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Methodenartikel

Zwei-Photonen-Kalzium Imaging in neuronalen Dendriten in Hirnschnitten

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DOI:

10.3791/56776

15. März 2018

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir präsentieren Ihnen eine Methode, die Kombination von ganzen Zelle Patch-Clamp-Aufnahmen und zwei-Photon imaging um Ca2 + Transienten im neuronalen Dendriten in akuten Hirnschnitten zu erfassen.

Zusammenfassung

Kalzium (Ca2 +) Bildgebung ist ein mächtiges Werkzeug um die räumlich-zeitliche Dynamik der intrazellulären Ca2 + Signale in neuronalen Dendriten zu untersuchen. Ca2 + Schwankungen können durch eine Vielzahl von Membran und intrazellulären Mechanismen auftreten und spielen eine entscheidende Rolle bei der Induktion der synaptischen Plastizität und Regulierung von dendritischen Erregbarkeit. Daher ist die Möglichkeit, verschiedene Arten von Ca2 + Signale in dendritischen Filialen aufnehmen wertvoll für Gruppen studieren wie Dendriten Informationen zu integrieren. Das Aufkommen der zwei-Photonen-Mikroskopie hat solche Studien erheblich erleichtert durch die Bildgebung in lebender Gewebe, wie Lichtstreuung und lichtbedingten inhärenten Probleme zu lösen. Darüber hinaus durch Kombination von konventionellen elektrophysiologische Techniken mit zwei-Photon Ca2 + imaging, ist es möglich zu untersuchen, lokale Ca2 + Schwankungen in neuronalen Dendriten parallel mit Aufnahmen der synaptischen Aktivität in Soma. Hier beschreiben wir wie Sie diese Methode verwenden, um die Dynamik der lokalen Ca2 + Transienten (Katzen) studieren in Dendriten der GABAergen inhibitorischen Interneuronen. Die Methode kann auch angewendet werden, zum Studium dendritischen Ca2 + -Signalisierung in verschiedenen neuronalen in akuten Hirnschnitten.

Einleitung

Der Beitrag eines Neurons, Netzwerk-Aktivität richtet sich weitgehend nach der dynamischen Natur der synaptischen Eingänge, die er empfängt. Traditionell, stützte sich die vorherrschende Methode der Charakterisierung synaptische Aktivität in Nervenzellen auf somatische ganze Zelle Patch-Clamp-Aufnahmen von postsynaptischen Ströme, hervorgerufen durch elektrische Stimulation von Axonen der Passage. Einzige Aktivität der proximal befindet sich Synapsen wird jedoch in diesem Fall1wahrheitsgemäß gemeldet. Darüber hinaus wurden um die Synapse-spezifische Mechanismen zu beurteilen, Aufnahmen von Paaren von Neuronen und von Dendriten an einem bestimmt....

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Protokoll

Alle Versuche wurden gemäß den Richtlinien des Tierschutzes Tier-Schutz-Ausschuss des Université Laval und des Canadian Council on Animal Care durchgeführt.

1. Vorbereitung (Optional: bereiten Sie 1 Tag im Voraus)

  1. Bereiten Sie drei Arten von künstlichen Liquor cerebrospinalis (ACFS) Lösung (Normal, Saccharose und Recovery-Lösungen, 1 L; siehe Tabelle 1). Anpassen die Osmolalität der Lösungen für 300 ± 10 mOsm25 und kühlen der ACFS Saccharose bis zu einem in der Nähe des Gefrierpunktes (0-4 ° C).
    Hinweis: Die Verwendung von eine natriumarme Schneidelösung (ACFS-Saccharose) hilft die Leben....

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Ergebnisse

Mit den hier vorgestellten Protokoll, erhielten wir Katzen hervorgerufen durch somatische Stromeinspeisung und die elektrische Stimulation in Dendriten von Oriens/Alveus Interneuronen im Bereich CA1 des Hippocampus. Nach Patchen eines Neurons, identifiziert auf ihre Form und Position basierend, Wir erwarben Linescans über einem proximalen Dendriten an mehreren Punkten bei Entfernungen von Soma (Abbildung 1A) gegeben. Wir beobachteten eine Abnahme der Amplitud.......

