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Methodenartikel

Isolation, Kultur und Differenzierung von Stromazellen Knochenmarkzellen und Osteoklasten-Vorläufer von Mäusen

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DOI:

10.3791/56750

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6. Januar 2018

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

In diesem Artikel präsentieren wir Methoden zum isolieren und Stromazellen Knochenmarkzellen und Blutstammzellen von Röhrenknochen Maus unterscheiden. Zwei verschiedene Protokolle sind nachgiebig unterschiedliche Zellpopulationen geeignet für Erweiterung und Differenzierung in Adipozyten, Osteoblasten und Osteoklasten vorgestellt.

Zusammenfassung

Knochenmark-Stromazellen Zellen (BMSCs) bilden eine Zellpopulation, die routinemäßig als eine Darstellung von mesenchymalen Stammzellen verwendet in-vitro-. Sie befinden sich in dem Knochenmark Hohlraum neben hämatopoetischen Stammzellen (HSCs), die roten Blutkörperchen, immun Stammväter und Osteoklasten hervorrufen können. So, Extraktionen der Zell-Populationen von der Knochenmark resultiert eine sehr heterogene Mischung aus verschiedenen Zell-Populationen, die Herausforderungen im experimentellen Design und Interpretation der Daten zu verwirren können. Mehrere Isolation und Kulturtechniken wurden im Labor entwickelt, um mehr oder weniger homogenen Bevölkerungen von BMSCs und HSCs Invitrozu erhalten. Hier stellen wir zwei Methoden zur Isolierung von BMSCs und HSCs aus Maus Röhrenknochen: eine Methode, die eine gemischte Bevölkerung von BMSCs und HSCs ergibt und eine Methode, die versucht, die zwei Zellpopulationen zu trennen Abkommen beruht auf. Beide Methoden liefern Zellen geeignet für osteogene und adipogenen Differenzierung Experimente sowie Funktions-Tests.

Einleitung

Primären murinen BMSCs werden häufig als in-vitro- Modell von mesenchymalen Stammzellen seit ihrer Entdeckung in den frühen 1980er Jahren1verwendet. Kulturen der Kunststoff-anhaftende Zellen aus dem Knochenmark Hohlraum der langen Knochen gespült pflegen in der Tat, die Fähigkeit, differenziert in Osteoblasten, Osteoklasten, Chondrozyten oder Adipozyten in vielen Studien2,3, 4 , 5. ist eine einzigartige Gewebe bestehend aus vielen unterschiedlichen Zellpopulationen einschließlich, aber nicht beschränkt auf, B....

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Protokoll

Alle experimentelle Verfahren wurden von der institutionellen Animal Care und Use Committee am Maine Medical Center Research Institute zugelassen.

1. Sammlung Röhren Vorbereitung

  1. Machen Sie BMSC Kulturmedien durch die Ergänzung von Minimum wesentliche Medium α (MEM α) mit 10 % fötalen Rinderserum und 1 % von Penicillin/Streptomycin.
  2. Platz 100 µL BMSC Kulturmedien in 1,5 mL Mikrozentrifugenröhrchen. 3 Knochen passen in der Regel in einer einzigen Röhre also entsprechend vorbereiten.
  3. Kürzen Sie die Enden von 200 µL Pipettenspitzen genug, so dass sie in die Zentrifuge Rohre passen. Setzen Sie die Tipps in den Rohr....

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Ergebnisse

Überblick über die Zellkulturen
Die beiden Kulturtechniken ermöglichen die Beurteilung der Differenzierung auf eine Mischpopulation BMCs bestehend aus BMSCs und HSCs (Total BMCs, Abb. 1A) oder eine Bevölkerung von BMSCs von HSZ (Anhänger BMSCs, Abbildung 1 b) aufgeteilt. 48 Stunden, nachdem die Zellen aus dem Knochenmark isoliert werden und (Abbildung 1 beschichtet), sie schnell b.......

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Diskussion

In diesem Artikel werden zwei Methoden der Kultur des BMSCs mit ihren Vorteilen und Einschränkungen vorgestellt. Zellen aus dem Knochenmark zu isolieren, ist ein relativ müheloses Prozess. Erlangung einer Zellpopulation, die repräsentativ für die mesenchymalen Stammzellen oder osteoclastic Vorfahren kann jedoch aufgrund der vielfältigen zellulären Umgebung des Hohlraums Knochenmark eine Herausforderung sein.

Kultivierung der Gesamtheit der Knochenmark-Inhalte bietet einen engen Darstellung von.......

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Offenlegungen

Die Autoren offen zu legen, dass sie keine finanziellen Interessenkonflikt haben.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde von der National Institutes of Health (R01 AR061164-01A1) unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
200 Mio. Jahre L Pipettenspitzen Rainin17014401
1,5 mL ZentrifugenröhrchenUSA Scientific1615-5500
15 mL konisches Röhrchen VWR89039-668
konisches 50-ml-RöhrchenVWR89039-660
Phosphatgepufferte Kochsalzlösung (PBS)Sigma-Aldrich21-040-CM
EthanolFisher Science04-355-451
Sezierwerkzeuge
70 μ m FilterBD Falcon352350
0,25 % TrypsinGibco25200
KimwipeVWR82003-820
Paraformaldehyd (PFA)Elektronenmikroskopie Wissenschaft15710
Alkalische Phosphatase KitSigma-Aldrich86R
SilbernitratSigma-AldrichS6506
NatriumthiosulfatSigma-AldrichS7026
Öl Rot OSigma-AldrichO0625
IsopropanolSigma-Aldrich190764
neutral gepuffertes FormalinSigma-AldrichF5554-4L
Whatman-Filter Grade 1Sigma-AldrichZ274852
Tartratbeständige saure Phosphatase KitSigma-Aldrich387A
GlutaraldehydElektron16220
MEMαGibco12571
Fötales RinderserumVWR97068-085
Penicillin/StreptomycinInvitrogen15140-122
β-GlycerinphosphatSigma-AldrichG9891
AscorbinsäureSigma-AldrichA4544
DMEM Hoher Glukose Sigma-AldrichD5796
RosiglitazonCayman Chemical717410
InsulinSigma-AldrichI6634
IBMXSigma-AldrichI5879
DexamethasonSigma-AldrichD4902
RANKLPeprotech310-01
mCSFPeprotech315-02
Axio Observer WechselrichtermikroskopZeiss
10%

Referenzen

  1. Friedenstein, A. J., Latzinik, N. W., Grosheva, A. G., Gorskaya, U. F. Marrow microenvironment transfer by heterotopic transplantation of freshly isolated and cultured cells in porous sponges. Exp Hematol. 10 (2), 217-227 (1982).
  2. Chen, T. L.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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