Method Article

Imaging Neurone innerhalb Dickhirnschnitten Mit der Golgi-Cox-Methode

DOI:

10.3791/55358

April 18th, 2017

In This Article

Summary

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Wir präsentieren ein Protokoll der Golgi-Cox-Färbung in dicken Hirnschnitten für die Verwendung, um Neuronen mit langen Dendritenbäume innerhalb einzelner Gewebeproben enthalten ist, zu visualisieren. Zwei Varianten dieses Protokolls werden auch vorgestellt, Kresylviolett Gegenfärbung einzubeziehen und das Einfrieren von nicht verarbeiteten Gehirne für die Langzeitlagerung.

Abstract

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Der Golgi-Cox-Methode von Neuron-Färbung ist seit mehr als zweihundert Jahren beschäftigt unser Verständnis der neuronalen Morphologie innerhalb histologischen Hirnproben vorzurücken. Zwar ist es aus praktischer Sicht zu bevorzugen ist, um Hirnschnitt bei der größten Dicke möglich ist, um die Wahrscheinlichkeit des Identifizierens stained Neuronen zu erhöhen, die vollständig innerhalb einzelnen Abschnitte enthalten ist, herzustellen, ist dieser Ansatz aus technischen Sicht von dem Arbeitsabstand von hohen begrenztem Lineare Wiedergabe Mikroskopobjektive. Wir berichten hier über ein Protokoll Neuronen färbt das Golgi-Cox-Verfahren in Mausgehirnschnitte verwenden, die bei 500 & mgr; m Dicke geschnitten werden, und Neuronen in der gesamten Tiefe dieser Abschnitte zur Visualisierungen mit einem hochauflösenden 30X 1,05 NA Silikon ausgerüstet ein aufrechtes Mikroskop Ölimmersionsobjektiv, das einen 800 um Arbeitsabstand aufweist. Wir berichten auch zwei nützliche Varianten dieses Protokolls, das verwendet werden kann, um die Oberfläche des gegenzufärbenmontiert Gehirnschnitt mit der Kresylviolett Nissl-Färbung, oder ganze Gehirne für die Langzeitlagerung vor dem Schneiden und Endverarbeitung gefrieren. Das Hauptprotokoll und seine zwei Varianten produzieren gefärbte dicke Hirnschnitten, wobei durchwegs voll Neuron Dendritenbäume und Dendriten Stacheln können zuverlässig sichtbar gemacht und quantifiziert werden.

Introduction

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Die Visualisierung von einzelnen Neuronen innerhalb von Gewebeproben ermöglicht die in - situ - Analyse von Neuronen morphologischer Eigenschaften, die unser Verständnis des Gehirns deutlich fortgeschritten sind und wie sie durch endogene Krankheit oder exogene Umweltfaktoren beeinflusst werden. Die Golgi-Cox-Färbeverfahren sind ein kostengünstiges, relativ einfaches Mittel eine Stichprobe von Neuronen im Gehirn Anfärben. Zuerst von Golgi 1 entwickelt und modifiziert von Cox 2 in den 1800er Jahren haben die Forscher weiter verfeinert , diese Technik im Laufe der Jahre klar, gut gefärbten Neuronen zu er....

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Protocol

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Erwachsene weibliche CD1-Stamm-Mäuse wurden in dieser Studie verwendet. Ähnliche Färbung kann unter Verwendung beider Geschlechter in verschiedenen Altersstufen durchgeführt werden. Versuchstiere wurden nach den Grundsätzen und Richtlinien des Canadian Council on Animal Care betreut, und das experimentelle Protokoll wurde von der University of Guelph Animal Care Committee genehmigt.

1. Golgi-Cox Staining

  1. Golgi-Cox Imprägnierung von Brains
    1. Macht die Golgi-Cox Lösung von 1% (w / v) Kaliumdichromat, 0,8% (w / v) Kaliumchromat und 1% (w / v) Quecksilberchlorid durch das Kaliumdichromat Auflösen und Kaliumc....

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Results

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500 & mgr; m dicke Gehirnschnitte - Dieses Golgi-Cox-Färbung Protokoll und seine beiden beschriebenen optionalen Varianten können einzelne Neuronen innerhalb von 400 zu visualisieren eingesetzt werden. Repräsentatives Bild montages von zweidimensionalen Z-Projektionen Ziel unter Verwendung eines 10X aufgefangen und 5 um Schritte in der Z - Achse ist in Abbildung 1 gezeigt: A1 - C1 für einen großen Bereich der koronalen Hirnschnitten, die den anterioren cingulären Cor.......

