Eine Flexible Low-Cost-Hydrokultur-System für die Bewertung der Pflanze Antworten auf kleine Moleküle unter sterilen Bedingungen

Die Vorteile der Verwendung von Hydrokultur Pflanzen haben in der Produktion von großen und einheitliche Pflanzen ermöglichen reproduzierbare Experimente^1,2,3weithin anerkannt. In diesem System kann die Zusammensetzung der Nährlösung ordnungsgemäß kontrolliert und recycelt alle Stufen von Wachstum und Entwicklung. Darüber hinaus sind Wurzeln nicht abiotischen Belastungen ausgesetzt, wie im Boden gewachsen Pflanzen, wie Nährstoff Hunger und Wasser-Mangel⁴auftreten können. Als Pflanzen hydroponisch vorliegende morphologische und physiologische Eigenschaften ziemlich ähnlich denen in Erde kultiviert hat dieses System im großen und ganzen in der Forschung tätig weil es erlaubt, die Überwachung der Wurzel/Sprosswachstum und ihre Ernte ohne Verletzungen^2,5.

Aufgrund der Möglichkeit der Änderung der Zusammensetzung und Konzentration von der Nährlösung der Großteil der Forschung mit Hydrokultur Bedingungen durchgeführt wurde, um die Funktionen von Mikro- und Makronährstoffen^{1,3 charakterisieren ,6,7,8}. Allerdings hat dieses System erwies sich als sehr nützlich, um ein breites Anwendungsspektrum in Pflanzenbiologie, wie die Funktionen von Hormonen und Chemikalien in Pflanzen aufzuklären. Zum Beispiel wurden die Entdeckung des Strigolactones als eine neue Klasse von Hormonen⁹ und der beschleunigten Wachstums Phänotyp ausgelöst durch Brassinosteroid Anwendung¹⁰ Hydrokultur Bedingungen durchgeführt. Darüber hinaus ermöglicht dieses System Experimente mit beschrifteten Isotope (z.B., ¹⁴N /¹⁵N und ¹³CO₂)^11,12 , deren Eingliederung in Proteinen und Metaboliten zu bewerten durch Massenspektrometrie.

In Anbetracht der Bedeutung dieses Systems in der Pflanzenforschung, eine hohe Anzahl von hydroponischen Kulturen wurde in den letzten Jahren, einschließlich Systeme, mit denen (i) die Übertragung der Sämlinge aus Platten auf Hydrokultur Container^{3, 13}; (Ii) Rockwool, die Zugang zu den frühen Stadien der Wurzel Entwicklung^2,14,15begrenzt; (Iii) Polyethylen-Granulat als Schwimmkörper, wodurch die einheitliche Anwendung der kleinen Moleküle/Behandlungen schwierig¹⁶; oder (iv) eine reduzierte Anzahl von Pflanzen^9,17. Das Volumen der Hydrokultur Panzer beschrieben in vielen dieser Protokolle sind in der Regel groß (kleine Volumen von 1-5 L, bis zu 32 L)¹⁸, die die Anwendung von Chemikalien extrem teuer macht. Obwohl einige Studien eine Hydrokultur unter aseptischen Bedingungen^8,beschreiben ist¹⁹, die Montage des Systems in der Regel ziemlich mühsam, bestehend aus die perfekte Abstimmung von Nylon Maschen in Kunststoff oder Glas Container^5,8,17,20.

