Ein Abonnement von JoVE ist erforderlich, um diesen Inhalt anzuzeigen. Melden Sie sich an oder beginnen Sie noch heute mit einer kostenlosen Testphase.

Methodenartikel

Stickstoff-Kavitation und differentielle Zentrifugation ermöglicht eine Überwachung der Verteilung von peripheren Membranproteinen in kultivierten Zellen

16.8K Aufrufe

⸱

DOI:

10.3791/56037

⸱

18. August 2017

 , 

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier präsentieren wir Protokolle für Waschmittel-freie Homogenisierung der kultivierten Säugerzellen basierend auf Stickstoff Kavitation und nachträgliche Trennung der cytosolischen und Membrane-springen Proteine durch Ultrazentrifugation. Diese Methode ist ideal für die Überwachung der Partitionierung von peripheren Membranproteinen zwischen löslich und Membran-Fraktionen.

Zusammenfassung

Kultivierte Zellen eignen sich für das Studium der subzellulären Verteilung von Proteinen, einschließlich der peripheren Membranproteine. Genetisch codierte Eindringmittel haben tagged Proteine das Studium der subzellulären Proteinverteilung revolutioniert. Es ist jedoch schwierig zu quantifizieren die Verteilung mit Fluoreszenz-Mikroskopie, vor allem, wenn Proteine teilweise cytosolischen sind. Darüber hinaus ist es oft wichtig, körpereigene Proteine zu studieren. Biochemische Tests wie Immunoblots der Goldstandard für die Quantifizierung der Proteinverteilung nach subzellulären Fraktionierung bleiben. Zwar kommerzielle Kits, die cytosolischen oder bestimmte Fraktionen Membran isolieren wollen, basieren die meisten dieser Kits auf Extraktion mit Reinigungsmitteln, die möglicherweise ungeeignet für das Studium periphere Membranproteine, die leicht aus Membranen extrahiert werden. Hier präsentieren wir ein Waschmittel-freie Protokoll für zelluläre Homogenisierung von Stickstoff Kavitation und nachträgliche Trennung der cytosolischen und Membrane-springen Proteine durch Ultrazentrifugation. Wir bestätigen die Trennung der subzellularen Organellen in lösliche und Pellet Brüche in verschiedenen Zelltypen und Proteingewinnung unter mehrere gemeinsame mechanische Homogenisierung nicht-Reinigungsmittel-basierte Methoden zu vergleichen. Einige Vorteile von Stickstoff ist Kavitation die überlegene Effizienz der zellulären Störungen mit minimalen physikalischen und chemischen Schäden an empfindlichen Organellen. In Kombination mit Ultrazentrifugation Stickstoff Kavitation ist eine hervorragende Methode, die Verschiebung von peripheren Membranproteinen zwischen cytosolischen zu untersuchen und Membran-Fraktionen.

Einleitung

Zelluläre Proteine können in zwei Klassen einteilen: diejenigen, die Membranen und diejenigen, die nicht zugeordnet sind. Nicht zugeordneten Membranproteine sind im Zytosol, Nukleoplasma und Lumina von Organellen wie das endoplasmatische Retikulum (ER) gefunden. Es gibt zwei Klassen von Membran-assoziierte Proteine, integralen und peripheren. Integrale Membranproteine sind auch bekannt als transmembrane Proteine, weil ein oder mehrere Segmente der Polypeptid-Kette erstreckt sich über die Membran in der Regel als eine α-Helix bestehend aus hydrophoben Aminosäuren. Transmembrane Proteine sind co-translationally Membranen im Laufe des Jahres ihre Biosynthese eingeschoben....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Protokoll

1. Puffer und Ausrüstung Vorbereitungen

  1. Chill 45 mL Zelle Störung Bomben, 15 mL-Tuben und Ultrazentrifugation Rohre bei 4 ° c
  2. Vorbereiten und chill Homogenisierung Puffer pro 2 x 10 7 Zellen bei 4 ° c hinzufügen eine Protease Inhibitor Tablette kurz vor dem Einsatz 25 mL.
    Hinweis: Homogenisierung Puffer enthalten in der Regel KCl, anstatt NaCl besser reflektieren intrazellulären Salzzusammensetzung. Homogenisierung Puffer verwendet, die in diesem Protokoll besteht aus 10 mM HEPES bei pH 7,4, 10 mM KCl und 1,5 mM MgCl 2 (nachfolgend hypotone Homogenisierung Puffer). Die meisten Puffer können für Stickstoff Kavitation an....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Ergebnisse

Abbildung 2 zeigt die Aufteilung des zellulären Proteinen aus PNS in der löslichen cytosolische Fraktion (S) oder Membran Pellet Bruchteil (P). Wir untersuchten drei repräsentativen Zelllinien aus verschiedenen Zelltypen: HEK-293 (epitheliale), NIH-3 t 3 (Fibroblasten) und Jurkat (Lymphozyten). Rho Guanin Dissoziation Inhibitor (RhoGDI) und kationen-unabhängige Mannose-6-Phosphat-Rezeptor (CIMPR) dienten als Positivkontrollen für cytosolischen und Membran Brü.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Diskussion

Die Vorteile von Stickstoff Kavitation gegenüber anderen Methoden der mechanischen Störungen sind vielfältig. Vielleicht ist der wichtigste Vorteil seine Fähigkeit, sanft aber effizient Proben zu homogenisieren. Die physikalischen Grundlagen der Dekompression kühlt Proben statt erzeugen lokale Erwärmung Schaden wie Ultraschall und Reibung/Scheren Techniken basiert. Kavitation ist auch äußerst effizient in der Plasmamembran zu stören. Da Stickstoff werden Luftblasen innerhalb jeder einzelnen Zelle bei der Dekompression, d.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Offenlegungen

Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessenkonflikte.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde von GM055279, CA116034 und CA163489 finanziert.

