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$$\longrightharp{xx}$$,
Als Ergebnis der Festphasenextraktion erhielt eine gelblich bis dunkel grüne Lösung in allen Fällen, die das Vorhandensein von Chlorophyll-haltigen Substanzen (Abbildung 1). Pharma in diese Wasserprobe enthaltenen führe nicht auf sichtbare Färbung seit ihre Konzentration und ihre Absorption wäre in der Regel zu niedrig. Stattdessen muss das Auftreten von Arzneimitteln mit HPLC und hochauflösende Massenspektrometrie analysiert werden.
Ungezielte Analyse benutzte eine HPLC-ESI-Q-TOF-MS wegen seiner herausragenden Massengenauigkeit ermöglicht die genaue Masse für jedes zusammengesetzte Ion zu erhalten. Die Masse erkannt Chromatogramm der durchgeführten Analyse wurde dargestellt, wie eine base Peak Chromatogramm (BPC), die die intensivste Höhepunkt jedes Massenspektrum zeigt im Verlauf die chromatographische Trennung erfasst. Das Beispiel in Abbildung 2 dargestellte präsentiert die BPC eine Wasserprobe vom Rhein.
Die BPC enthielt mehr als fünfundzwanzig Gipfeln spiegelt verschiedene m/Z Werte, daher verschiedene Verbindungen, von denen sieben in der BPC geprägt waren. Da die Stoffe a-prioriunbekannt waren, besteht der erste Schritt zu ihrer Identifizierung normalerweise die Summenformel ableiten. Dies geschieht durch genaue Masse und Isotopen Muster von TOF-Erkennung zur Verfügung gestellt, obwohl die isotopische Muster nicht in allen Fällen aufgrund der geringen Stichprobe Konzentrationen in Umweltproben beobachtet werden kann. Mit Hilfe der öffentlichen Datenbank, z. B. Arzneimittel in der Umwelt durch die deutschen Umweltbundesamtes (UBA), ca. 630 Verbindungen enthalten ist eine vorläufige Identifizierung von einer kleinen Gruppe von Kandidaten oft erfolgreich. Für einen endgültigen Beweis entweder im Vergleich zu handelsüblichen Referenzstandards durchgeführt werden kann oder MS/MS Fragmentierung Muster betrachtet werden können (Abbildung 3).
Vergleich zu Standards in Bezug auf die Verweildauer entfielen in dieser Arbeit die Identifizierung von Arzneimitteln, die sehr häufig in deutschen Gewässern zu finden. Diese Stoffe gehören Metoprolol, β-Blocker, Carbamazepin, Analgetikum, und die Makrolid-Antibiotikum Erythromycin A und seine Ableitung Anhydroerythromycin A. Erythromycin dient als Beispiel, die in dieser Studie weiter untersucht. Die untersuchte Rhein River Probe hatte einen pH-Wert von 7,6 und einer durchschnittlichen Temperatur von 16,5 ° C. Bei diesem pH Anhydroerythromycin auch dürften in der Wasserprobe anwesend zu sein. Für die detaillierte Analyse wurden die extrahierten Ion Chromatogramme (EIC) der Wasserprobe mit Referenzstandards (Abbildung 4) verglichen.
Der Vergleich zeigt gute Übereinstimmung zwischen die Retentionszeit für Metoprolol, Carbamazepin und Anhydroerythromycin und der beobachteten Analyten. Die EIC der Referenz-standard-Anhydroerythromycin angezeigt, zwei Spitzen, somit zwei Verbindungen wo Austrocknung an zwei unterschiedlichen Standorten von Erythromycin stattgefunden hatte. Jedoch wurde nur ein Anhydroerythromycin Isomer in der Rhein-River-Probe identifiziert. Erythromycin selbst war nur in Spuren vorhanden. Daher konnte kein MS/MS-Spektrum gewonnen werden. Die genaue Massen für das Antibiotikum und seine gelief sind in Tabelle 2angegeben. Mit EIC, also m/Z-Wert und Retention-Zeit, Metoprolol, Carbamazepin, konnten Erythromycin und Anhydroerythromycin in der Rhein-River-Probe identifiziert werden.