Wegen der Bedeutung als Modellpflanze Arabidopsis Thaliana wurden die Mehrheit der Hydroponik-Systeme für diese Arten^1,2,8,14,18, entwickelt. ^{19 , 20}. Dennoch gibt es einige Studien, die die Hydroponische Wachstum Berichtsfunktionen anderer Pflanzenarten mit eine Vorbehandlung der Samen ihre Keimfähigkeit zu verbessern und Synchronisation Preise in-vitro-^8,16 . Um im großen Maßstab zu arbeiten, entwickelten wir ein Protokoll für eine einfache und kostengünstige Wartung Hydrokultur-System, mit dem sterile Bedingungen für den Anbau von Pflanzen, darunter A. Thaliana und andere Arten, wie der Rasen Setaria kann einrichten Viridis. Die hier beschriebene Methode eignet sich für verschiedene Experimente, wie das Wachstum des Keimlings maximiert, synchronisiert und leicht überwacht werden kann. Dieses System hat viele Vorteile wie: (i) die Montage ist unkompliziert und seiner Komponenten wiederverwendet werden; (Ii) es ermöglicht die einfache Anwendung von verschiedenen Chemikalien in das flüssige Medium; (Iii) die Sämlinge Keimen und wachsen direkt in das Kulturmedium ohne die Notwendigkeit der Übertragung der Hydrokultur-System; (iv) das schießen und Wurzel Entwicklung/Wachstum eng überwacht werden können und die Keimlinge geerntet werden, ohne Schäden; und (V) es macht es möglich, auf einer großen Skala arbeiten Aufrechterhaltung der physiologischen Bedingungen.

1. Vorbereitung von flüssigen und festen Nährmedien

1. Bereiten Sie ein flüssiges Medium mit Hälfte-Stärke Murashige und Skoog (MS) Medium mit Vitaminen [0,0125 mg/L von cobalt(II) chlorid Pentahydrat, 0,0125 mg/L Sulfat-Pentahydrat Kupfer(II), 18,35 mg/L Eisen Natrium Ethylenediaminetetraacetate, 3,10 mg/L Borsäure, Kaliumjodid, 8,45 mg/L Mangan 0,415 mg/L Sulfat Monohydrat, 0,125 mg/L Natrium Molybdat Dihydrat, 4,30 mg/L von Zinksulfat-Heptahydrat, 166,01 mg/L Kalzium-Chlorid, 85 mg/L Kalium Dihydrogen Phosphat, 950 mg/L Kaliumnitrat, 90,27 mg/L Magnesium-Sulfat, 825 mg/L von Ammoniumnitrat, 1 mg/L von Glycin, 50 mg/L von Myo-Inositol, 0,25 mg/L von Nikotinsäure, 0,25 mg/L von Pyridoxin Hydrochlorid und 0,05 mg/L von Thiamin Hydrochlorid] ergänzt mit 0,25 g/L MES, und passen Sie den pH-Wert auf 5,8 mit 10 M KOH.
2. Fügen Sie 10 g/L Agar, ein halb-Stärke MS-Solid Medium zu machen. Autoklaven bei 121 ° C für 20 min vor dem Gebrauch des Mediums.

(2) hydroponic System Montage

Hinweis: Diese Schritte sorgfältig befolgt werden um die hydroponic System zu bauen.

