An erratum was issued for Controlled Microfluidic Environment for Dynamic Investigation of Red Blood Cell Aggregation. The introduction section was updated.
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30. November 2015
An erratum was issued for Controlled Microfluidic Environment for Dynamic Investigation of Red Blood Cell Aggregation. The introduction section was updated.
An erratum was issue for Controlled Microfluidic Environment for Dynamic Investigation of Red Blood Cell Aggregation. The introduction section was updated.
Ein Erratum wurde für Controlled Microfluidic Environment for Dynamic Investigation of Red Blood Cell Aggregation veröffentlicht. Der Abschnitt Einleitung wurde aktualisiert.
Die Einleitung wurde aktualisiert von:
Nur wenige Studien haben versucht, die Erythrozytenaggregation zu untersuchen und den Grad der Aggregation unter kontrollierten Strömungsbedingungen zu bestimmen15-17. Diese Studien untersuchen jedoch indirekt die Größe der Erythrozytenaggregate, indem sie das Verhältnis des besetzten Raums in einem Schersystem ermitteln, das anhand mikroskopischer Blutbilder gemessen wird und Informationen über den Aggregationsgrad sowie die lokale Viskosität liefert.
Daher stellen wir ein neues Verfahren vor, um RBC-Aggregate in der Mikrozirkulation direkt, dynamisch und bei kontrollierten sowie konstanten Schergeschwindigkeiten zu quantifizieren. RBC-Suspensionen werden in einem Doppel-Y-Mikrokanal (wie in Abbildung 1 dargestellt) zusammen mit einer phosphatgepufferten Kochsalzlösung (PBS) geführt, wodurch eine Scherströmung in der Blutschicht erzeugt wird. In dieser Blutschicht kann eine konstante Schergeschwindigkeit erreicht werden. Die RBC-Suspensionen werden bei verschiedenen Hämatokritwerten (H) (5 %, 10 % und 15 %) sowie unter verschiedenen Schergeschwindigkeiten (2–11 s-1) getestet. Die Blutgeschwindigkeit und Schergeschwindigkeit werden mithilfe eines mikroskaligen Particle-Image-Velocimetry-Systems (µPIV) bestimmt, während die Strömung mit einer Hochgeschwindigkeitskamera visualisiert wird. Die erhaltenen Ergebnisse werden anschließend mit einem MATLAB-Programm basierend auf den Bildintensitäten verarbeitet, um die RBCs zu detektieren und die Größen der Aggregate zu bestimmen.
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Nur wenige Studien haben versucht, die Erythrozytenaggregation zu untersuchen und den Aggregationsgrad unter kontrollierten Strömungsbedingungen zu bestimmen15–17. Diese Studien untersuchen jedoch indirekt die Größe der Erythrozytenaggregate, indem sie das Verhältnis des besetzten Raums in einem Schersystem ermitteln, das anhand mikroskopischer Blutbilder gemessen wird und Informationen über den Aggregationsgrad sowie die lokale Viskosität liefert. Chen et al.18 stellten eine direkte Messtechnik zur Bestimmung der Größe von Erythrozytenaggregaten vor und lieferten die Größenverteilung der Erythrozytenaggregate für verschiedene Scherspannungen, indem sie die Durchflussrate der Suspensionen variierten und gleichzeitig den Druckabfall über eine Strömungskammer überwachten. Die Scherspannungen werden anhand des überwachten Drucks mithilfe der Stokes-Gleichung berechnet18.
Daher stellen wir ein neues Verfahren vor, um RBC-Aggregate direkt in einem kontrollierten mikrofluidischen Umfeld dynamisch unter spezifischen, konstanten und messbaren Schergeschwindigkeiten zu quantifizieren. Die Blutströmung im Schersystem wird senkrecht zur Fließrichtung beobachtet, was im Vergleich zu früheren Studien15,18 einen anderen Blickwinkel auf die Strömungsuntersuchung bietet und eine Visualisierung des gesamten interessierenden Bereichs ermöglicht. RBC-Suspensionen werden in einem Doppel-Y-Mikrokanal (wie in Abbildung 1 dargestellt) zusammen mit einer Phosphat-gepufferten Kochsalzlösung (PBS) geführt, wodurch eine Scherströmung in der Blutschicht erzeugt wird. In dieser Blutschicht kann eine konstante Schergeschwindigkeit erreicht werden. Die RBC-Suspensionen werden bei verschiedenen Hämatokritwerten (H) (5 %, 10 % und 15 %) und unter verschiedenen Schergeschwindigkeiten (2–11 sec-1) getestet. Die Blutgeschwindigkeit und Schergeschwindigkeit werden mithilfe eines mikro-Particle-Image-Velocimetry-(µPIV)-Systems bestimmt, während die Strömung mit einer Hochgeschwindigkeitskamera visualisiert wird. Die erhaltenen Ergebnisse werden anschließend mit einem MATLAB-Programm basierend auf den Bildintensitäten verarbeitet, um die RBCs zu detektieren und die Größen der Aggregate zu bestimmen.
Referenz 18 wurde aktualisiert auf:
18. Chen, S., Barshtein, G., Gavish, B., Mahler, Y., Yedgar, S. Überwachung der Erythrozytenaggregierbarkeit in einer Flusskammer mittels computerisierter Bildanalyse. Clin. Hemorhol. Microcirc. 14, (4), 497-508 (1994).
Alle nachfolgenden Zitierungen wurden ebenfalls aktualisiert.