In Bezug auf die aquatische Umwelt ist es wichtig, Pharmazeutika aus Kläranlagen auf der Durchreise und Eingabe von Oberflächenwasser zu verhindern. Auf der Suche nach einer effizienten Beseitigung wurden UV-C Strahlung Experimente bei verschiedenen pH-Werten als Beispiel für Erythromycin durchgeführt. Konzentration-Zeit (c-t)-Diagramme wurden mit Masse-Bereich vs. Zeit Grundstücke abgeleitet EIC. Der Abbau wurde nach Gleichung 2 beschrieben. Erythromycin besteht aus Erythromycin A und B und Anhydroerythromycin A, mit zwei Isomere der letzteren. Die c-t -Kurven von Erythromycin A und deren rechnerische passt sind in Abbildung 5dargestellt. Bei pH 7 wurde beschleunigten Abbau beobachtet. Dies gilt für alle vier Verbindungen untersucht, Daten nicht angezeigt. Infolgedessen sollte um pH-neutralen Foto-induzierte Degradation von Erythromycin durchgeführt werden. Im Falle der Rhein River Probe war pH-Einstellung nicht erforderlich.
Photodegradates der Medikamente waren auch identifizierten an allen drei pH-Werte. Tabelle 3 enthält ein Überblick über diese Photodegradates mit ihren entsprechenden Struktur-Vorschläge. Für die kinetische Analyse des Photodegradates, das Produkt mit m/Z = 720 dient als Beispiel. Photodegradates können oft als Reaktion Zwischenprodukte beschrieben werden. Daher wurden die Photodegradates in Bezug auf Aconsecutive und anschließende Follow-up-Reaktion beschrieben. Die Entscheidung zwischen den entstehenden Zwischenprodukte basiert auf die Güte der Anpassung berechnet mit passender Software, wo der Bestimmungskoeffizient (R2) und der Mean-squared Restfehler (RMSE) als Kriterium aufgenommen wurden. Aufgrund der Tatsache, dass Erythromycin Säure-instabil ist, degradates wie bei der Bestrahlung auftreten würde anwesend vor Bestrahlung waren. Der daraus resultierende Effekt auf Gleichungen 3 und 4 war eine endliche ab Konzentration. Daher wurde ein Faktor der Gleichungen hinzugefügt. Abbildung 6 zeigt experimentelle Daten und passt berechnet nach Gleichung 3 und 4.
In diesem Beispiel eines Zwischenprodukts demonstriert die Erhöhung der Konzentration mit einem sigmoidale Anstieg gefolgt von einer exponentiellen Zerfall. Dies ist bezeichnend für eine anschließende Follow-up-Reaktion zwischen. Ein Zwischenprodukt der aufeinander folgenden Reaktion zeigt nicht die Erhöhung der sigmoidale. Statistischen Qualitätsparameter zeigte auch die leicht überlegene Vereinbarung fit nach dem anschließenden Follow-up-Reaktionsmodell. Der Koeffizient der Entschlossenheit R2 der aufeinander folgenden Reaktion war 0.9898 und somit niedriger als die der die anschließende Follow-up-Reaktion wird 0.9976. Daher war der untersuchten Produkt als Zwischenprodukt einer anschließenden Follow-up-Reaktion interpretiert. Die k-Werte ergaben sich aus der rechnerischen Passform sowie, die Halbwertszeit war berechnete folgende Gleichung 5. Alle relevanten kinetische Parameter sind in Tabelle 3gesammelt.
Der schnellste Abbau wurde beobachtet bei pH 7, gefolgt von pH 9, während die langsamste Verschlechterung für pH 3 (Abbildung 5) gefunden wurde. Diese Feststellung galt auch für die Bildung und den Abbau von der Photoproducts. Drei Photodegradates wurden beobachtet. Ihre m/Z-Werte waren 750.46 entsprechend Ery F, 720.45, Ery C und 192.12, DPEry192, ein glycosidically gebundenen Zucker der Erythromycin-Struktur (Abbildung 7). Keine Verschlechterung der das Produkt könnte für DPEry192 bei pH 3 und 9 und für Ery F werden bei pH 9 beobachtet. In diesen Fällen war die Bestrahlungszeit nicht ausreichend lange, totale Zerstörung des Zwischenprodukts zu beobachten. Dennoch könnte die Bildung Rate konstant mit Gleichung 5, das entspricht einem Endprodukt bestimmt werden.