1. Materiellen Sterilisation
   1. Verpacken Sie in den Autoklaven Tasche die PIPETTENSPITZE Racks (ohne Deckel), die als Minitanks verwendet werden. Autoklaven der Racks bei 121 ° C für 20 min, 15 Psi.
      Hinweis: Das Polypropylen Pipette Tipp Rack wir verwendet hatten folgenden Dimensionen: 120 mm (Länge) x 89 mm (Breite) x 55 mm (Höhe). Die Pipette Spitze flache Oberfläche muss einen Bereich für den Zusatz von Kulturmedium aufweisen. Andere Tipp-Racks verwendet werden (siehe Tabelle der Materialien).
      Hinweis: Während die Montage des hydroponischen Systems ist es notwendig, eine laminare Strömung Haube, verwenden die gereinigt und mit 70 % igem Ethanol vor dem Gebrauch desinfiziert werden müssen. Der Experimentator muss einen Laborkittel zu tragen, waschen Sie ihre Hände und ausgesetzt Haut und mit 70 % Ethanol zu desinfizieren. Handschuhe sind optional, mit Ausnahme der Zulassungsantrag.
   2. Reinigen Sie alle Zubehörteile, die beschriebenen (Einweg-Kunststoff-Boxen, Klebeband, Pipetten, Scheren und Pinzetten) mit 70 % Ethanol vor dem Betreten der Laminar-Flow-Haube. Wenn die Haube erlaubt, schalten Sie das UV-Licht für 10 min vor der Montage der Hydrokulturen-Systems um den Arbeitsbereich dekontaminiert zu halten.
2. Minitank Montage
   1. Versiegeln Sie die Oberfläche der Pipettenspitze flach mit Klebeband (Abbildung 1 b). Wenn möglich, lassen Sie es unter UV-Licht für 10 Minuten.
   2. 180 µL geschmolzene solide MS Kulturmedium (leicht warm) hinzu kommt jeder gut mit einer Mehrkanal-Pipette (Abbildung 1).
      Hinweis: Wenn Sie viele Panzer vorbereiten, verwenden Sie eine Herdplatte um zu verhindern, dass die MS Medium erstarren.
   3. Lassen Sie das Medium vollständig (für ca. 30 min) zu festigen.
      Hinweis: Zur Zeit der Erstarrung kann das UV-Licht eingeschaltet werden.
   4. Füllen Sie die Pipette Tipp Rack komplett mit flüssigem MS Kulturmedium (Abbildung 1) und stellen Sie sicher, es ist ein enger Kontakt zwischen der festen und flüssigen Medien.
   5. Entfernen der Klebebänder der oberen Oberfläche des flachen Pipettenspitze und sorgfältig auf das Gestell passt. Hydrokultur-System ist jetzt bereit, die sterilisierten Samen zu empfangen.

3. Samen Sterilisation

1. Legen Sie 500 Arabidopsis Samen in einem 1,5 mL reaktionscup. Verwenden Sie möglichst viele mikroröhrchen nach Bedarf entsprechend der Anzahl der Pflanzen für das Experiment benötigt.
2. Waschen Sie die Samen mit 70 % Ethanol, 2 min mit einer sanften Bewegung. Lassen Sie die Samen niederzulassen, dann entfernen Sie vorsichtig das Ethanol.
3. Fügen Sie 1 mL einer 10 % Natriumhypochlorit-Lösung mit 2 µL Polysorbat 20 Reinigungsmittel. Schütteln Sie der Lösung für 5 min. entfernen die Lösung sorgfältig.
4. Spülen Sie die Samen mit sterilem destilliertem Wasser, bis alles, was die Bleichmittel Rückstände vollständig ist (ca. 5 X) entfernt.
   Hinweis: Nach der Oberfläche Sterilisation, die Samen wurden in sterilem destilliertem Wasser eingetaucht und geschichtet bei 4 ° C im Dunkeln für 5D um die Keimung zu synchronisieren.
   Hinweis: Samen von Setaria Viridis (Beitritt A10.1) wurden preincubated in konzentrierter Schwefelsäure für 15 min (, die physische Keimruhe zu brechen), in sterilem destilliertem Wasser gründlich gewaschen und dann mit einer 5 % igen Natriumhypochlorit-Lösung disinfested 0,1 % Polysorbat 20 für 5 min mit einer sanften Bewegung²¹enthalten. Die verbleibenden Schritte der Sterilisation waren identisch mit denen für Arabidopsis Samen beschrieben.

