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Methodenartikel

Bereicherung der bakterielle Lipoproteine und Vorbereitung der N-terminalen Lipopeptide Strukturaufklärung durch Massenspektrometrie

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DOI:

10.3791/56842

⸱

21. Mai 2018

 , 
1Department of Biochemistry and Molecular Biology, Pennsylvania State University

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Die Anreicherung von bakterielle Lipoproteine mit einem nichtionischen Tensid Phase Partitionierung Methode wird für die direkte Verwendung in TLR-Tests oder andere Anwendungen beschrieben. Weitere Schritte sind detailliert, um strukturelle Charakterisierung N-terminalen tryptic Lipopeptide Vorbereitung durch Massenspektrometrie.

Zusammenfassung

Lipoproteine sind wichtige Bestandteile der bakteriellen Zellhülle und potente Aktivatoren der Säugetier-angeborenen Immunantwort. Trotz ihrer Bedeutung für Zellphysiologie und Immunologie bleibt noch viel um zu entdecken über neuartige Lipoprotein Formen, wie sie synthetisiert werden und die Wirkung der verschiedenen Formen auf wirtsimmunität. Um gründliche Studien über Lipoproteine zu ermöglichen, dieses Protokoll beschreibt eine Methode für bakterielle Lipoprotein Bereicherung und Vorbereitung der N-terminalen tryptic Lipopeptide für die Strukturaufklärung von Matrix-assisted Laser desorption ionisation-Zeit des Fluges Massenspektrometrie (MALDI-TOF MS). Erweiterung auf einer etablierten Triton X-114 Phase Partitionierung Methode für die Extraktion von Lipoprotein und Anreicherung von der bakteriellen Zellmembran, das Protokoll enthält zusätzliche Schritte aus, um nicht-Lipoprotein Verunreinigungen, Lipoprotein Ertragssteigerung zu entfernen und Reinheit. Da Lipoproteine in Toll-Like-Rezeptor (TLR) Assays allgemein verwendet sind, ist es wichtig, zunächst die N-terminalen Struktur von MALDI-TOF MS. hierin charakterisieren, ein Verfahren vorgestellt, um konzentrierter hydrophobe Peptide in N-terminale angereichert zu isolieren Lipopeptide geeignet für die direkte Analyse von MALDI-TOF-MS/MS.-Lipoproteine, die von Sodium Dodecyl Sulfat Poly-Acrylamid Gelelektrophorese (SDS-PAGE) getrennt wurden auf eine Nitrocellulose-Membran übertragen, in Situ mit verdaut Trypsin, gegenüber dem Vorquartal um polare tryptic Peptide zu entfernen gewaschen und schließlich mit Chloroform-Methanol eluiert. Wenn in Verbindung mit MS mehr polare trypsiniert Peptide aus Waschlösungen, bietet diese Methode die Möglichkeit, sowohl das Lipoprotein zu identifizieren und zu charakterisieren seine N-Terminus in einem einzigen Experiment. Absichtliche Natrium Addukt Bildung können auch als Werkzeug eingesetzt werden, um mehr strukturell informative Fragmentierung Spektren zu fördern. Letztlich werden Bereicherung der Lipoproteine und Bestimmung ihrer N-terminale Strukturen umfangreichere Studien auf diese allgegenwärtige Klasse bakterielle Proteine erlauben.

