-Phosphatase, konjugiert BCIP
/NBTThermo Fisher Scientific340425-Brom-4-chlor-3-indolyl-phosphat/nitroblaues Tetrazolium 
Dialaysis-EinheitenThermo Fisher Scientific88401Slide-A-Lyzer Mini-Dialyseeinheiten
Zentrifugalfiltereinheiten, 100 kDa MWCOEMD MilliporeUFC5100008Amicon Ultra-0.5 Zentrifugalfiltereinheit mit Ultracel-100-Membran
Reinigungsmittelabsorbierende KügelchenBio-Rad Laboratories, Inc.1523920Bio-bead SM-2 Absorptionsmittel
SYBR Green IIThermo Fisher ScientificS-7564Fluoreszenzfarbstoff für die Nukleinsäurefärbung, bei der Detektion mit vorhandenem SYPRO Ruby eine Anregungswellenlänge von 488 nm und eine Emissionswellenlänge von 532 nm verwenden
SYPRO RubyMolekulare SondenS-12000Fluoreszenzfarbstoff für die Proteinfärbung, bei der Detektion mit SYBR Green II wird eine Anregungswellenlänge von 457 nm und eine Emissionswellenlänge von 670 nm verwendet
KupfergitterElektronenmikroskopieWissenschaften G400-CP
Precast CAB1001 .

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Gavin, A. C., et al. Functional organization of the yeast proteome by systematic analysis of protein complexes. Nature. 415 (6868), 141-147 (2002).
  2. Rigaut, G., Shevchenko, A., Rutz, B., Wilm, M., Mann, M., Seraphin, B.

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Tandem Affinity PurificationNative Complex PurificationStructural Homogeneity AssessmentYeast Cell LysisIgG Sepharose BindingTEV Protease CleavageCalmodulin Affinity BindingNegative Stain EMSDS PAGE AnalysisMass Spectrometry Identification

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