Abbildung 1 . Vergleich der Proben vom Rhein nach SPE (links) und hochreinen water(right). Die grüne Färbung ist bezeichnend für Substanzen, die Chlorophyll enthalten. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 2 . BPC einer Wasserprobe nach SPE mit HPLC-ESI-Q-TOF-MS. gemessen Alle Chromatogramme wurden auf den höchsten Gipfel normalisiert. Illustrative m/Z-Werte kennzeichnen wir wie aus dem entsprechenden MS-Spektrum zu erhalten. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 3 . Q-TOF-MS-Spektrum von Erythromycin A (unten) und MS/MS-Spektrum der Ionen m/Z = 734.4689 (oben). Der Spektren zeigen die quasi-Molekulare Ionen von Erythromycin A mit seinen Isotopen Muster und die Fragmente bei einer angewandten Kollision Energie von 30 eV. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 4 . Normalisiert die EIC (A) Metoprolol, Carbamazepin (B), (C) Erythromycin A und (D) Anhydroerythromycin A in einer Rhein Fluss Probe (blau) und Reinstwasser aus Referenzverbindungen (rot). Die Retentionszeiten der Referenzverbindungen und diejenigen von Arzneimitteln in der Wasserprobe sind identisch. Das Signal-Rausch-Verhältnis von Metoprolol (A) und Anhydroerythromycin (D) sind höher als die von Carbamazepin (B) und Erythromycin (C), was darauf hindeutet, dass Letzteres nur in Spuren vorhanden waren. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 5 . Konzentration-Zeit-Verläufe der Photodegradation von Erythromycin A bei pH 3 (rot), pH-Wert 7 (grün) und pH 9 (blau) normalisiert. Lösungen wurden 10 min. lang bestrahlt. Bei pH 7 war Erythromycin vollständig aus der Probe entfernt. Die Konzentration-Zeit-Verläufe könnte durch kinetische Gleichungen erster Ordnung beschrieben werden. Die kinetische Geschwindigkeitskonstanten waren 0,10 (pH 3), 0,59 (pH 7) und = 0,21 (pH 9). Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 6 . Vergleich der passt der Konzentrationszeit Kurven von der Photoprodegradates von Erythromycin mit m/Z = 720 bei pH 9 folgende Gleichungen 3 (A) und 4 (B). Das Bestimmtheitsmaß von aufeinander folgenden Reaktion (A): R2 = 0.9898, RMSE = 4.645E + 04, und der späteren Follow-up-Reaktion (B): R2 = 09976, RMSE = 2.366E + 04. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 7 . Struktur von Erythromycin A, Erythromycin B und Anhydroerythromycin und Photdegradation. Diese Zahl wurde von Voigt Et al.modifiziert. 27. die Produkte wurden nach 10 min der UVC-Bestrahlung gebildet und durch HPLC-Q-TOF-MS und MS/MS. identifiziert Klicken Sie bitte hier, um eine größere Version dieser Figur.