Einleitung

Bakterielle Lipoproteine zeichnen sich durch eine konservierte N-terminale Lipid-modifizierten Cystein, die die kugelförmige Protein-Domäne an die Oberfläche der Zellmembran verankert. Sie verteilen sich universell in Bakterien, bildet 2 bis 5 % aller zellulärer Gene innerhalb einer typischen Genom-1. Lipoproteine spielen eine kritische Rolle in einer Vielzahl von zellulären Prozessen, einschließlich der Nährstoffaufnahme, Signaltransduktion, Montage von Proteinkomplexen und bei der Aufrechterhaltung der Zelle Umschlag strukturelle Integrität2. Bei pathogenen Bakterien dienen Lipoproteine als Virulenz Faktoren3,4. Während einer Infektion stachelt Anerkennung der N-terminalen Lipopeptide von Toll-Like-Rezeptor (TLR) 2 eine angeborene Immunantwort gegen eindringende Krankheitserreger zu entfernen. Je nach dem N-terminalen Acylation Zustand sind Lipoproteine Alternative TLR2-heterodimerisierenden-komplexe in der Regel anerkannt. TLR2-TLR1 erkennt N-Acylated Lipopeptide, während TLR2-TLR6 bindet freie Lipopeptide α-Aminosäure Termini. Einmal gebunden, konvergieren die Signalwege induzieren Sekretion von proinflammatorischen Zytokinen3,4.

Früher dachte man, dass Lipoproteine von gram-positiven Bakterien Diacylated und die von Gram-negativen Bakterien Triacylated waren, unterscheiden sich in das Fehlen oder Vorhandensein einer Amid-linked Fettsäure auf der erhaltenen N-terminalen Cystein Rückstand. Diese Annahme wurde durch den Mangel an Sequenz Orthologe in gram-positiven Genomen, Lnt, Gram-negative N-Acyl-Transferase unterstützt, die Triacylated Lipoproteine5bildet. Jedoch haben neuere Studien Lipoprotein Triacylation in gram-positiven Firmicuten, dass fehlende Lnt, sowie drei neuartige N-terminale Lipoprotein Strukturen bezeichnet die Peptidyl, Lyso und N -Acetyl Formen6,7 gezeigt. ,8. Diese Erkenntnisse werfen Fragen über mögliche noch entdeckt Lipoprotein Formen, neben grundlegende Fragen wie diese neuartige Lipoproteine entstehen und welche physiologischen Zweck oder nutzen die verschiedenen Formen vermitteln. Darüber hinaus zeigen sie die aktuelle Unfähigkeit der Genomik, Lipoprotein Struktur Vorhersagen. In der Tat haben wir vor kurzem eine neuartige Klasse von Lipoprotein-N-Acyl-Transferasen, Lit, von Enterococcus Faecalis und Bacillus Cereus , das Lyso-Formular Lipoproteine9macht aufgerufen. Dies zeigt die Notwendigkeit, die aufgrund ihrer extrem hydrophoben Charakters und begrenzte Methoden zur Verfügung, um ihre molekulare Struktur charakterisieren eine Herausforderung sein Lipoprotein Struktur, experimentell zu überprüfen.

Um Studien auf Lipoprotein Induktion der Host Immunantwort sowie die N-terminale Strukturaufklärung zu erleichtern, haben wir mehrere zuvor beschriebenen Protokolle um bakterielle Lipoproteine reinigen und Vorbereiten der N-terminalen tryptic angepasst Lipopeptide für die Analyse von MALDI-TOF MS6,10,11,12. Lipoproteine sind angereichert mit einer etablierten Triton X-114 (im folgenden als Tensid oder TX-114 bezeichnet) Phase Partitionierung Methode, mit der Optimierung zu entfernen Verunreinigungen nicht-Lipoproteine und Lipoprotein Ertrag zu steigern. Diese Lipoproteine sind geeignet für den direkten Einsatz in TLR Tests oder für weitere Reinigung durch SDS-PAGE. Für MALDI-TOF MS Übertragung der Lipoproteine auf Nitrozellulose-Membran bietet ein Gerüst für die effiziente in Situ Trypsin-Verdauung waschen und anschließende Elution von der Membranoberfläche, was zu sehr gereinigt N-terminale Lipopeptide. Nitrozellulose nachweislich Probenbehandlung Erleichterung und Verbesserung des Sequenz-Abdeckung für stark hydrophobe Peptide aus integrale Membrane Proteine13,14, sowie Lipoproteine9,10 . Die Methode hat den zusätzlichen Vorteil der Fraktionierung Peptide basierend auf Polarität, so dass fortgeschrittene Waschlösungen für hohes Vertrauen Proteinidentifikation gleichzeitig mit N-terminale Strukturaufklärung in einem einzigen Experiment analysiert werden können . Dieses Protokoll eindeutig Merkmale vorsätzliche Natrium Addukt Bildung, übergeordnete Ion Fragmentierung in Richtung Dehydroalanyl-Ionen während MS/MS, Beihilfe bei der strukturellen Zuordnung des N- Acylation Staates zu fördern. Der N-Terminus ist variabel und wichtige Funktion im Zusammenhang mit TLR Anerkennung der Lipoproteine. Zusammengenommen hat dieses Protokoll auf Lipoproteine, mit den einzelnen Stufen der Reinigung und Strukturaufklärung von MALDI-TOF MS leicht angepasst, je nach Ziel des Experiments intensive und reproduzierbare Studien erlaubt.

