Ein Abonnement von JoVE ist erforderlich, um diesen Inhalt anzuzeigen. Melden Sie sich an oder beginnen Sie noch heute mit einer kostenlosen Testphase.

Methodenartikel

Herstellung von CD4

8.2K Aufrufe

⸱

DOI:

10.3791/54569

⸱

8. November 2016

 , 
1Instituto de Investigación en Ciencias Básicas y Aplicadas, Centro de Investigación en Dinámica Celular, Laboratorio de Glicobiología Humana y Diagnóstico Molecular, Universidad Autónoma del Estado de Morelos

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir beschreiben einen Standardantikörperfärbung Protokoll für den Einsatz in der Mikroskopie , die Membran Expression und Lokalisation von Gangliosiden in ruhenden und aktivierten humanen naiven CD4 + T - Zellen zu bestimmen. mit <40.000 Zellen sind auch Echtzeit-PCR-Experimente beschrieben, die keine zusätzlichen Low-Input-RNA-Kits erfordern.

Zusammenfassung

Die hierin beschriebenen Verfahren zur Aktivierung von naiven CD4 + T - Zellen in Suspension und deren Einhaltung in Deck für die konfokale Mikroskopie Analyse ermöglichen die räumliche Lokalisierung und Visualisierung von Gangliosiden in CD4 + T - Zellaktivierung beteiligt, dass Komplement expression profiling Experimente wie Durchflusszytometrie, Western Blotting oder real-time PCR. Die Quantifizierung von Gangliosid Expression durch Durchflusscytometrie und ihre zelluläre Lokalisation durch Mikroskopie kann durch die Verwendung von anti-Gangliosid-Antikörper mit hoher Affinität und Spezifität erhalten werden. Dennoch beinhaltet eine angemessene Handhabung von Zellen in Suspension die Behandlung von Kulturplatten die notwendige Haftung für Fluoreszenz oder konfokalen Mikroskopie Erwerb erforderlich zu fördern. In dieser Arbeit beschreiben wir ein Protokoll zur Bestimmung GD3 und GD2 Gangliosidexpression und Kolokalisation mit dem TCR bei naiven CD4 + T - Zell - Aktivierung. Auch Real-time PCR Experimente <40.000 Zellen verwendet werden für die Bestimmung des GD3 und GM2 / GD2-Synthase-Gene beschrieben, kann das Gen-Analyse-Experimente zeigen, mit einer geringen Anzahl von Zellen und ohne die Notwendigkeit von zusätzlichen niedrigen Eingangs RNA Kits durchgeführt werden.

Einleitung

Die CD4 + T - Zellen dirigieren , die Immunantwort durch ihre Effektorfunktionen nach Aktivierung durch Antigen - präsentierende Zellen 1. Die Untersuchung der zellulären Mechanismen, die während der Aktivierung moduliert werden können Einblick in eine grundlegende Prozess der Immunfunktion. Jedoch kann die Studie von naiven CD4 + T - Zellen kompliziert sein , weil sie eine sehr kleine Population von Zellen im Blut Peripherie 2 darstellen.

Durch Fluoreszenzmikroskopie Mehrere Berichte haben die Lokalisierung verschiedener Moleküle beteiligt in CD4 + T - Zell - Aktivierung untersucht, vor allem Proteine an die Plasmamembran 3 verbunden. Die Ganglioside sind Sialinsäure Glycosphingolipide und obwohl sie in Nervenzellen intensiv untersucht worden , wo sie reichlich vorhanden, andere Zellen, wie Immunzellen sind auch ausdrücken Ganglioside mit biologisch relevanten Funktionen 4,5. Wir berichteten bereits that während der Aktivierung des menschlichen naiven CD4 + T - Zellen gibt es eine Aufregulation der α2,8 Sialyltransferase ST8Sia 1 (GD3 - Synthase) und die GM2 / GD2 - Synthase, dass die signifikante Oberflächen neoexpression von GD2 induzieren und die Hochregulation von GD3 Gangliosid 6. Weitere Studien von GD3, GD2 und andere Ganglioside in Immunzellen notwendig ist, ein Protein-basierte Teilansicht der Immunfunktion zu ergänzen.

