Ein Protokoll zur Bestimmung der Glaskapseldichten von Mikro- bis Pico-Liter-Größen-Tropfen von wässrigen Mischungen bei kryogenen Temperaturen wird beschrieben.
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Ein Protokoll zur Bestimmung der Glaskapseldichten von Mikro- bis Pico-Liter-Größen-Tropfen von wässrigen Mischungen bei kryogenen Temperaturen wird beschrieben.
Wir zeigen ein Verfahren zur Bestimmung der kryogenen Temperaturdichten der vitrusphasen von wässrigen Mischungen und anderer Proben, die eine schnelle Abkühlung erfordern, um die gewünschte kryogene Temperaturphase herzustellen. Mikroliter zu Picoliter-Größen-Tropfen werden durch Projektion in ein flüssiges Stickstoff-Argon (N 2 -Ar) -Mischung gekühlt. Die kryogene Temperaturphase des Tropfens wird unter Verwendung eines visuellen Assays ausgewertet, der mit Röntgenbeugungsmessungen korreliert. Die Dichte der flüssigen N 2 -Ar-Mischung wird durch Zugabe von N 2 oder Ar eingestellt, bis der Tropfen neutral schwimmfähig wird. Die Dichte dieser Mischung und damit des Tropfens wird nach einer Testmasse und dem Archimedes-Prinzip bestimmt. Mit geeigneter Sorgfalt bei der Tropfenvorbereitung, dem Management des Gases über dem flüssigen Kryogengemisch zur Minimierung der Vereisung und dem regelmäßigen Mischen des kryogenen Gemisches, um eine Dichte-Schichtung und eine Phasentrennung zu verhindern, können die Dichten auf <0,5% der Tropfen, die so klein wie 50 pl sind, genau seinLeicht bestimmt werden. Messungen an wässrigen Kryoschutzmittelgemischen liefern Einblicke in die Kryoschutzwirkung und liefern quantitative Daten zur Erleichterung der thermischen Kontraktionsanpassung in der biologischen Kryokonservierung.
Die physikalischen Eigenschaften von Wasser und wässrigen Mischungen in ihren verschiedenen Phasen sind von grundlegender Bedeutung und sind für das in vivo und in vitro Verständnis der biologischen Systeme wichtig. In der zeitgenössischen Kryobiologie und der biologischen Kryokonservierung sind die glasartigen oder amorphen Phasen von wässrigen Kryoschutzmittelgemischen von besonderem Interesse 1 , 2 . Die Nukleierung und das Wachstum von Eiskristallen können Zellen und Gewebe stören und die Proteindenaturierung und Aggregation fördern, so dass Kryokonservierungsprotokolle, die das Lösungsmittel verglasen, zunehmend populär geworden sind. In der biomolekularen Kristallographie stört die Kristallisation des Lösungsmittels in den Kanälen zwischen Biomolekülen Kristallgitter und verschlechtert die Beugungseigenschaften. Die Verglasung wird durch eine Kombination aus Schnellkühlung, Dehydratisierung und Zugabe von kryoprotektiven Soluten wie Glycerin, Ethylenglykol, Polyethylenglykolen (PEGs),Alkohol und salze.
Die Verglasung begrenzt die Eiskristallisation und das Wachstum, eliminiert jedoch nicht alle kühlbedingten Probenschäden. Zum Beispiel erhöht die Kristallmosaik (ein Maß für die Verteilung der Kristallebenenorientierungen) routinemäßig um einen Faktor von 10 bis 100, wenn Proteinkristalle in einen verglasten Zustand 3 abgekühlt werden, und die Nachtrocknen-Überlebensraten von verglasten Spermien und Oozyten variieren stark .