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Protokoll

(1) Zelle Wachstum und Lyse

  1. Wachsen Sie Bakterien in 15 mL tryptic Soy Bouillon (TSB) oder ähnliche rich Media zu späten exponentiellen Phase (OD600 von 1,0-1,5). Ernten von Zellen durch Zentrifugation, einmal mit Tris-gepufferte Kochsalzlösung/EDTA (TBSE) waschen und mit Protokoll fortfahren oder bis zum Gebrauch einfrieren.
    Hinweis: TBSE: 20 mM Tris-Hydrochlorid (HCl), pH 8.0, 130 mM Natriumchlorid (NaCl), und 5 mM Ethylenediaminetetraacetic Acid (EDTA)). Lipoprotein-Ausdruck und Modifikation können durch Wachstumsbedingungen (z.B. Säure, Salzgehalt, Wachstumsmedien) und Wachstum Phase15beeinflusst werden. Zellwachstum kann skaliert werden, wie gewünscht, sondern 15 mL von Zellen ist für eine einzelne Vorbereitung der Lipoproteine empfehlen, da überschüssige Biomasse Lipoprotein Ertrag verringern kann. Eine 15-mL-Vorbereitung ergibt in der Regel genügend Blut für die optimale Beladung von ~ 2-4 Fahrspuren auf einem standard Mini SDS-PAGE-Gel.
  2. Zellen in 800 μl TBSE mit 1 mM Phenylmethyl Sulfonyl Fluorid (PMSF) und 0,5 mg/mL Lysozym aufzuwirbeln. Lösung zu einem 2,0 mL Gewinde Microcentrifuge Schlauch mit Schraubverschluss und o-Ring zu übertragen und 20 min bei 37 ° c inkubieren
    Hinweis: Bestimmte Arten sind nicht anfällig für Lyse von Lysozym. Eine entsprechende lytische Enzym sollten ersetzt werden, um Lyse zu erleichtern.
  3. Die Röhre ~ 800 μl 0.1 mm Zirkonia/Kieselsäure Perlen hinzu und stören Zellen durch Schütteln mit maximaler Geschwindigkeit (7.000 u/min) auf einem Homogenisator für 5 Zyklen von 30 s jeweils mit 2 min ruhen auf dem Eis zwischen jedem Zyklus.
  4. Zentrifuge Probe bei 3000 X g für 5 min bei 4 ° C (pellet-Perlen und ungebrochene Zellen). Übertragen Sie den überstand zu, zu einem neuen 2,0 mL Microcentrifuge Schlauch und halten Sie auf dem Eis.
  5. Die restlichen Pellets 200 μL TBSE hinzu und zurück zu den Homogenisator für einen weiteren Zyklus. Zentrifugieren Sie (siehe oben) und kombinieren Sie überstand mit der vorherigen überstand (sollte 800-1000 μl Gesamtvolumen) zu.

