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Research Article
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
Obwohl viele Insekten in der Unterordnung Heteroptera (Insecta: Hemiptera) sind giftig, deren Venom-Zusammensetzung und die Funktionen ihrer Venom-Toxine sind meist unbekannt. Dieses Protokoll beschreibt Methoden zum Heteropteran Gifte für weitere Charakterisierung, mittels Elektrostimulation, Belästigung und Drüse Dissektion zu ernten.
Heteropteran Insekten wie Assassin Bugs (Reduviidae) und riesigen Wasserwanzen (Belostomatidae) stammte aus einem gemeinsamen Vorfahren predaceous und giftige, und die Mehrzahl der erhaltenen Wanzen behalten diese trophische Strategie. Einige Wanzen ernähren vertebrate Blut umgestellt haben (z. B. Kissing Fehler, Triatominae; und Bettwanzen, Cimicidae) während andere zurückgesetzt haben, ernähren sich von Pflanzen (die meisten Pentatomomorpha). Allerdings ist mit Ausnahme von Kissing Bugs verwendet, um zu erleichtern, Blut-Fütterung, wenig Speichel über Heteropteran Gifte im Vergleich gegen die Gifte der Schlangen, Spinnen und Skorpione bekannt.
Ein Hindernis für die Charakterisierung von Heteropteran Venom Giftstoffe ist die Struktur und Funktion der Venom/Lippen Drüsen, die sowohl morphologisch komplex sind und mehrere biologische Aufgaben (Verteidigung, Beutefang und extraoralen Verdauung). Dieser Artikel beschreibt drei Methoden, mit denen wir erfolgreich Heteropteran Gifte zu sammeln. Erstens stellen wir Elektrostimulation sowie eine komfortable Möglichkeit, Venom zu sammeln, die oft tödlich, wenn injiziert ist Beute Tiere entfällt die Kontamination von Drüsengewebe. Zweitens zeigen wir, dass sanfte Belästigung der Tiere ausreichen, um Venom Extrusion aus dem Rüssel und/oder Venom spucken in einigen Gruppen von Wanzen zu produzieren. Drittens, beschreiben wir Methoden zur Ernte Venom Giftstoffe durch Dissektion narkotisierter Tiere, die Giftdrüsen zu erhalten. Diese Methode ist komplementär zu anderen Methoden, wie es gestatten, Ernte von Toxinen aus Taxa in denen Elektrostimulation und Belästigung unwirksam sind. Diese Protokolle können Forscher Giftstoffe aus Heteropteran Insekten zur Charakterisierung von Struktur und Funktion und mögliche Anwendungen in Medizin und Landwirtschaft zu ernten.
Heteropteran Gifte sind potent bioaktiven Substanzen1. Beispielsweise die Venom/Speichel Absonderungen von Blut-Fütterung Heteroptera wie Kissing Bugs (Triatominae) und Wanzen (Cimicidae) erleichtert die Fütterung durch Störung der Hämostase2. Giftstoffe in diese Gifte Zielen auf mehrere Wege einschließlich Koagulation, Thrombozytenaggregation sowie Vasokonstriktion und den Schmerz und Jucken Wege. Gifte von den meisten anderen Heteropteran-Arten werden angepasst, um Raub, anstatt Blut-Fütterung zu erleichtern. Ihre Gifte verursachen Lähmung, Tod und Gewebe Verflüssigung bei in Wirbellose Tiere3,4injiziert. Wenn in Wirbeltieren injiziert, kann ihres Giftes auch drastische Auswirkungen haben. Beispielsweise führt die Injektion des Giftes von Assassin Bug Holotrichius Innesi in Wirbeltieren Muskellähmung, Schmerzen und Blutungen; Mäuse-Envenomated von diesem Fehler sterben schnell durch Atemlähmung5.
Transkriptomischen und Proteomic Untersuchungen ergaben die Proteinzusammensetzung von einigen Heteropteran Gifte. Gifte predaceous Arten sind reich an Proteasen, andere Enzyme, und Peptide und Proteine der unbekannte Struktur und Funktion6,7,8. Kissing Bug Venom ist reich an Triabin-Protein-Familie, deren Mitglieder tiefgreifend Koagulation und Thrombozytenaggregation, Vasokonstriktion2,9 beeinflussen. Allerdings ist es nicht bekannt, welche Giftstoffe die meisten Bioactivities des Giftes zugrunde liegen. Z. B. Venom Kissing Bug Triatoma Infestans gemeldet werden Schmerzmittel und hemmen Natrium-Kanäle10, aber die Komponenten verantwortlich müssen noch geklärt werden. Ebenso ist es nicht bekannt, welche Komponente(n) Assassin Bug Gift Lähmungen oder Schmerzen verursachen. Voraussetzung für die Identifizierung verantwortlich für bestimmte Venom Bioactivities und zur Charakterisierung von Struktur und Funktion von neuartigen Venom Giften, Toxinen ist Venom erhalten.