Ein Schadensmechanismus ist eine differentielle Kontraktion von Lösungsmittel und umgebendem Material während der Kühlung 3 , 4 , 5 . Die Gleichgewichtslösungsmittel- und Lösungskonzentrationen innerhalb eines Kristalls, einer Zelle oder eines Gewebes sind temperaturabhängig, und das Lösungsmittel plus der gelöste und das umgebende Material kann sich durch unterschiedliche Mengen zusammenziehen. Die schnelle Abkühlung kann vor der Verglasung Lösungsmittel- und Lösungsumverteilung verhindern und Differentialverträge Kann zu großen, inhomogenen, Nichtgleichgewichtsbelastungen führen, die Probenschäden verursachen.
Rationale Ansätze zur Reduzierung von kühlbedingten Schäden könnten somit von der Kenntnis der temperaturabhängigen Dichten von flüssigen und verglasten wässrigen Gemischen profitieren. Bei Lösungskonzentrationen über 50 Gew .-% Lösemittel an Gewicht der Lösung (Gew./Gew.) Können die meisten wässrigen Kryoschutzmittelmischungen mit bescheidenen Abkühlgeschwindigkeiten von 10 K / s oder weniger verglast werden, was die Herstellung und die Dichtemessung mit großen Glaskörperproben ermöglicht. Die Dichte kann dann nach dem Archimedes-Prinzip bestimmt werden, indem man das scheinbare Gewicht der Probe misst, wenn es in einem flüssigen Kryogen wie Stickstoff suspendiert wird. Wenn jedoch die Konzentration des gelösten Stoffes abnimmt, steigen die für die Verglasung erforderlichen Abkühlgeschwindigkeiten rasch an: Die Abkühlgeschwindigkeiten für wässrige Glycerinmischungen steigen von <10 K / s bei 50 Gew .-% des gelösten Stoffes in g bis zum Volumen der Lösung in ml (w / v) bis> 1000 an K / s bei 25% w / vAss = "xref"> 7 Wärmeübertragung wird Grenzschicht begrenzt, so dass das Erreichen größerer Abkühlgeschwindigkeiten kleinere und kleinere Proben erfordert 8 .
Messungen der Dichte von reinem Glaskörper und Eis wurden durch Abscheiden von Mikrometer-Durchmesser (Femtoliter-Volumen) Tropfen im Vakuum auf eine kryogenisch gekühlte Oberfläche erreicht, um eine makroskopische (Gramm) Probe aufzubauen. Die Dichte dieser Probe wurde durch Kryoflotation in einer flüssigen Stickstoff-Argon-Mischung bestimmt, bei der die Dichte der kryogenen Flüssigkeit eingestellt wurde, bis die Probe neutral schwach wurde 9 . Allerdings ist die Erzeugung von großen Proben aus einer großen Anzahl von kleinen Tropfen in einer Weise, die Hohlraumvolumina minimiert - eine wichtige Fehlerquelle in früheren Glaskörper-Dichte-Messungen - ist nicht trivial. Für wässrige Mischungen kann die Differenzverdampfung von Lösungskomponenten bei der Aerosolisierung und Abscheidung im Vakuum dazu führenErhebliche Unsicherheiten bei abgelagerten Konzentrationen.
Wir haben eine Methode entwickelt, die auf Kryoflotation basiert und eine genaue Dichtebestimmung von wässrigen Mischungen mit einzelnen Tropfen ermöglicht, die so klein wie 50 pL 10 sind . Diese Tropfen können unter Beibehaltung ihrer ursprünglichen Konzentrationen schnell gekühlt werden, und ihr kryogener Temperaturzustand (verglast oder kristallin) kann mit einem einfachen visuellen Assay beurteilt werden, der mit Röntgenbeugungsmessungen korreliert. Dieses Verfahren ist weitgehend auf wässrige und nicht-wässrige Mischungen anwendbar und kann auf eine Vielzahl von biologischen Proben einschließlich Zellen ( z. B. Stamm und Ei), Gewebeproben und Proteinkristallen mit Niedrigtemperaturdichten zwischen 0,8 und 1,4 g / ML
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ACHTUNG: Bitte konsultieren Sie vor dem Gebrauch alle relevanten Sicherheitsdatenblätter (MSDS). Bitte verwenden Sie alle geeigneten Sicherheitspraktiken bei der Verwendung von komprimierten Gasen, einschließlich geeigneter kalibrierter Gashandhabungsregler und Ventile sowie zugelassener Gasschläuche. Kontakt mit flüssigen Kryogenen kann schwere Erfrierungen und Nekrose verursachen. Verwenden Sie geeignete persönliche Schutzausrüstung (Gesichtsschutz, Handschuhe, Laborkittel, Volllängenhosen, Zehenspitzenschuhe), die alle für flüssigen Stickstoff undurchlässig sein müssen. Bleiben Sie stehen und sorgen Sie für einen ungehinderten Ausstieg aus dem Gerät bei der Verwendung von flüssigen Kryogenen. Achten Sie auf Erstickungsgefahren bei der Verwendung von komprimierten Gasen und flüssigen Kryogenen und arbeiten Sie in einem gut belüfteten Bereich mit adäquater Make-up-Luft (eine Dunstabzugshaube oder eine hohe Luftdurchsatzrate).