(2) Anreicherung von Lipoproteinen durch TX-114 Phase Partitionierung

  1. Den Überstand mit TX-114 Tensid, eine Endkonzentration von 2 % (Vol/Vol) durch das Hinzufügen von ein gleiches Volumen von 4 % (Vol/Vol) das Tensid in eiskalten TBSE ergänzen und Inkubation für 1 h, mischen durch Umkehrung jedes ~ 15 min auf Eis.
    Hinweis: Wenn gekühlt, wird der überstand und Tensid mischbar sein.
  2. Übertragen Sie das Rohr auf 37 ° C Wasserbad und inkubieren Sie für 10 min, Phasentrennung zu induzieren. Zentrifugieren Sie die Probe bei 10.000 x g für 10 min bei Raumtemperatur , Bi-phasisch Trennung aufrechtzuerhalten.
  3. Vorsichtig aus der oberen wässrigen Phase pipette und verwerfen. Die untere Tensid-Phase um das Rohr zu seinem ursprünglichen Volumen wieder aufzufüllen eiskalte TBSE hinzu und kehren Sie um zu mischen. Inkubieren Sie für 10 min auf Eis.
  4. Übertragen Sie das Rohr auf 37 ° C Wasserbad inkubieren 10 min induzieren Phasentrennung und Zentrifugieren bei 10.000 x g für 10 min bei Raumtemperatur.
  5. Wiederholen Sie die Schritte 2,3-2,4 einmal mehr für eine Gesamtmenge von 3 Trennungen. Entfernen der oberen wässrigen Phase und entsorgen.
  6. Entfernen Sie Pellet ausgefällten Proteine, die im Laufe der Extraktionen (sichtbar an der Unterseite des Rohrs), gebildet, indem die Tensid-Phase 1 Volumen von eiskalten TBSE hinzufügen. Zentrifugieren Sie bei 4 ° C bei 16.000 x g für 2 min zu unlöslichen Protein Pellets.
    Hinweis: Probe sollte eine einzelne Phase bleiben. Wenn Phasentrennung auftritt, neu chill Probe und Zentrifugieren Sie wieder. Das Pellet besteht im Allgemeinen aus nicht-Lipoprotein Verunreinigungen, aber zur weiteren Analyse beibehalten werden.
  7. Übertragen Sie den überstand sofort zu einem frischen 2,0 mL Microcentrifuge Schlauch mit 1250 μl 100 % Aceton Pipette oben und unten gründlich, um die Probe von der Spitze zu waschen, wie es zähflüssig sein wird. Mischen Sie durch Umkehrung und Inkubation über Nacht bei-20 ° C Protein ausgefällt.
  8. Zentrifugieren Sie die Probe bei 16.000 x g für 20 min bei Raumtemperatur, pellet-Lipoproteine mit Augenmerk auf die Ausrichtung des Rohres. Lipoproteine bildet einen dünnen, weißen Film entlang der Außenwand des Rohres.
  9. Waschen Sie Pellet zweimal mit 100 % Aceton. Dekantieren Sie Aceton und lassen Sie Probe an der Luft trocknen.
  10. 20-40 μl 10 mm Tris-HCl, pH 8.0 oder ein standard Laemmli SDS-PAGE Probe Puffer16 hinzufügen und gründlich von oben und unten an der Wand mit der ausgefällten Lipoproteine pipettieren aufzuwirbeln. Kratzen Sie die Seite des Rohrs mit der PIPETTENSPITZE, Lipoproteine zu verdrängen.
    Hinweis: Lipoproteine löst sich nicht in Tris-Puffer, aber eher eine Suspension bilden.
    1. Lipoproteine bei-20 ° C bis zu seiner Verwendung zu speichern.