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Diskussion

Die hier gezeigte Methode veranschaulicht, wie die Kombination der zwei-Photonen-Ca2 + Bildgebung und Patch-Clamp Elektrophysiologie verwendet werden kann, für das Studium dendritischen Ca2 + Signalisierung in neuronalen Dendriten in akuten Hirnschnitten. Diese Methode ermöglicht eine Überwachung der beiden lokalen Ca2 + Erhebungen hervorgerufen durch elektrische Stimulation oder Backpropagating AP in dendritischen Segmenten und somatische Reaktion der Zelle. Dies macht es ein ausgezeichn.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben keinen Interessenkonflikt finanzielle oder sonstige Interessenkonflikte.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde von der Canadian Institutes of Health Research, Natur- und ingenieurwissenschaftlichen Forschung Rat (NSERC Discovery Grant) und der Savoy-Stiftung unterstützt. OC wurde durch ein Ph.d.-Stipendium von NSERC unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Tierischer Stamm: Maus CD1Charles River022
IsofluranAbbVie Corporation0B506-099
CGP 55845 HydrochloridAbcam ab120337
Calciumchlorid Sigma-AldrichC4901
D-(+)-Glukose Sigma-AldrichG8270
HEPESSigma-AldrichH3375
Magnesiumchlorid Sigma-AldrichM8266
Magnesiumsulfat-HeptahydratSigma-Aldrich230391
Paraformaldehyd-Pulver, 95%Sigma-Aldrich158127
Kaliumchlorid Sigma-AldrichP3911
Kaliumgluconat Sigma-AldrichP1847
Natriumazid Sigma-AldrichS2002
Natriumbicarbonat Sigma-AldrichS8875
Natriumchlorid Sigma-AldrichS5886
Saccharose Sigma-AldrichS9378
Triton X-100 Sigma-AldrichT9284
Trizma Sockel Sigma-AldrichT1503
Trizma Hydrochlorid Sigma-AldrichT3253
Natriumphosphat zweibasisches Dihydrat Sigma-Aldrich71643<
br/> Monohydrat Natriumphosphat
Sigma-AldrichS9638
BiocytinSigma-AldrichB4261
Alexa Fluor 594 HydrazidThermoFisherScientific A10438
SR95531 (Gabazin) Abcamab120042

Adenosintriphosphat (ATP)-Tris
Sigma-AldrichA9062

Guanosin (GTP)-Na+
Sigma-AldrichG8877

Oregon Green BAPTA-1
ThermoFisher ScientificO6812

Phosphokreatin di(tris)-Salz
Sigma-AldrichP1937

Streptavidin-konjugiertes Alexa-546
ThermoFisher ScientificS11225

Pflaster Borosilikatglas Kapillaren
World Precision Instruments1B100F-4

Theta Borosilikatglas Kapillaren
Sutter InstrumentBT-150-10

P-97 Flammender/Brauner Mikropipettenabzieher
Sutter Instrument

TCS SP5 Konfokales Multiphotonenmikroskop
Leica Microsystems

Chameleon Ultra II Ti:Saphir Multiphotonenlaser
Coherent
LAS AF Imaging Acquisition SoftwareLeica Microsystems

Temperaturregler TC-324B
Warner Instruments

MultiClamp 700B Verstärker
Molecular Devices

Digidata 1440A Digitizer
Molecular Devices

konfokal Übersetzer
Siskiyou

Mikromanipulator
Siskiyou

pClamp Datenerfassungssoftware
Molecular Devices

A365 Konstantstrom-Stimulus-Isolator
World Precision Instruments

Vibraplane Optischer Tisch
Kinetische Systeme

Referenzen

  1. Williams, S. R., Mitchell, S. J. Direct measurement of somatic voltage clamp errors in central neurons. Nat Neurosci. 7, 790-798 (2008).
  2. Denk, W., Svoboda, K. Photon upmanship: why multiphoton imaging is more than a gimmick. Neuron. 18, 351-357 (1997).
  3. ....

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Nachdrucke und Genehmigungen

Schlagwörter

Whole Cell Patch ClampCalcium Transientendendritische Signal bertragungsynaptische Plastizit telektrophysiologische AbleitungLaser Scanning MikroskopieFluoreszenzbildgebung