1. Vorbereitung von wässrigen Lösungen für Dichtemessungen
HINWEIS: Weil Gewichte leichter an eine hohe Genauigkeit gemessen werden als volUmes, Lösungskonzentrationen werden in w / w Einheiten gemessen. Alle Dichten und Schmelz- oder Siedetemperaturen nehmen einen atmosphärischen Druck von ~ 100 kPa an. Die folgenden Schritte beschreiben die Herstellung einer 35% igen w / w-Glycerinlösung. Das gleiche Verfahren kann für andere Konzentrationen und gelöste Stoffe verwendet werden.

2. Vorbereitung der Probenkühlkammer
3. Bestimmung des Volumens und der Dichte der Testmasse bei T = 298 K und T = 77 K


4. Vorbereitung der anfänglichen flüssigen N 2 -Ar-Mischung
5. Messung und Einstellung der Dichte des anfänglichen N 2 -Ar-MixesTure

6. Kühlung Tropfen der Probenlösung
7. Beurteilung des Standes der Stichprobe
8. Bestimmung der Dichte der Probe
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Dichtemessungen bei T = 77 K für keramische Tropfen von wässrigem Glycerin und Ethylenglykol gegenüber der Kryoschutzmittelkonzentration sind in Fig. 1A bzw. Fig. 1B gezeigt, und die entsprechende Änderung des spezifischen Volumens zwischen T = 298 K und 77 K, die vorher berechnet wurde Bestimmt T = 298 K Dichten, ist in Abbildung 2 dargestellt . Bei hohen Kryoschutzmittel...
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Die derzeitigen Geräte und Methoden, die vor allem von Studenten mit eingeschränktem Zugang zu Instrumentenbauwerkzeugen und Maschinen entwickelt wurden, liefern dennoch hochgenaue Dichtemessungen für einzelne Flüssigkeitstropfen von nur 50 pL. In dem Konzentrationsbereich nahe und über 50% w / w, wo kleine Abkühlgeschwindigkeiten ausreichen, um keramische Proben zu erhalten, stimmen die Dichten mit denen überein, die in früheren Messungen an Massenproben erhalten wurden. Extrapolationen der vorliegenden Dichten auf 0% ...
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Die Autoren haben nichts zu offenbaren.
Diese Arbeit wurde von der NSF unter der Auszeichnung MCB-1330685 unterstützt. DWM erkennt die Teilunterstützung von der Cornell University Molecular Biophysics Training Grant (NIH T32GM0082567) an.