(3) SDS-PAGE, Elektroblotting und Färbungen mit Ponceau S

  1. Separate Lipoproteine durch SDS-PAGE mit Standardmethoden16.
    Hinweis: Die entsprechenden Gel Acrylamid-Anteil variiert je nach Verwendungszweck und Größe der Lipoproteine. Hier wurden E. Faecalis Lipoproteine über 10 % Tris-Glycin Gel getrennt, während eine 16,5 %-Tris-Tricine-Gel für die kleineren E. Coli Lipoprotein Lpp17verwendet wurde.
  2. Übertragen Sie die Lipoproteine auf Nitrozellulose Transfer Membran mit einem standard Elektroblotting-Verfahren.
    Hinweis: Eine halbtrockene Übertragung mittels Bjerrum Schafer-Nielsen Puffer plus 0,1 % SDS wurde in 25 V, 1,3 mA für 15 min18. Alternativ könnte Polyvinylidene Difluoride (PVDF) Membran verwendet werden, jedoch wie es mehr hydrophobe als Nitrozellulose, es effizient Elution von hydrophoben Lipopeptide von der Membrane in späteren Schritten verringern kann.
  3. Übertragen Sie die Nitrozellulose-Membran auf einen Behälter und Deckel mit Ponceau S-Lösung (0,2 % (w/V) Ponceau S in 5 % Essigsäure). Rock, sanft für 5 min oder bis rot-rosa Bänder sichtbar sind.
  4. Ponceau S Lösung abgießen und sorgfältig ausspülen der Nitrozellulose-Membran mit dH2O überschüssiges entfernen Flecken.
    Hinweis: Ponceau-gefärbten Bändern werden schnell destain. Wenn die Bänder verschwinden, wiederholen Sie Färbung.
  5. Mit einer sauberen Rasierklinge Verbrauchsteuern Sie die gewünschte Band und den Transfer zu einem Microcentrifuge Schlauch. Waschen Sie dreimal mit 1 mL dH2O, vollständig die Band destain.
    Hinweis: Das Protokoll kann hier angehalten werden. Speichern Sie den ausgeschnittenen Bereich bedeckt mit Wasser bei-20 ° C bis zur Verwendung.
  6. Abschnitt zu übertragen, um eine saubere Oberfläche und mit einer sauberen Rasierklinge, Würfel des Nitrozellulose-Streifens in kleine Stücke von ca. 1 mm x 1 mm. sammeln die Stücke in einem 0,5 mL eiweißarme Bindung Microcentrifuge Schlauch.
  7. Waschen Sie die Stücke zweimal mit 0,5 mL des frisch zubereiteten 50 mM Ammonium Bicarbonat (NH4HCO3), pH 7,8 im Hochleistungs-Flüssigkeitschromatographie (HPLC) Grade Wasser.

4. folgen Verdauung, Lipopeptide Extraktion aus Nitrozellulose-Membran, Ablagerung auf MALDI Ziel- und Datenerfassung