(4) Seed-Anwendung

1. Schneiden Sie leicht der Extremität von 200 µL Tipp mit Hilfe von einem sterilen Skalpell.
2. Pipette die Arabidopsis -Samen in festen Nährmedium auf der oberen Fläche der Pipettenspitze flach. Achten Sie darauf, dass das Medium nicht aus der Wohnung lösen kann; andernfalls die Samen schattiert und die Sämlinge wachsen nicht richtig (Abbildung 1E).
   Hinweis: Verwenden Sie eine sterile Pinzette für Setaria Samen (mit dem Embryo nach oben positioniert).
3. Speichern Sie so viele Minitanks wie möglich innerhalb einer Einweg-Kunststoff-Box, eine hohe Luftfeuchtigkeit und die Umgebung frei von Mikroorganismen (Abbildung 1F) halten.
4. Der Einweg-Kunststoff-Box, sorgfältig mit Klebeband zur Vermeidung von Kontaminationen zu versiegeln.
5. Legen Sie die Hydroponische Systeme in ein Wachstum Kammer mit den geeigneten Wachstumsbedingungen für die Anlage von Interesse.
   Hinweis: In dieser Arbeit wurden die folgenden Bedingungen verwendet: 75 % Luftfeuchtigkeit und 150 µmol m^-2 s^-1 Bestrahlungsstärke und äquatorialer Bedingungen von 12 h Licht (21 ° C) / 12 h dunkel (19 ° C) für Arabidopsisoder 300 µmol m^-2 s^-1 Bestrahlungsstärke und 12 h Licht (28 ° C) / 12 h dunkel (25 ° C) für Setaria (Abbildung 1 und 1 H).

(5) Validierung die Verwendung von diesem Hydroponic System Target of Rapamycin-Kinase hemmen

Hinweis: Diese Hydrokultur-System wurde ursprünglich entwickelt, um die Verwaltung von Chemikalien zu Pflanzen, zu erleichtern, sind im Allgemeinen sehr teuer in groß angelegten Experimenten angewendet werden. Als ein Proof of Concept wurde die ATP-kompetitiver Inhibitor AZD-8055, das bekannt ist, gezielt die ATP-Bindungsstelle des TOR Protein Kinase²², eingesetzt, um die Unterdrückung der TOR-Aktivität in Sämlinge von A. Thaliana Columbia-0 (folgen Die Nottingham Arabidopsis Lager Zentrum, NASC-ID: N22681). Das verwendete Protokoll wird hier kurz beschrieben.

1. Wachsen Sie Samen hydroponisch bis Bühne 1,04 nach dem BBCH skalieren²³ (für etwa 11 d) unter den klimatischen Bedingungen, die oben beschriebenen. Ersetzen die Nährlösung, entweder mit frischen Medium mit 0,05 % DMSO (Kontrolle), 2 µM AZD-8055 (TOR-Inhibitor) verdünnt in DMSO oder ohne Behandlung (Mock), am Ende der Nacht (EN).
2. Einige Sämlinge zu verschiedenen Zeitpunkten nach der Behandlung zu ernten und in Wurzeln und Triebe zu trennen. Die Proben in flüssigem Stickstoff eingefroren, zu einem feinen Pulver in einer Roboter-Mühle zu mahlen (siehe Tabelle der Materialien), und das Pulver bei-80 ° C bis zu seiner Verwendung zu speichern.
3. Immunoblot gegen phosphorylierten und nicht phosphoryliert Formen der 40er Jahre ribosomale Protein S6 (RPS6) nach Dobrenel Et al. ²⁴.
4. Bleichen intakt Sämlinge für Probe Depigmentierung, in destilliertem Wasser zu waschen, tauche sie ein in eine Jod-Lösung für 5 min²⁵und fotografieren die Sämlinge in ein Stereomikroskop (0,63 X Ziel, 20 X Annäherung und 7,5 X Größe) für eine qualitative Beurteilung des Stärkegehalts.
5. Quantifizierung der Stärke nach der enzymatischen Abbau und Messung der freigesetzten Glucose spektralphotometrisch indem man es zur Reduktion von NADP⁺ an NADPH^26,27.
6. Führen Sie eine total RNA-Extraktion, eine cDNA-Synthese und quantitative RT-PCR-Assays wie beschrieben von Caldana Et al. ²⁸ , die Expression von Genen im Zusammenhang mit verschiedenen Arten von Belastungen zu bewerten.
7. Optional, wachsen Sie Sämlinge auf einem Gartenbau Substrat in plastiktöpfen mit einer 0,1 L Fassungsvermögen unter ähnlichen klimatischen Bedingungen [60 % Luftfeuchtigkeit, 150 µmol m^-2 s^-1 der Bestrahlungsstärke und äquatorialer Bedingungen von 12 h Licht (21 ° C) / 12 h dunkel (19 ° C [)] um diese mit Setzlingen hydroponisch vergleichen.
   Hinweis: Die Zielgene für die Gen-Expression-Assays verwendet wurden ABF3 (At4g34000), ASN1 (At3g47340), und TPS5 (At4g17770) und deren Ausdruck Niveaus wurden normalisiert, beschäftigt die Delta-Ct Methode²⁹ mit ACT2 (At3g18780) oder PDF2 (At4g04890) als die interne Referenz-Gene, vorausgesetzt 100 % der PCR-Amplifikation Effizienz über alle Proben. Die Oligonukleotid-Paare für die quantitative PCR verwendet wurden: ABF3 (GTTCTCAACCTGCAACACAGTGC; TCCAGGAGATACTGCTGCAACC), ASN1 (AGGTGCGGACGAGATCTTTG; GTGAAGAGCCTTGATCTTGC), TPS5 (CTGCTCTGATGCTCCTTCTTCC; AAGCTGGTTTCCAACGATGATG), ACT2 (CGTACAACCGGTATTGTGCTGG; CTCTCTCTGTAAGGATCTTCATG) und PDF2 (TAACGTGGCCAAAATGATGC; GTTCTCCACAACCGCTTGGT).