....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Zellaufschlussgefäß (45 mL)Parr Instrument4639Stickstoffkavitationsbombe
Dounce Homogenisator (2 mL)Kontes885300-0002Dounce Stößel und Röhrchen
U-100 Insulinspritze 28G½Becton Dickinson329461Needle
Atg12 AntikörperSanta Cruz271688Maus Antikörper, verwenden bei 1:1000 Verdünnung
β-Aktin AntikörperSanta Cruz47778Maus Antikörper, verwenden bei 1:1000 Verdünnung
β-Tubulin AntikörperDSHBE7-sMaus Antikörper, verwenden bei 1:5000 Verdünnung
Calnexin AntikörperSanta Cruz23954Maus-Antikörper, Verwendung in einer Verdünnung von 1:1000
Calregulin-AntikörperSanta Cruz373863Maus-Antikörper, Verwendung in einer Verdünnung von 1:1000
Katalase-AntikörperSanta Cruz271803Maus-Antikörper, Verwendung in einer Verdünnung von 1:1000
CIMPR-AntikörperAbcam124767Kaninchen-Antikörper, Verwendung in einer Verdünnung von 1:1000
EEA1-AntikörperSanta Cruz137130Maus-Antikörper, Verwendung in einer Verdünnung von 1:1000
EGFR-AntikörperSanta Cruz373746Maus-Antikörper, Verwendung in einer Verdünnung von 1:1000
F0-ATPase-AntikörperSanta Cruz514419Maus-Antikörper, Verwendung in einer Verdünnung von 1:1000
F1-ATPase-AntikörperSanta Cruz55597Maus-Antikörper, Verwendung in einer Verdünnung von 1:1000
Fibrillarin-AntikörperSanta Cruz374022Maus-Antikörper, Verwendung bei einer Verdünnung von 1:200
Golgin 97 AntikörperSanta Cruz59820Maus-Antikörper, Verwendung bei einer Verdünnung von 1:1000
HDAC1-AntikörperSanta Cruz81598Maus-Antikörper, Verwendung bei einer Verdünnung von 1:1000
Hexokinase 1-AntikörperCell Signaling Technology2024SKaninchen-Antikörper, Verwendung bei einer Verdünnung von 1:1000
Lamin A/C-AntikörperSanta Cruz376248Maus Antikörper, verwenden bei 1:1000 Verdünnung
LAMP1 AntikörperDSHBH4A3-cMaus Antikörper, verwenden bei 1:1000 Verdünnung
Na+/K+ ATPase AntikörperSanta Cruz48345Maus Antikörper, verwenden bei 1:1000 Verdünnung
Rab7 AntikörperAbcam137029Kaninchen Antikörper, verwenden bei 1:1000 Verdünnung
Rab9 AntikörperThermoMA3-067Maus-Antikörper, Verwendung bei einer Verdünnung von 1:1000
RCAS1-AntikörperSanta Cruz398052Maus-Antikörper, Verwendung bei einer Verdünnung von 1:1000
RhoGDI-AntikörperSanta Cruz360Kaninchen-Antikörper, Verwendung bei einer Verdünnung von 1:3000
Ribosomales Protein S6-AntikörperSanta Cruz74459Maus-Antikörper, Verwendung bei einer Verdünnung von 1:1000
Sec61a-AntikörperSanta Cruz12322Ziegen-Antikörper, Verwendung in einer Verdünnung von 1:1000
Dickwandiges Polycarbonat-UltrazentrifugenröhrchenBeckman Coulter349622 Probenröhrchen für die Ultrazentrifugation
TLK-100.3Rotor Beckman Coulter349481Rotor für die Ultrazentrifugation
Optima MAX High-Capacity Personal UltrazentrifugeBeckman Coulter364300Ultrazentrifuge
cOmplete Proteasehemmer CocktailtablettenRoche11697498001Proteasehemmer
Zellschaber mit 25 cm Griff und 3,0 cm KlingeCorning353089großer Zellschaber
Magnetischer RührstabFisher Scientific14-513-57SIXMikrorührstab
Magnetrührer mit KeramikaufsatzFisher ScientificS504501ASMagnetrührer

Referenzen

  1. Miyawaki, A. Proteins on the move: insights gained from fluorescent protein technologies. Nat Rev Mol Cell Biol. 12 (10), 656-668 (2011).
  2. Bunger, S., Roblick, U. J., Habermann, J. K. Comparison of five commercial extraction kits for subsequen....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Nachdrucke und Genehmigungen

Weitere Artikel entdecken

Subzelluläre FraktionierungUltrazentrifugationcytosolische FraktionMembranfraktionProteinpartitionierungZellhomogenisierungWestern-Blot-Analyse