  1. Nitrozellulose-Stücke in 20 μl einer 20 μg/mL Lösung von Trypsin in 50 mM NH4HCO3pH 7,8 in HPLC Grade Wasser aufschwemmen. Wirbel zu mischen, dann kurz drehen, um sicherzustellen, dass alle Stücke die Trypsin-Lösung vollständig abgedeckt sind. Decken Sie den Schlauch Deckel mit Paraffin Film um Verdunstung zu verhindern und Digest über Nacht bei 37 ° c inkubieren
  2. Drehung der Probe bei 16.000 x g für 30 s und Entfernen der Flüssigkeit durch pipettieren.
    Hinweis: Dies entfernt trypsiniert hydrophilen Peptide, die später durch MALDI-TOF MS Proteinidentifikation untersucht werden können.
  3. 50 μL der 0,5 % Trifluoroacetic Säure (TFA) in HPLC Grade Wasser hinzufügen. Vortex mischen, dann drehen Sie die Probe kurz um sicherzustellen, dass alle Stücke von der Lösung bedeckt sind. 10 min bei Raumtemperatur inkubieren. Entfernen Sie die Flüssigkeit durch pipettieren.
    Vorsicht: TFA ist Gesundheitsschädlich beim Einatmen. Mit Vorsicht handhaben und in der chemischen Dunstabzugshaube verwenden. Vermeiden Sie Hautkontakt.
  4. Wiederholen Sie Schritt 4.3 mit 50 μL der 10 % Acetonitril HPLC Grade Wasser.
    Vorsicht: Acetonitril ist Gesundheitsschädlich beim Einatmen. Mit Vorsicht handhaben und in der chemischen Dunstabzugshaube verwenden. Vermeiden Sie Hautkontakt.
  5. Wiederholen Sie Schritt 4.3 mit 50 μL der 20 % Acetonitril HPLC Grade Wasser.
    Hinweis: Dadurch werden alle mäßig hydrophoben Peptiden lose gebunden, die Nitrozellulose entfernt.
  6. Eluieren fest gebundenen Lipopeptide, hinzufügen 15 μl 10 mg/mL frisch zubereiteten α-Cyano-4-Hydroxycinnamic Säure (CHCA) Matrix in Chloroform-Methanol (2:1, V/V) gelöst und 10 min bei Raumtemperatur mit intermittierenden Vortexen inkubieren.
    1. Alternativ fügen Sie 15 μl Chloroform-Methanol zu eluieren Lipopeptide und mischen Sie mit Matrix zu einem späteren Zeitpunkt hinzu. Andere Matrizen, wie z. B. 2,5-Dihydroxybenzoic Acid (DHB), sollte als Alternative zu CHCA getestet werden, wenn unbefriedigende Ergebnisse, für eine bestimmte Lipopeptide Komposition erzielt werden.
      Vorsicht: Chloroform und Methanol sind gesundheitsschädlich bei Einatmen. Mit Vorsicht handhaben und in der chemischen Dunstabzugshaube verwenden. Vermeiden Sie Hautkontakt.
    2. Optional: Natrium zu fördern Bildung Addukt, ergänzen die Lösung von CHCA in Chloroform-Methanol mit wässrigen Natriumbicarbonat (Nahco33) um eine Endkonzentration von 1 mM.
  7. Drehen Sie die Probe kurz. Übertragen Sie mit einer Pipette vorsichtig die Flüssigkeit auf einen neuen low-Protein Bindung Microcentrifuge Schlauch. Diese Lösung enthält den Großteil der N-terminalen Lipopeptide.
    Hinweis: Die Nitrozellulose kann ganz oder teilweise in der Chloroform-Methanol-Lösung auflösen. Dies wirkt sich nicht negativ auf MS-Ergebnisse und kann als alternative Methode zur Steigerung Lipopeptide Rendite verwendet werden. PVDF-Membran löst sich nicht auf die gleiche Weise.
  8. 1 μl der eluierten Lipopeptide mit CHCA auf einer polierten Stahl MALDI-Ziel zu hinterlegen.
    Hinweis: Das Chloroform-Methanol wird schnell verdunsten hinterließ kristallisierten CHCA und Lipopeptide. Eine optionale zweite 1 μL aliquoten kann auf den gleichen Punkt Erhöhung der probenkonzentration deponiert werden. Chloroform-Methanol kann deutlich nach Absetzung des Ziels verbreitet und als solche sollte darauf geachtet werden um zu vermeiden, Probe mischen auf dem Ziel. Es wird empfohlen, zu hinterlegen und schießen mehrere Flecken jeder Probe.
  9. Fahren Sie sofort mit Massenspektrometrie. Scannen Sie alle Bereiche des Spots für Lipopeptide Signal, vor allem, wenn der Spot zwei Schichten der Probe, enthält, wie die zweite Schicht der Lipopeptide zum äußeren Rand der Stelle schieben kann.
    Hinweis: Empfohlene Ausgangspunkt Laserstärke ist 25 %, obwohl es möglicherweise erforderlich, erhöhen die Intensität um Signal zu erwerben und die Summe mehrere Spektren (20 oder mehr Scans) um ausreichendes Signal-Rausch-Verhältnis zu erreichen. Hier Spektren wurden erworben, auf einem MALDI-TOF-TOF-Instrument (siehe die Tabelle der Materialien) mit einer Fabrik konfiguriert Instrument-Methode für den Reflektor positiv-Ionen-Nachweis über den 700-3500 m/Z -Bereich. Das Gerät wurde mit einer Rinderserumalbumin (BSA) folgen Peptid Mischung kalibriert.