Üblicherweise wird die Untersuchung von Gangliosid - Expression auf Techniken wie Dünnschichtchromatographie (TLC) 7 basiert, aber diese Technik die räumliche Lokalisierung von Gangliosiden an der Plasmamembran oder in subzellulären Kompartimenten nicht erlaubt, biologische Analyse begrenzen.

In dieser Arbeit beschreiben wir ein Protokoll für die Antikörper-vermittelte Identifizierung und Lokalisierung von GD3 und GD2 - Ganglioside in der menschlichen naiven CD4 + T - Zellen und PBMCs nach anti-CD3 / anti-CD28 - Aktivierung. Mit diesem Protokoll es is auch möglich , das Gen und molekularen Expression von Gangliosiden in einer geringen Anzahl von Zellen in Suspension mit dem Erwerb von Bildern hoher Qualität 6, unter Berücksichtigung der geringen Größe von Lymphozyten (9 & mgr; m) zu analysieren.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Protokoll

Periphere Blut von gesunden männlichen Spendern wurde mit Einwilligung nach Aufklärung und Zustimmung des Ausschusses für Bioethik des Centro de Investigación en Dinámica Celular- Universidad Autónoma del Estado de Morelos erhalten.

1. Isolierung und Aktivierung von humanen naiven CD4 + T - Zellen

  1. Sammeln 2 ml peripherem Blut abgeleitet von gesunden menschlichen Spendern durch informierte Zustimmung und verdünnt mit 2 ml sterilem PBS-EDTA (1x phosphatgepufferter Salzlösung (PBS), 2 mM EDTA, pH 7,4). Fügen Sie das verdünnte Blut langsam oben auf 3 ml Saccharose - Lösung mit 1,077 Dichte wie zuvor 8 beschrieben.
    Hinweis: differentielle Migration während der Zentrifugation durch Unterschiede in der Dichte verursacht wird Erythrozyten verursachen vollständig und eine Schicht aus weniger dichten mononukleären Zellen sedimentieren oberhalb bilden. 2 ml von peripherem Blut etwa 0,5 x 10 6 naive CD4 + T - Zellen nach der purificati rendernauf Schritte.
  2. Zentrifuge 30 min bei 250 × g bei 21 ° C (Verwendung Rotor für Rundbodenröhrchen mit festen Winkel von 30 mm) ohne Unterbrechung des Gradienten von peripheren mononukleären Blutzellen (PBMCs) zu erzeugen. Nach der Zentrifugation kann die PBMCs eindeutig als weißer Ring beobachtet werden. Sammeln Sie die PBMCs mit einer Pipette und Transfer zum sterilen Röhrchen zum Waschen.
  3. Nach drei Waschungen mit PBS-EDTA - Lösung bei 250 × g für 10 min ablaufen zur Reinigung von naiven CD4 + T - Zellen. Sortierverfahren oder mehrere Arten von Reinigungs Kits sind für diesen Zweck zur Verfügung. Vorzugsweise verwenden> 1 x 10 7 PBMCs zur Reinigung.
    1. Reinige naive CD4 + T - Zellen durch negative Selektion mit magnetischen Kügelchen. Führen negative Selektion mit anti CD45RO, CD8, CD14, CD15, CD16, CD19, CD25, CD34, CD36, CD56, CD123, anti-TCRγ / δ, anti-HLA-DR und CD235a (Glycophorin A) Antikörper. Beurteilen Sie den Prozentsatz der Reinheit durch die Bestimmung CD4 + CD45RA + Zellen durch fLow-Zytometrie.
      Hinweis: Optional, gehen über Nacht Inkubation von PBMCs bei 37 ° C und 5% CO 2 mit einer Dichte von 1 x 10 6 Zellen / ml in 10 ml supplementiertem Medium monocyte Adhärenz zu fördern und weiterhin mit naiver CD4 + T - Zell - Reinigung. Die effiziente Gewinnung von naiven CD4 + T - Zellen aus peripherem Blut hängt weitgehend von dem Reinigungssystem.
