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Methodenartikel

Intrazelluläre Färbung und Durchflusszytometrie zu identifizieren Lymphozytensubpopulationen in Murine Aorta, Niere und Lymphknoten in einem Modell von Hypertonie

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DOI:

10.3791/55266

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28. Januar 2017

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Dieser Artikel enthält detaillierte Methodik zur Identifizierung und funktionelle T-Lymphozyten-Untergruppen, die innerhalb Maus Niere, Aorta und der Lymphknoten durch die intrazelluläre Färbung und Durchflusszytometrie zu quantifizieren. Das Modell der Angiotensin-II-induzierte Hypertonie wurde zu erklären, ausgewählt, Schritt-für-Schritt, die Verfahren und die grundlegenden Prinzipien der Durchflusszytometrie und intrazelluläre Färbung.

Zusammenfassung

Es ist mittlerweile allgemein bekannt, dass T-Lymphozyten eine entscheidende Rolle bei der Entwicklung mehrerer Herz-Kreislauf-Erkrankungen spielen1,2,3,4,5. Zum Beispiel haben Studien aus unserer Gruppe gezeigt, dass Bluthochdruck mit einer übermäßigen Ansammlung von T-Zellen in den Gefäßen und der Niere während der Entwicklung der experimentellen Hypertonie verbunden ist6. In diesen Geweben produzieren T-Zellen mehrere Zytokine, die sowohl die Gefäß- als auch die Nierenfunktion beeinflussen und zu Vasokonstriktion sowie Natrium- und Wasserretention führen1,2. Um vollständig zu verstehen, wie T-Zellen Herz-Kreislauf- und Nierenerkrankungen verursachen, ist es wichtig, die spezifischen T-Zell-Untergruppen in diesen Geweben identifizieren und quantifizieren zu können. T-Zell-Untergruppen werden durch eine Kombination von Oberflächenmarkern, den von ihnen sezernierten Zytokinen und den von ihnen exprimierten Transkriptionsfaktoren definiert. Die Komplexität der T-Zellpopulation macht die Durchflusszytometrie und die intrazelluläre Färbung zu einer unschätzbaren Technik, um die Phänotypen der im Gewebe vorhandenen Lymphozyten zu entschlüsseln. Hier stellen wir ein detailliertes Protokoll zur Identifizierung der oberflächen- und intrazellulären Marker (Zytokine und Transkriptionsfaktoren) in T-Zellen zur Verfügung, die aus murinen Nieren-, Aorta- und Aortendrainage-Lymphknoten in einem Modell der Angiotensin-II-induzierten Hypertonie isoliert wurden. Folgende Schritte werden detailliert beschrieben: Isolierung der Gewebe, Erzeugung der Einzelzellsuspensionen, ex vivo Stimulation, Fixierung, Permeabilisierung und Färbung. Darüber hinaus werden mehrere grundlegende Prinzipien der durchflusszytometrischen Analyse diskutiert, einschließlich der Auswahl der richtigen Kontrollen und geeigneter Gating-Strategien.

Einleitung

Neuere Erkenntnisse zeigen , dass das adaptive Immunsystem, insbesondere T - Lymphozyten, eine entscheidende Rolle bei der Entwicklung verschiedener kardiovaskulärer Erkrankungen 1,2,3,4,5 spielen. Beispielsweise im Modell der Angiotensin - II induzierten Bluthochdruck, eine Anhäufung von T - Zellen in den Gefäßen und den Nieren der Mäuse wurde 6 beschrieben. Das vaskuläre Akkumulation überwiegend in der Adventitia und des perivaskulären Fett. In der Niere akkumulieren T-Zellen sowohl in der Medulla und Nierenrinde. Je nachdem , welche Teilmenge beteiligt ist, geben diese T - Zellen zu unterschiedlichen Zytokine, vaskulären und renalen Funktion ....

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Protokoll

Vanderbilt University Institutional Animal Care und Use Committee hat die hier beschriebenen Verfahren genehmigt. Die Mäuse werden untergebracht und versorgt in Übereinstimmung mit dem Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren (National Academies Press. Überarbeitete 2010).