Venom wurde von Wanzen durch Elektrostimulation5,6,7,8,11,12,13, Provokation der Defensive eingeholt Antworten4,8, mechanisch quetschen Thorax12,14,15,16, sezieren, Venom Drüsen8,17 ,18,19,20,21,22und Anwendung des Agonisten muskarin Acetylcholin-Rezeptor-23. Die möglichen vor- und Nachteile einer Methode zu urteilen wird erschwert durch die Morphologie der Heteropteran Giftdrüsen, die wichtigste Drüse mit zwei separaten Lumen, die vorderen wichtigste Drüse (AMG) und posterior wichtigste Drüse (PMG), bestehen als auch eine damit verbundenen Zubehör Drüse (AG). Diese verschiedenen Drüse Fächer produzieren unterschiedliche Protein Sekrete, die für verschiedene biologische Funktionen einschließlich Beutefang, Verteidigung und extraoralen Verdauung8,17spezialisiert werden können. In Peiratine und Ectrichodiine Assassin Bugs wurde der AMG Beutefang und die PMG mit extraoralen Verdauung17zugeordnet. Jedoch ist in der Harpactorine Fehler Pristhesancus Plagipennis die PMG für Beutefang und Verdauung spezialisiert, während die AMG wird theoretisiert, um defensive Venom8absondern. Die AG wurde als kleine sekretorischen Funktion in Assassin Bugs8 oder als ein wichtiger Standort der Protease Lagerung in riesigen Wasserwanzen23beschrieben. Weitere Arbeit ist natürlich erforderlich, die Funktion jedes Fach Drüse unter verschiedenen Heteropteran Untergruppen zu klären und die Funktion der meisten Venom Toxine zu bestimmen. In diesem Bericht beschreiben wir Protokolle für die Ernte Venom Giftstoffe aus Wanzen auf dieses Ziel hin.
Dieses Protokoll entspricht der University of Queensland Maßnahmengruppe in Responsible Care und das Verwenden von Tieren in Forschung und Lehre (PPL 4.20.11) sowie die National Health und Medical Research Council Australian Code für die Pflege und Nutzung der Tiere für wissenschaftliche Zwecke (8th Edition 2013).
Achtung: Achten Sie darauf, nicht Envenomated werden beim Umgang mit Assassin Bugs. Achten Sie darauf, um die Augen zu schützen, im Umgang mit Arten, die Venom defensiv zu spucken. Kümmern sich im ganzen nicht auf Versuchstiere zu verletzen. Dazu gehören Überwachung des Drucks über Beschränkungen wie Gummibänder und um sicherzustellen, dass der Rüssel nicht unterbrochen wird.
Hinweis: Optional, Betäuben Tiere durch die Einwirkung von CO2 für 0,5-2 min oder Kühlung auf 4-10 ° C vor der Venom Ernte 1-3 soll sichere Übertragung und Zurückhaltung zu erleichtern. Betäubung ist nicht unbedingt erforderlich aber sichere Zurückhaltung der agile oder starke Proben erleichtern kann. Tiere dürfen jedoch, wach um Venom Ernte zu ermöglichen. Behalten Sie downstream-Anwendungen im Hinterkopf, wenn die Entscheidung, ob Proteaseinhibitoren hinzufügen.
1. Ernte Venom Giftstoffe durch Elektrostimulation
2. Gewinnung von Venom Giftstoffe durch Belästigung
3. Gewinnung von Venom Giftstoffe durch Belästigung von Venom "Spucken" Arten
4. Ernte Venom Giftstoffe durch Drüse Dissektion
Einige Heteropteran Arten, wie die Harpactorine p. Plagipennis und die Reduviine Platymeris Rhadamanthus, liefern zuverlässig große Mengen (5-20 µL) des Giftes in Reaktion auf Elektrostimulation (Tabelle 1). Im allgemeinen führen die meisten Peiratine, Reduviine und Harpactorine Bugs Venom als Reaktion auf diese Methode. Unter den Stenopodaine Fehler entlockte Elektrostimulation Venom aus Oncocephalus SP., aber nicht Thodelmus sp. Die Holoptiline und Emesine Bugs, die Stichprobe Ausbeute nicht signifikante Venom (z.B. genug für die Analyse durch Massenspektrometrie) als Reaktion auf Elektrostimulation. Elektrostimulation kann auch verwendet werden, um Venom aus Belostomatid Bugs und räuberische Wanzen zu ernten. Allerdings induzierte Elektrostimulation Wasser Scorpions (Nepidae) Veröffentlichung der Inhalte der cephalic Drüsen nur, anstatt Venom aus dem Rüssel. Venom durch Elektrostimulation bei einigen Arten zu ernten ist am ehesten durch die morphologische Komplexität der Giftdrüsen und die physiologischen Mechanismen, die kontrollieren der Freisetzung von Venom8.