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| Name | Unternehmen | Katalognummer | Kommentare |
|---|---|---|---|
| Zentrifugenröhrchen | Falcon | 6029236 | 15 mL konisches Zentrifugenröhrchen |
| Glycerin, >99,5% | Sigma | G9012-100 mL | |
| Ethylenglykol, >99,8 % | Sigma | 324558-100 mL | |
| analytische Mikrowaage | Mettler | AE240 | Analysenwaage, 0,01 mg Auflösung, mit Haken am Boden zum Wiegen unterhalb der Waage |
| vortexer | Scientific Industries | SI-0236 | Vortex-Genie 2 |
| Gerätegehäuseeinfassung | Unistrüt | 1-5/8" Metallrahmen | 48" breit x 24" tief x 40" hoch |
| Gerätegehäuse Luftbarriere | durchsichtige Kunststofffolie | ||
| Neopren-Gummischeibe | 4" Durchmesser, 1/8" dicker | ||
| Dewargefäß | Scilogix Dilvac | SS333 | 4,5 Liter Dewargefäß mit Stahlgehäuse und Klemmdeckel |
| Kupferkammer | Dieses gefertigte Teil besteht aus einem Kupferrohr mit einem Durchmesser von 1,43" und einer Wandstärke von 0,017" mit einer massiven zylindrischen Kupferbasis, die gelötet ist, um ein Ende abzudichten. Der Kupfersockel ist 0,87" hoch und die Gesamthöhe der Kammer beträgt 7". | ||
| Stickstoffgas | Airgas | NI HP300 | 99,998 % reines N2-Gas |
| Argongas | Airgas | AR HP300 | 99,998 % reines Ar-Gas-Rotameter |
| Omega | FL3692ST | 2,52 l/min max. Durchflussrate | |
| Schaumisolierdeckel | Dieses Teil besteht aus 4 lb/ft<>sup3 vernetztem Polyethylenschaum (geliefert von Technifab, 1355 Chester Industrial Parkway, Avon, OH) und hat einen Außendurchmesser von 2,42" und einen Innendurchmesser von 1,52" und eine Dicke von 0,79". | ||
| PTFE-Prüfmasse | Dieses gefertigte Teil ist ein Zylinder mit einem Durchmesser von 0,246" und einer Höhe von 0,580" mit einem Loch mit einem Durchmesser von 0,060", das senkrecht zur Zylinderachse verläuft und diese ~0,10" von einem Ende entfernt schneidet. | ||
| Mikrowaagen-Plattform | Unistrut | 1-5/8" Metallrahmen | 11" breit x 24" lang x 24" hoch rechteckiger Rahmen mit einem oberen Aluminiumblech mit einem Loch für das Monofilament und hängende Testmasse |
| 2 mil (50 um) Monofilschnur | Berkley | NF1502-CM | Nanofil Angelschnur |
| Argon-Vorkühlspirale | Schlauch VWR | 60985-512 | 1/8" ID x 1/4" AD PVC-Schlauch |
| Perforierter Kupferfolienmischer | mit einem Durchmesser von 1,4 Zoll und einer Dicke von 35 Mikrometern, geschnitten aus 1 Unze / ft<> < / Sup> Kupferblech und mit einer Ahle oder einem anderen scharfen spitzen Werkzeug mit Löchern versehen. Einen starren, wärmeisolierenden Stab (Kunststoff oder Holz) mit einem Durchmesser von 1-2 mm in die Mitte einführen und bei Bedarf mit Epoxidharz fixieren. | ||
| Spritze | BD | 309628 | 1 mL Luer-Lok Spitze |
| Spritze Vakuumerzeuger | Gast | VG-015-00-00 | Druckluft Venturi einstufiger Vakuumerzeuger |
| hydrophobes Beschichtungsspray | RainX | 620036 | Kunststoff wasserabweisend |
| Stereomikroskop mit langer Brennweite | Bausch und Lomb Stereozoom 6 | 0,67-4 x Zoom Pod mit 20X Okularen, 10 cm Arbeitsabstand& nbsp; | |
| LED-Ringbeleuchtung | Amscope | LED144S | |
| LED-Spotbeleuchtung | Newhouse Lighting | NHCLP-LED | 3W LED-Schwanenhals-Klemmlampe |
| 1,8 ml Kryofläschchen | Nunc | V7634-500EA | Jedes Kryofläschchen mit 1,8 oder 2 mL ist ausreichend |
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