  4. Vorbereitung 24-well-Zellkulturplatten durch Zugabe von 250 & mgr; l pro Vertiefung von PBS mit 5 & mgr; g / ml anti CD3 monoklonaler Antikörper und Inkubation bei 37 ° C mindestens 2 h für.
    Hinweis: Platten mit 96 Vertiefungen verwendet werden , wenn eine kleinere Anzahl von naiven CD4 + T - Zellen verwendet werden (zB 2 x10 4 -1 × 10 5).
  5. Entfernen Sie die anti CD3-Antikörper Verdünnung aus dem 24-Loch-oder 96-Well-Platten und waschen Sie die Platten zweimal mit sterilen 1x PBS.
  6. Verdünnen der naiven CD4 + T - Zellen mit> 95% Reinheit (CD4 +CD45RA +) auf eine Dichte von 1 x 10 6 Zellen / ml in advanced RPMI 1640 - Medium mit 3% fötalem Rinderserum (oder RPMI mit 10% Serum ergänzt), 2 mM Glutamin und Antibiotika (1 U / ml Penicillin, 1 & mgr; g / ml Streptomycin).
    Hinweis: Wenn Gangliosid Lokalisierung in PBMCs erforderlich ist, folgen dem gleichen Protokoll zur Verdünnung und Stimulation wie unten beschrieben.
  7. In 500 ul der Zellverdünnung zu anti CD3-beschichteten Vertiefungen und auf nicht-beschichteten Vertiefungen (Kontrollzellen) in der 24-Well-Platte. Alternativ dazu werden 100 ul der Zellverdünnung in die Vertiefungen der Platte mit 96 Vertiefungen.
  8. Füllen Sie die Stimulationsbedingungen von naiven CD4 + T - Zellen in anti CD3 - beschichteten Vertiefungen durch Zugabe von 1 & mgr; g / ml anti - CD28 - Antikörper.
  9. Halten die ruhenden CD4 + T - Zellen als Kontrolle in den nicht-beschichteten Vertiefungen ohne Zusatz von anti CD28 Antikörper. Inkubieren Sie die ruhenden und aktivierten CD4 + T - Zellen für 0-72 h unter Standardbedingungen von 37 °C und 5% CO 2.
  10. Um zu überprüfen , eine ausreichende Aktivierung zu bewerten durch Durchflusszytometrie der Expression des CD69 frühen Aktivierungsmarker (16 Stunden nach der Aktivierung) oder CD25 späten Aktivierungsmarkers (48 Stunden nach der Aktivierung) in ruhenden und aktivierten naiven CD4 + T bei 37 ° C inkubierten Zellen und 5% CO 2 in Abwesenheit oder Anwesenheit von anti CD3 / CD28 - Antikörper 9,10.

2. Die Einhaltung von ruhenden und aktivierten Naïve CD4 + T - Zellen

  1. Sterilisieren 12 mm runden Deckgläsern durch Autoklavierung und UV-Lichtexposition für mindestens 15 min.
  2. Platz Deck in sterile 24-Well-Zellkulturplatten.
    Hinweis: Bei Kulturen , die mit weniger als 1 x 10 5 Zellen es bevorzugt ist , mit angepaßten kleinen Vertiefungen slide Kammern zu verwenden Dispersion von Zellen in dem Deckglas zu verhindern.
  3. Coat Deckgläser (oder Gleitkammer) mit 200 & mgr; l Poly-L-Lysin (MG 150-300 KDa) 0,1% (w / v) Lösung und Inkubation für 5 min bei room Temperatur (RT), zu entfernen und trocken für mindestens 1 Stunde bei RT.
  4. Vorsichtig mischen und sammeln Sie die ruhenden und aktivierten naiven CD4 + T - Zellen aus den 24-Well - Platten. Zählen Sie die Zellen und bei Bedarf anpassen mit frischem ergänzten Medium zu übertragen , 1 x 10 5 Zellen auf die Poly-L-Lysin beschichtete Deckgläser. Inkubieren der Zellen für mindestens 6 Stunden bei 37 o C und 5% CO 2.