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Ergebnisse

Eine schematische Darstellung des Protokolls ist in Abbildung 1zur Verfügung gestellt. Die Lipoprotein-angereicherten Bruchteil extrahiert von Enterococcus Faecalis ATCC 19433 von TX-114 ist in Abbildung 2dargestellt. Zum Vergleich zeigt sich auch das bandenmuster die ausgefällten Proteinfraktion. Proteine aus dieser Fraktion wurden von MALDI-MS zu sehr reichlich kontaminierende Proteine als Lipoproteine (Tabelle...

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Diskussion

Das Protokoll hierin beschreibt zwei Phasen der Lipoprotein-Charakterisierung: Anreicherung von TX-114 phase Partitionierung und strukturellen Bestimmung durch MALDI-TOF MS. Während der TX-114 Extraktion entfernt zusätzliche Zentrifugation kontaminierende Proteine, die während dieses Prozesses, gefolgt von Aceton Niederschlag hochangereichertem Lipoproteine Ausbeute auszufällen. Durch die Begrenzung des Ausmaßes der jede Vorbereitung auf 15 mL im Wert von Zellen, können mehrere Proben problemlos parallel verarbeitet und ...

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Danksagungen

Forschung im Labor Meredith wurde von Start-up aus Mitteln der Eberly Hochschule der Wissenschaft (Pennsylvania State University) unterstützt. Wir danken Dr. Tatiana Laremore für kompetente technische Beratung und Zugang zu Geräten an der Penn State Proteomics und Mass Spectrometry Core Facility, University Park, PA, wo massenspektrometrische Analysen durchgeführt wurden.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Materials0,01
BioSpec Products110791012
EssigsäureEMDAX0073-9
AcetonEMDAX0116-6
AcetonitrilEMDAX0142-6
AmmoniumbicarbonatFluka Analytical09830
BioTrace NT NitrocellulosePALL Life Sciences66485
Rinderserumalbumin (BSA) Digest StandardProteaPS-204-1
ChloroformAcros Organics423550025
Ethylendiamintetraessigsäure (EDTA)Fisher ScientificBP118
Wasser in HPLC-QualitätEMDWX0008-1
LysozymeFisher ScientificBP535-1
MethanolSigma-Aldrich34860
Phenylmethylsulfonylfluorid (PMSF)Amresco0754
Pierce TrypsinproteaseThermo Scientific90057
Ponceau SAcros Organics161470100
Protein LoBind Tube 0,5 mlEppendorf022431064
NatriumbicarbonatSigma-Aldrich792519
NatriumchloridMacron Feinchemikalien7581-06
Trifluoressigsäure (TFA)Sigma-Aldrich299537
Tris-hydrochlorid (HCl)Fisher ScientificBP152
Triton X-114Sigma-Aldrich93422
Tryptische Sojabrühe (TSB)BD211822
α-Cyano-4-hydroxyzimtsäure (MS-Qualität)Sigma-AldrichC8982
NameUnternehmen<strong>KatalognummerKommentare
Ausrüstung
MagNALyserRoche
Trans-Blot Turbo Transfer SystemBio-Rad
MALDI-TOF TargetBruker Daltonics
Ultraflextreme MALDI-TOF-TOFBruker DaltonicsAusgestattet mit einem 355 nm frequenzverdreifachten Nd:YAG Smartbeam-II Laser
mm Zirkonoxid-/Silica-Kügelchen

Referenzen

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