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Discussion

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Wir beschreiben hier ein Golgi-Cox Färbeprotokolls zusammen mit zwei nützliche Varianten für Neuronen im dicken Hirnschnitten sichtbar zu machen. Wie in den Repräsentative Ergebnisse gezeigt, die Verwendung eines hochauflösenden Ziel, die eine lange 800 & mgr; m Arbeitsabstand hat ermöglicht die zuverlässige Visualisierung der gesamten Neuronen über die gesamte Tiefe des Gehirns bei 500 & mgr; m geschnitten Abschnitte. Diese Studie von relativ dicken Hirnschnitten erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass gefärbt Neur.......

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Disclosures

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Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessen haben.

Acknowledgements

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Diese Arbeit wurde von einem Discovery-Grant CDCB aus den Natur- und Ingenieurwissenschaften Research Council of Canada (NSERC) unterstützt, ein John R. Evans Leaders Fund Forschungsinfrastruktur Zuschuss CDCB aus Kanada Foundation for Innovation (CFI Projektnummer 30381) und durch eine Entdeckung Grant NJM von NSERC. ELL wurde von einem Ontario Graduate Scholarship und von einem OVC Stipendium des Ontario Veterinary College an der University of Guelph unterstützt. CDS wurde durch einen Bachelor-Student Aspirantur von NSERC unterstützt. ALM wurde von einem Alexander Graham Bell Stipendium NSERC und von einem OVC Stipendium des Ontario Veterinary College an der Univer....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
KaliumdichromatFisher ScientificP188-100Gefährliches
KaliumchromatFisher ScientificP220-100Gefährliches
QuecksilberchloridFisher ScientificS25423Gefährliches
Filterpapier der Klasse 1Fisher Scientific1001-185
IsofluranPharmazeutische Partner von Kanada
20 mL SzintillationsfläschchenFisher Scientific03-337-4
SaccharoseBioshop DeutschlandSUC700.1
Natriumphosphat monobasischSigma AldrichS5011-500G
Natriumphosphat zweibasigSigma AldrichS9390-500G
50 mL konisches RöhrchenFisher Scientific12-565-271
IsopentanFisher ScientificAC126470010Auch bekannt als 2-Methylbutan; gefährlicher
AgarSigma AldrichA1296-100G
kleine WaageFisher Scientific02-202-100
VibratomLeicaVT1000 S
6-Well-GewebekulturplattenFisher Scientific08-772-1b
Gewebekultureinsätze mit NetzbodenFisher Scientific07-200-214
Paraformadelhyde (PFA), 16%Elektronenmikroskop Sciences15710-SGefährliches
AmmoniumhydroxidFisher ScientificA669S-500Gefährliches
Kodak Fixiermittel ASigma AldrichP7542
Superfrost plus ObjektträgerFisher Scientific12-550-15
CitroSolv ClearingmittelFisher Scientific22-143-975
wasserfreier EthylalkoholKommerzielle AlkoholeN/A
cresylvioletSigma AldrichC1791
permountFisher ScientificSP15-100
aufrechtes MikroskopModell
Olympus BX53Farbkamera, 12 BitMBF BiosciencesDV-47dQImaging-Teil 01-MBF-2000R-F-CLR-12
3D motorisierter Mikroskoptisch, Controller und EnderMBF BiosciencesN/ALieferung und integriert mit dem Mikroskop von MBF Biosciences
4X MikroskopobjektivOlympus4x 0,16 N.A. UplanSApo
10X MikroskopobjektivOlympus10x 0,3 N.A. UPlan FL N 
30X Mikroskop ObjektivOlympus30x 1.05 N.A. UPlanSApo 
60X MikroskopobjektivOlympus60x 1.42 N.A. PlanAPO N
Silikon-ImmersionsölOlympusZ-81114
Neurolucida SoftwareMBF BiosciencesVersion 10
ImageJ SoftwareU.S. National Institutes of HealthAktuelle Version Mitdem OME Bio-Formats Plugin installiert
Photoshop SoftwareAdobe-VersionCS6
CP0406V2

References

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  1. Golgi, C. Sulla struttura della sostanza grigia del cervello. Gazzetta Medica Italiana. Lombardia. 33, 244-246 (1873).
  2. Cox, W. H. Imprägnation des centralen Nervensystems mit Quecksilbersalzen. Archiv f. mikrosk. Anat. 37, 16-21 (1891).
  3. Zaqout, S., Kaindl, A. M. Golgi-Cox Staining Step by Step....

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Golgi Cox MethodNeuron StainingThick Brain SectionsSilicone Oil ImmersionCresyl Violet StainBrain SectioningVibratome SectioningImage Stack AcquisitionDendritic Tree VisualizationSpine Density Analysis

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