TOR-Kinase ist ein wichtiger Regulator, der Nährstoff- und Förderung der Zellproliferation und Wachstum in allen Eukaryoten Signalisierung integriert. Bemühungen, TOR-Funktionen in Pflanzen aufzuklären beinhalten die Generation der Arabidopsis transgenen Linien mit TOR bedingte Unterdrückung durch RNA-Interferenz oder künstliche MicroRNA28,30,31, Angesichts den Embryo tödliche Phänotyp TOR ko Pflanzen32,33,34,35. Die meisten bedingte transgenen Linien sind unter der Kontrolle von Östradiol-Dexamethason oder Ethanol-induzierbaren Promotoren, die auch machen könnte diese Hydrokultur-System nutzen.

Eines der bekannten Ziele der TOR-Aktivität in Arabidopsis ist die direkte Phosphorylierung der ribosomalen Proteins S6 Kinase (S6K)34,36,37,38. Nach Phosphorylierung, phosphorylates S6K weitere 40 s ribosomalen Proteins S6 (RPS6), beeinflussen die ribosomale Protein Übersetzung24,39,40. Vor kurzem wurde nachgewiesen, dass die Phosphorylierung einer RPS6 Ser240-Site ein guter Marker für TOR Aktivität24 ist. Immunoblotting Tests bestätigt, dass bald nach 30 min von Medikamentengabe, ein deutlichen Rückgang der Ser240 Phosphorylierung in Wurzeln und Triebe (Abbildung 2) beobachtet wurde. Unter den experimentellen Bedingungen verwendet hat AZD-8055 auch gezeigt, ein potenter Inhibitor der TOR, der schnell die Kinase-Aktivität unterdrückt.

Transgene Arabidopsis -Linien mit einer reduzierten Expression des Gens TOR oder Komponenten der komplexen TOR präsentieren eine klare Stärke überschüssige Phänotyp28,31. Qualitative Analyse der Stärke mit Lugol Lösung offenbart das erwartete Muster der Stärke Akkumulation und Abbau während der Diel-Zyklus (Abbildung 3). Sämlinge, die keine Anwendung von DMSO oder AZD-8055 erhielten zeigte keine größere Ansammlung von Stärke in den Blättern am Ende der Nacht (EN), und die Stärke-Akkumulation in den kontrollpflanzen (die 0,05 % DMSO erhalten) Stand im Einklang mit der Literatur 41 , 42. Darüber hinaus präsentiert Pflanzen mit AZD-8055 behandelt eine größere Menge der verbleibenden Stärke im Vergleich zu der Kontrolle Sämlinge EN. Diese Ergebnisse zeigten die Nützlichkeit des vorgeschlagenen hydroponischen Systems in wachsende Sämlinge imitiert physiologische Bedingungen. Dieses System ermöglichte auch die Bestätigung der Stärke überschüssige Phänotyp typisch für eine Unterdrückung der TOR komplexe Bauteile24,28,31.