3. Sammeln und Fixierung von ruhenden und aktivierten Naïve CD4 + T - Zellen

  1. Das Medium von kultivierten ruhenden und aktivierten naiven CD4 + T - Zellen vorsichtig entfernen.
  2. In 500 ul RT sterilem PBS langsam.
    Hinweis: vorsichtige Zugabe und Entnahme von Lösungen aus den Vertiefungen verhindert, dass die Ablösung von Zellen aus dem Deckglas.
  3. Entsorgen Sie die PBS und fügen Sie eine weitere 500 ul PBS gründlich Kulturmedien entfernen.
  4. Fixieren Sie die Zellen durch Zugabe von 500 & mgr; l filtrierte 4% Paraformaldehyd (filtRation entfernt Mikropartikel, die mit Mikroskopie-Analyse) und Inkubation für 30 min bei RT (bevorzugt) oder über Nacht bei 4 ° C stören können.
    Achtung: Paraformaldehyd ist eine giftige und flüchtige Verbindung. Es ist bekannt, ein menschliches Karzinogen zu sein. Verwenden Sie sorgfältig mit einem geeigneten Sicherheitsprotokoll.
  5. Entfernen Sie die Fixiermittel und waschen mindestens zweimal mit PBS bei RT.
  6. Fahren Sie mit dem nächsten Schritt oder halten die Plattenvertiefungen mit 500 ul PBS bei 4 ° C für mehrere Tage, bis Färbung.
    Hinweis: Sterility während dieses Prozesses hilft das Wachstum von Mikroorganismen zu vermeiden.

4. Die Färbung, Montage und Visualisierung durch konfokale Mikroskopie

  1. Entfernen Sie die PBS aus den Vertiefungen. Hinzufügen 500 ul kaltem Blockierungspuffer (1x PBS, 0,5% Standardqualität Rinderserumalbumin, 1% fötalem Rinderserum, pH 7,4). Inkubieren für 20 Minuten auf Eis.
  2. Entfernen Sie den Blockierungspuffer sorgfältig und fügen Sie die primären Antikörper (anti Ganglioside GD3 Klon R24, GD2 Klon 14G2a),PE-konjugiertem anti CD25 und APC-konjugiertem anti-TCR und Isotypen in Blockierungspuffer auf 2,5 & mgr; g / ml verdünnt Kontrollen.
  3. Inkubiere 2 h auf Eis oder über Nacht bei 4 ° C.
    Hinweis: Langsam orbitale Bewegung bevorzugt.
  4. Entfernen Sie den Antikörper vorsichtig und langsam mit 500 ul PBS. Zweimal wiederholen.
  5. Fügen Sie die sekundären Antikörper (FITC konjugiertem anti IgG3 für R24 ​​anti GD3, Alexa Fluor 488 konjugiert oder Alexa Fluor 647-konjugiertem anti IgG2a für 14G2a anti GD2) verdünnt Puffer auf 0,1 & mgr; g / ml in Blocking.
  6. Inkubieren für 1 Stunde auf Eis im Dunkeln ohne Schütteln.
  7. Waschen dreimal in PBS wie in 4.4) beschrieben. Halten Sie die Vertiefungen mit PBS genug, die Entwässerung von Proben zu vermeiden.
  8. Hinzufügen Hoechst 333.258 stain verdünnt in PBS auf 0,1 & mgr; g / ml.
  9. Inkubiere 15 min bei RT und zu entfernen. Waschen dreimal in PBS.
  10. Legen Sie die Folien auf einem Papiertuch und fügen Sie 20 ul Befestigungslösung (50% Glycerin in PBS) oder kommerzielle Montagelösungs zu vermeiden, Fading und Abschrecken von Proben.
  11. holen Sie vorsichtig das Deckglas mit einer feinen Pinzette und legen Sie es auf die Montagelösung. Sicherzustellen, dass die Seite der Deck wo Zellen gebunden sind in Kontakt mit der Lösung ist. Verschließen Sie die Deckgläser mit Nagellack und analysieren Fluoreszenz oder konfokalen Mikroskopie.