| Liquid Chromatography | |
| Spalte: | umgekehrt-Phase C-18 |
| Spalte: | CoreShell Spalte; |
| Spalte: | Abmessungen 50 x 2,1 mm, 2,6 µm Partikelgröße |
| Säulentemperatur | 40 ° C |
| Injektionsvolumen: | 5 ΜL |
| Durchfluss: | 0,3 mL/min |
| Mobile Phase: | Lösungsmittel A: Wasser mit 0,1 % Ameisensäure |
| Lösungsmittel B: Methanol mit 0,1 % Ameisensäure |
| Gradient-Programm: | |
| Zeit/min | 0 | 1 | 10 | 11.1 | 11.2 | 12 |
| Umlenkern Lösungsmittel Verhältnis | 99:1 | 70: 30 | 25: 75 | 1:99 | 1:99 | 99:1 |
| Massenspektrometrie | |
| Quelle: | Dual AJS ESI (positiv-Modus) |
| Gas- und Quelle | |
| Gastemperatur: | 300 ° C |
| Trocknungsgas: | 8,0 L/min |
| Vernebler: | 14 psig |
| Gastemperatur Mantel: | 300 ° C |
| Scheide Gas Flow: | 8 L/min |
| Messe-Angebot: | 100 - 1000 m/Z |
| Abtastrate: | 1 Spektrum/s |
| Erfassungszeit: | 1000 ms/Spektrum |
| Transiente / Spektrum | 10014 |
| Für gezielte MS-Methode | |
| Aufprallenergie (CE): | 0 eV |
| Bevorzugte Masse - Tabelle | 734.4685 |
| Für MS/MS (in der Regel Auto-MS/MS-Modus) | |
| Aufprallenergie (CE): | 30 eV |
| Absolute Schwelle | 3000 zählt |
| Relative Schwelle | 0,01 % |
| Messe-Angebot: | 100 - 100 m/Z |
| Abtastrate: | 1 Spektrum/s |
| Erfassungszeit: | 1000 ms/Spektrum |
| Transiente / Spektrum | 9964 |
| Für gezielte MS/MS-Methode | |
| Bevorzugte Masse - Tabelle | 734.4685 |
Tabelle 1. Voraussetzungen und Rahmenbedingungen für die HPLC-ESI-Q-TOF-MS-Analyse von Arzneimitteln in Wasser Matrizen verwendet. Es ist ratsam, einen Spülung Schritt zwischen die chromatographische läuft durch eine Stichprobe von reinen Reinstwasser zwischen zwei Analysen ausgeführt oder durch Verlängerung der Laufzeit der chromatographische Methode um alle Stoffe zu eluieren einzuführen.

Tabelle 2: Pharma in den Rhein River Probe mit ihre Retentionszeit, theoretische gefunden und beobachtet [M + H]+ und deren Struktur. Der ESI-Modus eingestellt wurde zu positiv, so dass [M + H]+-Ionen wurden erkannt. Die Verweilzeit kann minimal üblichen experimentellen bekannten Gründen variieren.
| pH 3 | pH 3 | pH 7 | pH 7 | pH 7 | pH 7 | pH 7 | pH 7 | pH 9 | pH 9 | pH 9 | pH 9 |
| Produkt | k1 [min-1] | t1/2 [min] (k1) | k1 [min-1] | k2 [min-1] | k3 [min-1] | t1/2 [min] (k1) | t1/2 [min] (k2) | t1/2 [min] (k3) | k1 [min-1] | k2 [min-1] | t1/2 [min] (k1) | t1/2 [min] (k2) |
| Ery A | 0.1 | 6.81 | 0,59 | - | - | 1.18 | - | - | 0.21 | - | 3.37 | - |
| Ery B | 0.05 | 14,23 | 0.66 | - | - | 1.04 | - | - | 0,22 | - | 3.21 | - |
| Ery A – H2Oa | 0,11 | 6.53 | 0,59 | - | - | 1.17 | - | - | 0,19 | - | 3.72 | - |
| Ery A – H2Ob | 0,15 | 4,76 | 1.11 | - | - | 0,63 | - | - | 0.21 | - | 3.35 | - |
| Ery F | nicht eingehalten | - | 0,89 | 0,35 | - | 0.78 | 1,98 | - | 1.09* | - | 0.64 | - |
| Ery C | nicht bestimmt | - | 0,74 | 5.27 | 0.78 | 0,94 | 0.13 | 0,89 | 0,17 | 0.18 | 4.04 | 3.92 |
| DPEry192 | 0.35* | 1.97 | nicht eingehalten | - | - | - | - | - | 0.30* | - | 2.34 | - |
| * Keine weiteren Abbau beobachtet |
Tabelle 3. Kinetische Geschwindigkeitskonstanten und entsprechenden Halbwertszeit für den Abbau von Erythromycin und seine Photodegradates, adaptiert von Voigt Et Al. 27 . Erythromycin besteht aus Erythromycin A, Erythromycin B und zwei Formen des Anhydroerythromycin. Drei Photodegradates wurden beobachtet. Es werden als Ery F, Ery C und DEry192 bezeichnet.