Wir beschreiben eine Technik Durchflusszytometrie und Hochdurchsatz-Sequenzierung zu spätere replizierende Regionen des Genoms zu identifizieren, zu kombinieren.
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Methodenartikel
Wir beschreiben eine Technik Durchflusszytometrie und Hochdurchsatz-Sequenzierung zu spätere replizierende Regionen des Genoms zu identifizieren, zu kombinieren.
Zahlreiche Techniken wurden entwickelt, um den Fortschritt der DNA-Replikation durch die S-Phase des Zellzyklus folgen. Die meisten dieser Techniken sind in Richtung Aufklärung des Standortes und der Zeitpunkt der Einleitung des Genoms Vervielfältigung, anstatt seine Vollendung verwiesen worden. Es ist jedoch wichtig, dass wir Regionen des Genoms, die letzten Replikation abgeschlossen sind verstehen, weil diese Regionen erhöhten chromosomalen Bruch und Mutation leiden, und sie im Zusammenhang mit Krankheit und Alterung wurden. Hier beschreiben wir, wie wir eine Technik, die verwendet wurde, um die Replikation Einleitung um stattdessen diesen Regionen des Genoms letzte vollständige Replikation identifizieren überwachen ausgedehnt haben. Dieser Ansatz basiert auf einer Kombination der Durchflusszytometrie und Hochdurchsatz-Sequenzierung. Obwohl dieser Bericht konzentriert sich auf die Anwendung dieser Technik auf Hefe, kann der Ansatz mit beliebigen Zellen verwendet werden, die in einem Durchflusszytometer laut DNA-Gehalt sortiert werden können.
Eukaryotische Genom Replikation wird eingeleitet, an mehreren diskreten Standorten, genannt Ursprünge der Replikation, von welchen Replikation Gabeln in beide Richtungen (rezensiert in Fragkos Et Al., 20151) gehen. Ursprünge variieren in ihren Zeitplan und die Effizienz der Zündung und verschiedene Techniken wurden entwickelt, um Replikation Herkunft Aktivitäten überwachen und die Ursachen dieser Unterschiede zu erhellen. Die Aktivität der einzelnen Ursprünge kann aus einsträngiger DNA2, welche Formulare rund um aktive Ursprung abgeleitet werden oder mithilfe von 2D Gelelektrophorese, um spezielle Replikations Z....
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1. Vorbereitung der Zellen für Flow Cytometry sortieren
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Wir haben wie oben beschrieben vor spät replizierenden Standorte in der angehenden Hefe verwendet. Tests dieser Ansatz mit einer bekannten späten replizierende Region auf ein künstliches Chromosom erwies sich die Technik präzise und zuverlässig sein. Unsere Ergebnisse haben auch gezeigt, die biologische Bedeutung der rechtzeitigen Abschluss der Replikation zeigen, dass eine spätere replizierende Region auf Chromosom 7, die wir identifiziert als späte Replikation auf der Grundlage unserer .......
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Während diese Technik robust ist und relativ geradlinig, besondere Aufmerksamkeit werden, an folgende gewidmet sollte:
(1) Wir empfehlen, mindestens 12 h Kulturen wachsen, bevor sie Log-Phase erreichen, da Unterschiede im Zellzyklus Distributionen zu manifestieren, wenn Kulturen geerntet werden, nach dem Erreichen der gewünschten Dichte nur 4 h nach der Inokulation. Unsere Annahme ist, dass eine Zellzyklus-Distribution, die ein relativ stabiles Gleichgewicht erreicht hat besser als eine Vertei.......
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Die Autoren haben nichts preisgeben.
Diese Arbeit wurde unterstützt durch Zuschuss NIH GM117446 an A.B
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| Name | Unternehmen | Katalognummer | Kommentare |
|---|---|---|---|
| YeaStar Genomic DNA Kit | Genesee Scientific | 11-323 | |
| 1 µ M SYTOX Green | ThermoFisher | 57020 | resuspendiert in 50 mM Natriumcitrat, pH 7,2 |
| 50 mM Natriumcitrat, pH 7,2 | |||
| RNase-Lösung (0,25 mg / ml) | Sigma | R6513 | 0,25 mg / mL RNaseA resuspendiert in 50 mM Natriumcitrat, pH 7,2, RNase-Lösung nur 10 Minuten vor dem ersten Gebrauch kochen und von da an bei -20 ° C lagern; |
| Proteinase K Lösung (20 mg / ml) | ThermoFisher / Invitrogen | 25530-015 | resuspendiert in 10 mM Tris, pH 7,5, 2 mM CaCl2, 50% Glycerin, lagern bei -20° C |
| Model 50 Sonic Dismembrator | Fisher Scientific | FB50A220 | |
| BD Biosciences FACSAria II | BD Biosciences | 644832 | |
| Zymo-Spin III Säulen | Zymo Research | C1005 | |
| Qubit dsDNA HS Assay Kit | ThermoFisher | Q32851 | |
| Qubit 3.0 Fluorometer | ThermoFisher | Q33216 | |
| Covaris Modell LE220 Fokussierter Ultraschallgerät | Covaris | 500219 | |
| Illumina TruSeq DNA LT Probenvorbereitungskit | Illumina | 15026486 | |
| Illumina HiSeq 2500 Instrument | Illumina | SY– 401– 2501 | |
| Gsnap Ausrichtungssoftware | Open Source Software / Genentech | http://research-pub.gene.com/gmap |
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