5. Isolierung von RNA

  1. Bereiten anti CD3-Antikörper (5 ug / ml) beschichtete 96-Well-Platten. Inkubieren 4 x 10 4 naiven CD4 + T - Zellen / Vertiefung in 100 ul Kulturmedium , supplementiert mit anti CD28 - Antikörper (1 ug / ml) , um den Stimulus zu vervollständigen. Inkubieren bei 37 ° C und 5% CO 2 für 0-72 Stunden.
  2. Nach verschiedenen Post-Aktivierungszeiten setzen die Zellen in einem Reaktionsgefäß.
  3. Hinzufügen 500 ul PBS und Zentrifugation bei 250 xg für 5 min bei RT.
  4. Entfernen Sie den Überstand und 1ml Trizolreagenz.
  5. Inkubieren für 5 min bei RT und halten Sie die Probe bei -8076; C für mindestens 24 Std. Fahren Sie mit der RNA-Isolierung, wenn nötig.
    Hinweis: Verlassen der Probe bei -80 ° C für mindestens 24 Stunden verbessert RNA-Ausbeute. Verwendung von Handschuhen Auch ist wichtig, RNA-Abbau durch RNasen zu vermeiden.
  6. Abzutauen die Probe durch Inkubation bei 37 ° C für 2 min in einem Wasserbad.
  7. In 200 ul Chloroform und kräftig mit der Hand für 30 Sekunden (gegen aggressive Mischung von RNA vermeiden durch Vortexen). Inkubiere 5 min bei RT.
  8. Zentrifuge 15 min bei 12000 × g bei 4 ° C.
  9. Wiederherstellen der wässrigen Phase in ein neues Mikrozentrifugenröhrchen.
  10. In 500 ul Isopropanol und wird das Röhrchen dreimal.
  11. Inkubiere 10 min bei RT und zentrifugieren für 10 min bei 12.000 × g bei 4 ° C.
  12. Überstand verwerfen durch Umdrehen.
  13. 1 ml eiskaltem 75% Ethanol und Zentrifuge 10 min bei 12000 × g bei 4 ° C.
  14. Vollständig den Überstand verwerfen und öffnen, indem man den Deckel des Rohres das RNA-Pellet trocknen.
    Nichte: An diesem Punkt ist das Pellet nicht deutlich sichtbar. Fahre dennoch fort.
  15. Das Pellet in 20 ul UPW Wasser. Berechnen der Konzentration und Reinheit von Nukleinsäuren durch Messen der 260 nm und 280 nm Extinktion unter Verwendung von Nanodrop.
  16. Gehen Sie sorgfältig, um die Synthese von cDNA mit einer herkömmlichen Reverse-Transkriptase-Kit und nach dem Herstellerprotokoll.
    Anmerkung: Ungefähr 0,5-2 & mgr; g RNA wird erhalten aus 4 x 10 4 naiven CD4 + T - Zellen. cDNA kann von 100 ng RNA verwendet, und in Echtzeit-PCR-Reaktionen, ohne die Notwendigkeit für niedrige Eingangs RNA Kits synthetisiert werden.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Ergebnisse

Das Protokoll in diesem Manuskript beschrieben macht eine gute Qualität der gezüchteten und eingehalten ruhenden und aktivierten menschlichen naiven CD4 + T - Zellen (Abbildung 1). Die aktivierten CD4 + T - Zellen zeigen die charakteristischen proliferative Profil (1B) im Vergleich zu dem Ruhezustand (1A). Der CD25 späten Aktivierungsmarker ist nützlich , um die effiziente Aktivierung bei 72 h durch konfokale Mikros...