Neben der Freigabe von Venom durch Elektrostimulation, Reduviids p. Plagipennis, Havinthus Rufovarius, p. Rhadamanthus und Belostomatid Lethocerus Distinctifemur, wird spontan werfen Sie Venom aus dem Rüssel aus bei der Handhabung. Solchen Venom Auswurf defensive zeigt häufig begleitet. P. Rhadamanthus spuckt auch Venom defensiv4, ein Verhalten, das auftritt, in Schlangen24 und Spinnen25 aber von denen wir nicht bewusst in anderen Reduviid-Arten.
SDS-PAGE und Proteomics Experimente zeigen, dass die Gifte geerntet, indem man Elektrostimulation und Belästigung eiweißreichen6,7,8. Proteine machen einen Großteil der materielle Gegenwart, obwohl es auch wahrscheinlich, dass Gifte anorganische Ionen und andere Stoffe enthalten. Assassin-Bug Venom durch Elektrostimulation und Belästigung erhalten in der Regel enthält mehr als hundert Peptide und Proteine (Abbildung 1, Abbildung 2). Belostomatid Venom wurde zuvor berichtet, reich an Lysophospholipids13. Infrarot-Absorption Spektren des Giftes aus dem Belostomatine Wasser Bug Diplonychus Eques stehen im Einklang mit einem Gehalt an Proteinen und Lysophospholipids. Nur für Protein und nicht Lysophospholipids6wurde für die Lethocerine L. DistinctifemurBeweise gefunden.
Wie Spinne Gifte26berichtet, dürfte die Venom aus Heteropteran Insekten geerntet variieren in Konzentration und Zusammensetzung, je nach dem Insekt verwendet und die Methode, durch die es geerntet wird. UV-Spektroskopie von verdünnten Venom Proben schlägt Absorption Werte (ein280) von 50-250 (10 mm Weglänge) für unverdünnte Venom, Einklang mit einer hohen Proteinkonzentration von ~ 50-250 mg/mL7,12,19. Beute-Entzug wurde berichtet, zu aufeinander folgenden Anstieg Venom Konzentration und gelähmten potenzielle3 sowie sukzessiven Rückgang der pH-Wert27führen. Verlängerte Hunger führt jedoch im Zustand und Tod. Sowie Konzentration kann die Methode mit der Venom von Wanzen geerntet wird seine Zusammensetzung beeinflussen. Toxin Zusammensetzung des Giftes von Assassin Bug p. Plagipennis unterschieden sich deutlich, je nachdem, ob es durch Elektrostimulation oder Belästigung8geerntet wurde. Im Falle von p. Plagipenniszeigte dies durch Elektrostimulation den Inhalt der PMG nachgiebig zu sein, während Belästigung der Inhalt des AMG ergab. Venom erhält man durch Elektrostimulation, aber keine Belästigung, potent gelähmte Beute Insekten (Abbildung 3). Es ist jedoch unklar, inwieweit dieses Ergebnis auf anderen Reduviidae oder andere Heteroptera verallgemeinert werden kann.
Ernte von Venom direkt durch Sezieren Giftdrüsen ermöglicht die Kontrollmechanismen der Giftdrüsen umgangen werden, auf Kosten der Kontamination mit Drüsengewebe (nicht-Venom) Proteine. Unabhängig davon können Extrakte aus seziert Material gewonnen für Bioaktivität/Toxizität Assays verwendet werden. Zum Beispiel wurden Extrakte der PMG, AMG und AG von p. Plagipennis, unter Verwendung der oben genannten Protokoll mit flüssige Chromatographie/Tandem-Massenspektrometrie8analysiert. Dieser Prozess identifiziert insgesamt 182, 114 und 71 Proteine insgesamt, davon 45, 51 und 12 als vermeintliche Venom Proteine basierend auf Aminosäure-Sequenz Merkmale mit den verbleibenden Proteinen als vermeintliche Zimmermädchen Proteine klassifiziert eingestuft wurden. Injektion von Extrakten der PMG, aber nicht AMG oder AG, in Insekten führte zu Lähmung und Tod8.