1. Isolierung des Aorten-Lymphknoten, Niere und Aorta von Mäusen

  1. Euthanize die Mäuse durch CO 2 Inhalation. Sprühen Sie die Brust mit 70% Ethanol und vorsichtig die Haut öffnen und die Brustwand mit einer Schere das Herz aussetzen.
  2. Um die Vaskulatur perfundieren, einen kleinen Einschnitt in den rechten Vorhof durchzuführen und kontinuierlich ei....

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Ergebnisse

Das beschriebene Protokoll ermöglicht die Identifizierung von Oberflächen- und intrazellulären Markern in T aus murinen Nierenzellen isoliert, Aorta und aortic drainierenden Lymphknoten in einem Modell von Angiotensin II induzierten Bluthochdruck. Repräsentative Ergebnisse sind unten dargestellt.

Abbildung 1 zeigt die Gating - Strategie verwendet , um die T - Zellpopulation in einer Einzelzellsuspension aus de.......

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Diskussion

Das hierin beschriebene Protokoll wurde optimiert, um T-Zell-Untergruppen, die in den Nieren, der Aorta und den Lymphknoten von Mäusen vorhanden sind, ordnungsgemäß zu identifizieren. Dieses Protokoll kann leicht angepasst werden, um andere Immunzelluntergruppen wie B-Lymphozyten und angeborene Immunzellen zu untersuchen, und kann modifiziert werden, um andere Gewebetypen einzubeziehen. Der Verdauungsschritt ist kritisch und muss für jedes Gewebe modifiziert und optimiert werden9. Ein längerer Verdauungsschrit.......

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Offenlegungen

MSM wird durch einen Zuschuss von Gilead Sciences Herz-Kreislauf unterstützt.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde von einem American Heart Association Fellowship Award (16POST29950007) bis FL, eine Ausbildung Zuschuss von der National Institutes of Health (NIH T32 HL069765) zu BLD, American Heart Association Fellowship Award (14POST20420025) zu MA Saleh unterstützt und ein NIH K08 Auszeichnung (HL121671) zu MSM. MSM wird auch durch ein Forschungsstipendium von Gilead Sciences, Inc. unterstützt

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Kollagenase DROCHE11088882001
Kollagenase AROCHE10103586001
Kollagenase BROCHE11088815001
DnaseROCHE10104159001
1x Puffer zur Lyse roter BlutkörpercheneBioscience00-4333-57
RPMI Medium 1614 1xGibco11835-030
DPBS ohne Calcium und MagnesiumGibco14190-144
PercollGE Healthcare17-5445-02Für die Dichtegradientenzentrifugation
GentleMACS™ C-RöhrchenMiltenyi Biotec130-096-334
GentleMACS DissoziatorgerätMiltenyi Biotec130-093-235Verwenden Sie das Programm SPLEEN_04
Zellaktivierungscocktail (mit Brefeldin A)Biolegend423303
Anti-CD16/32eBioscience14-0161-81verdünnt 1:100
LIVE/DEAD fixierbares violettes Totzellen-FärbesetLife TechnologiesL34955
Transkriptionsfaktor-PuffersatzBD Pharmingen562725
OneComp eBeads eBioscience01-1111-42
123 Stück eBeadseBioscience01-1234-42
CD45 AmCyan (Klon 30-F11)BioLegend103138
CD3 PerCP-Cy5.5 (Klon 17A2)BioLegend100218
IL-17A FITC (Klon TC11-18H10.1)BioLegend506910
IL-17F APC (Klon 9D3.1C8)BioLegend
CD4 APC-Cy7 (Klon GK1.5)BD Biosciences560181
CD8 APC (Klon 53-67)eBioscience17-0081-82
T-bet PE-Cy7 (Klon 4B10)BioLegend644823
IFNγ FITC (Klon XMG1.2)BD Biosciences557724
517004

Referenzen

  1. Saleh, M. A., McMaster, W. G., Wu, J., et al. Lymphocyte adaptor protein LNK deficiency exacerbates hypertension and end-organ inflammation. J Clin Invest. 125 (3), 1189-1202 (2015).
  2. Madhur, M. S., Lob, H. E., McCann, L. A., et al.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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