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Diskussion

Das beschriebene Protokoll kann verwendet werden , Ganglioside oder Proteine in Zellsuspensionen von CD4 + T - Zellen oder andere Immunzellen (zB PMBCs, 5) aus einer kleinen Anzahl von Zellen ausgehend zu lokalisieren. Aufgrund der geringen Größe von T-Zellen und nicht-haftenden Eigenschaften, den Erwerb von fluoreszenzmikroskopische Bilder führt zu einer schlechten Informationen oder niedriger Qualität, wenn die Zellen nicht richtig eingehalten werden.

D...

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Offenlegungen

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Danksagungen

Wir danken Dr. José Luis Daniotti für seine Kommentare. Wir danken Dr. J. Arturo Pimentel und dem Laboratorio Nacional de Microscopìa Avanzada-UNAM für die Unterstützung bei der Aufnahme der konfokalen Bilder. I.M.-D. und T.M.V.C. wurden durch Zuschüsse 157634 und 253596 des Consejo Nacional de Ciencia y Tecnologìa (CONACYT), der Sociedad Latinoamericana de Glicobiologìa, A.C. T.M.V.-C. unterstützt. ist Stipendiat (245192) von CONACYT. Wir danken auch der Roten Temática Glicociencia en Salud - CONACYT (253596).

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Erweiterter RPMI 1640 Thermo Fisher Scientific12633-012Ergänzt mit 3 % FBS-Maus-Anti-Human-CD3-Antikörper
eBioscience16-0037-81OKT3-Klonmaus
gegen Human-CD28-AntikörperEbioscience16-0288-81CD28.6-Klon-Maus-Anti-Human-GD3
nbsp; AntikörperAbcamab11779R24-Klon-Maus-Anti-Human-GD2-Antikörper
Santa Cruz Biotechnologiesc-5383114G2a Klon
FITC-konjugierter Anti-Maus-IgG3
-Antikörper		Abcamab97259
Alexa Fluor 488 konjugierter AntimausThermo Fisher Scieni¡ tificA-21131
IgG2a Antikörper
Alexa Fluor 647 konjugiertes AntimausThermo Fisher Scieni¡ tificA-21241
IgG2a Antikörper
Hoechst 333258Sigma-Aldrich861405
  Ficoll Paque-PlusGE17-1440-02 
Trizol ReagenzInvitrogen15596-026
Naive CD4+ T-Zell-Isolationskit II, humanMACS Miltenyi Biotec130-094-131
BD FACSAria IIBD BiosciencesSortierung 
Nunc Lab-tek Kammer-ObjektträgersystemSigma-AldrichC7182
Olympus FV 1000 Konfokales Lasermikroskop (Olympus)OlympusUpright BX61WI und IX81 
Vorwärtssequenz Primer GD3 Synthase5&akut;-GAGCGTTCAGGAAACAAATGG- 3&akut;Ref. 7
Reverse-Sequenz-Primer GD3-Synthase5&akut;-CCTGTGGGAAGAGAGAGTAAG-3&akut;Ref. 7
Vorwärtssequenz-Primer GM2/GD2-Synthase5&akut;-CAACACAGCAGACACAGTCC-3&akut;Ref. 7
Primer für Reverse-Sequenz GM2/GD2-Synthase5&akut;-GTGGCAATCGTGACTAGAGC-3&akut;Nr. 7
&