| Teilordnung | Familie | Unterfamilie | Binomial name | Allgemeiner name | Elektrostimulation | Belästigung | Dissektion |
| Cimicomorpha | Reduviidae | Harpactorinae | Pristhesancus plagipennis | Gemeinsamen Brisbane Assassin bug | √ | √ | √ |
| Havinthus rufovarius | Rote Tiger Assassin bug | √ | √ | √ | |||
| Scipinia arenacea | Roten stacheligen Assassin-bug | √ | ND | √ | |||
| Gminatus spp. | Große orange Assassin-bug | √ | ND | √ | |||
| Trachylestes aspericollis | Kleine rote Assassin-bug | √ | ND | ND | |||
| Reduviinae | Platymeris spp. | Riesigen afrikanischen Assassin-bug | √ | √ | √ | ||
| Psytalla horrida | Stachelige Assassin-bug | √ | ND | √ | |||
| Peiratinae | Ectomocoris spp. | Orange Boden Assassin bug | √ | ND | √ | ||
| Peirates spp. | Schwarzen Assassin Käfer | √ | ND | ND | |||
| Stenopodainae | Oncocephalus spp. | - | √ | ND | √ | ||
| Thodelmus spp. | - | x | ND | √ | |||
| Holoptilinae | Ptilocnemus lemur | Feder-beinigen Fehler | x | x | ND | ||
| Emesinae | Stenolemus spp. | Thread-beinigen Fehler | x | x | x | ||
| Pentatomomorpha | Pentatomidae | Asopinae | Amyotea hamata | Gelbe räuberische Stink bug | √ | ND | ND |
| Nepomorpha | Nepidae | Ranatrinae | Ranatra dispar | Wasser-Skorpion | X, cg | x | √ |
| Belostomatidae | Belostomatinae | Diplonychus eques | Wasser-bug | √ | ND | ND | |
| Belostomatidae | Lethocerinae | Lethocerus sp. | Riesige Wasser-bug | √ | √ | √ | |
| Tick, erfolgreich; Kreuz, erfolglos; ND, nicht bestimmt; CG, cephalic Drüse Entlastung nur |
Tabelle 1: Taxon Spezifität der Methoden zur Ernte Venom von Wanzen.

Abbildung 1 : Proteine erkannt von LC-MS/MS-Analyse der 2D SDS-PAGE-Spots und HPLC Bruchteile von Venom gesammelt von P. Plagipennis durch Elektrostimulation (Protokoll 1), zeigt reichlich Proteasen, CUB-Domäne und Proteine Heteropteran Venom Family 1. (A) 2D SDS-PAGE Gel von Rohöl p. Plagipennis Venom, zeigt Proteinfamilien von LC-MS/MS Gel Spots identifiziert. (B) HPLC-Chromatogramm von Fraktionierung p. Plagipennis Gift, zeigt Proteinfamilien von LC-MS/MS-Analyse der gesammelten Fraktionen identifiziert. Reproduziert mit Erlaubnis7. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 2 : Anteil der Sequenzen gehören zu jeder großen Protein-Klasse in der Venom von P. Plagipennis. Reproduziert mit Erlaubnis7. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 3 : P. Plagipennis Venom erhalten durch Elektrostimulation, aber keine Belästigung, lähmt Insekten. (A) Wirkung der Injektion Venom durch Elektrostimulation oder Belästigung oder Wasser auf Cricket Flucht gewonnen. Für jede Bedingung Venom 0,17 µL Venom gleichwertig in den Bauch und die Zeit zu einen umgedrehten Petrischale Deckel entweichen injiziert wurde (s, bis zu 300 s, Mittelwert ± SD) erzielte. (B) Dosis-Wirkungs-Kurve für die Hemmung der Flucht Erfolg von Venom aus p. Plagipennis durch Elektrostimulation gewonnen. Reproduziert mit Erlaubnis8. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.
Die Autoren haben nichts preisgeben.
Obwohl viele Insekten in der Unterordnung Heteroptera (Insecta: Hemiptera) sind giftig, deren Venom-Zusammensetzung und die Funktionen ihrer Venom-Toxine sind meist unbekannt. Dieses Protokoll beschreibt Methoden zum Heteropteran Gifte für weitere Charakterisierung, mittels Elektrostimulation, Belästigung und Drüse Dissektion zu ernten.
Wir anerkennen finanzielle Unterstützung von der Australian Research Council (Zuschüsse DP130103813 und LP140100832, G.F.K., DECRA Gemeinschaft DE160101142, EABU), der Australian National Health & Medical Research Council (Principal Research Fellowship APP1044414, G.F.K.), und der University of Queensland (Postdoctoral Fellowship, A.A.W.).
| Elektrostimulator | Grass Technologies | S48 Square Pulse Stimulator | Elektrostimulator für gepulste Elektrostimulation |
| Federleichte Pinzette | Australischer Entomologe Zubehör | E122B | Für den Umgang mit lebenden giftigen Insekten |
| Proteasehemmer Cocktail | Sigma | 4693124001 | Zur Verhinderung der autoproteolytischen Verdauung von Gift |
| Dissektion Ausrüstung | Australian Entomological Supplies | E152Micro | Für feine Dissektionen |
| Insektenstifte | Australian Entomological Supplies | E162 | Für feine Dissektionen |