Referenzen

  1. Mazzon, C., Viola, A. From tango to quadrilla: current views of the immunological synapse. Cell Adh Migr. 1 (1), 7-12 (2007).
  2. Hamann, D., Pa Baars,, Hooibrink, B., van Lier, R. W. Heterogeneity of the human CD4+ T-cell population: two distinct CD4+ T-cell subsets characterized by coexpression of CD45RA and CD45RO isoforms. Blood. 88 (9), 3513-3521 (1996).
  3. Zhong, L., Zhang, Z., Lu, X., Liu, S., Chen, C. Y., Chen, Z. W. NSOM / QD-Based Visualization of GM1 Serving as Platforms for TCR / CD3 Mediated T-Cell Activation. Biomed Res Int. , 276498(2013).
  4. Nagafuku, M., Okuyama, K., et al. PNAS Plus: CD4 and CD8 T cells require different membrane gangliosides for activation. Procs Natl Acad Sci USA. 109 (6), E336-E342 (2012).
  5. Schnaar, R. L., Gerardy-Schahn, R., Hildebrandt, H. Sialic acids in the brain: gangliosides and polysialic acid in nervous system development, stability, disease, and regeneration. Physiol Rev. 94, 461-518 (2014).
  6. Villanueva-Cabello, T. M., Mollicone, R., Cruz-Muñoz, M. E., Lòpez-Guerrero, D. V., Martìnez-Duncker, I. Activation of human naïve Th cells increases surface expression of GD3 and induces neoexpression of GD2 that colocalize with TCR clusters. Glycobiology. 25 (12), 1454-1464 (2015).
  7. Müthing, J. TLC in structure and recognition studies of glycosphingolipids. Methods Mol Biol. 76 (17), 183-195 (1998).
  8. de Almeida, M. C., Silva, A. C., Barral, A., Barral Netto, M. A simple method for human peripheral blood monocyte isolation. Mem Inst Oswaldo Cruz. 95 (2), 221-223 (2000).
  9. O'Neil-Andersen, N. J., Lawrence, D. A. Differential modulation of surface and intracellular protein expression by T cells after stimulation in the presence of monensin or brefeldin A. Clin Diagn Lab Immunol. 9 (2), 243-250 (2002).
  10. Mannering, S. I., Zhong, J., Cheers, C. T-cell activation, proliferation and apoptosis in primary Listeria monocytogenes infection. Immunology. 106 (1), 87-95 (2002).
  11. Marconi, S., Acler, M., et al. Anti-GD2-like IgM autoreactivity in multiple sclerosis patients. Mult Scler. 12 (3), 302-308 (2006).
  12. Park, J. E., Wu, D. Y., et al. Fine specificity of natural killer T cells against GD3 ganglioside and identification of GM3 as an inhibitory natural killer T-cell ligand. Immunology. 123 (1), 145-155 (2008).
  13. Simon, B. M., Malisan, F., Testi, R., Nicotera, P., Leist, M. Disialoganglioside GD3 is released by microglia and induces oligodendrocyte apoptosis. Cell Death Differ. 9 (7), 758-767 (2002).
  14. Beske, O., Reichelt, M., Taylor, M. P., Kirkegaard, K., Andino, R. Poliovirus infection blocks ERGIC-to-Golgi trafficking and induces microtubule-dependent disruption of the Golgi complex. J Cell Sci. 120 (18), 3207-3218 (2007).
  15. Zuber, C., Spiro, M. J., Guhl, B., Spiro, R. G., Roth, J. Golgi apparatus immunolocalization of endomannosidase suggests post-endoplasmic reticulum glucose trimming: implications for quality control. Mol Biol Cell. 11 (12), 4227-4240 (2000).
  16. Yamashiro, S., Okada, M., et al. Expression of (GD3 synthase) gene in human cancer cell lines: high level expression in melanomas and up-regulation in activated T lymphocytes. Glycoconj J. 12 (6), 894-900 (1995).
  17. Wipfler, D., Srinivasan, G. V., et al. Differentially regulated expression of 9-O-acetyl GD3 (CD60b) and 7-O-acetyl-GD3 (CD60c) during differentiation and maturation of human T and B lymphocytes. Glycobiology. 21 (9), 1161-1172 (2011).
  18. Pukel, C. S., Lloyd, K. O., Travassos, L. R., Dippold, W. G., Oettgen, H. F., Old, L. J. GD3, a prominent ganglioside of human melanoma. Detection and characterisation by mouse monoclonal antibody. J Exp Med. 155 (4), 1133-1147 (1982).

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

Gangliosid-ExpressionKonfokalmikroskopieZelladhäsionAnti-CD3-AntikörperAnti-CD28-AntikörperGD3-GangliosidDurchflusszytometrieReal-time-PCR
Herstellung von CD4
Kontaktieren Sie uns
Der Bibliothek empfehlen

Datenschutz

Nutzungsbedingungen

Richtlinien

Urheberrecht © 2026 MyJoVE Corporation. Alle Rechte vorbehalten.