Stärkegehalt war auch genau gemessen mit einer sensiblen Methodik, zeigen, dass die AZD-8055-Behandlung zu Sämlinge mit einem deutlich höheren Gehalt an Stärke am Ende des Tages (ED) geführt und EN im Vergleich zur Kontrolle DMSO behandelt Pflanzen (Abbildung 4). Stärke in den Blättern sammelt sich während des Tages und wird über Nacht reaktiviert, um metabolische Aktivität, vor allem die Atmung und die fortlaufende Export von Saccharose zu anderen pflanzlichen Organe41,42aufrecht zu erhalten. Unter normalen Bedingungen bleibt nur ein kleiner Bruchteil von Stärke (zwischen 5 % und 10 % des Betrages an die ED) EN43,44,45. Diese Ergebnisse bestätigt, dass die Stärke, die überschüssige Phänotyp unter die TOR-Unterdrückung beobachtet alles über den Diel-Zyklus auftritt.

Hydroponisch angebaute Pflanzen wurden im Vergleich zu Sämlinge angebaut in einem Gartenbau Substrat unter sehr ähnlichen klimatischen Bedingungen bezüglich des Ausdrucks von der Abscisic Säure-responsive Element-bindungsfaktor 3 (ABF3)-Gen (Abbildung 5A ), welche direkt korreliert mit internen ABA Ebenen, eine Klasse von Hormonen, die weithin als eine Markierung wegen seiner Rolle in mehreren abiotischen Stress Antworten46,47,48. Obwohl Sämlinge angebaut in der Hydrokultur-System eine deutliche Steigerung des Niveaus der ABF3präsentiert hat, war die Expression von Asparagin Synthase 1 (ASN1) die DMSO oder AZD Behandlungen (Abb. 5 b) nicht betroffen. Jedoch Trehalose-Phosphat-Synthase 5 (TPS5) wurde nach 8 h TOR Hemmung (Abb. 5 b) deutlich erhöht. ASN1 und TPS5 reagieren auf niedrigen und hohen Zucker Ebenen49,50,51,52,53,54, beziehungsweise, was darauf hindeutet dass diese Pflanzen nicht energisch Stress erlebten.

Abbildung 1 : Workflow für die Montage der Hydrokulturen-Systems. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 2 : Wirkung der TOR-Hemmung auf den RPS6 Phosphorylierung in verschiedenen Geweben von Arabidopsis thaliana . Immunoblotting zeigt die Fülle der Gesamt- und phosphorylierten RPS6 im Stamm (A) und (B) schießen Extrakte der Keimlinge mit 2 µM AZD-8055 oder 0,05 % DMSO (Kontrolle) behandelt. Werte repräsentieren die Verhältnisse durch das Protein nicht phosphoryliert RPS6 normiert. Anti-Aktin-Antikörper diente als ein Steuerelement laden. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 3 : Arabidopsis thaliana Sämlinge mit Lugol Reagenz befleckt. Behandlungen mit 2 µM AZD-8055 oder 0,05 % DMSO (Kontrolle) waren in der EN (roter Pfeil) aufgetragen und verglichen, um Sämlinge (keine-Behandlung) zu verspotten. Sämlinge wurden vor der Behandlung Anwendung (0 h) geerntet und um 12 h (ED) und 24 h (EN) nach der Behandlung durch Schwarze Pfeile angedeutet. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 4 : Wirkung der TOR-Hemmung auf den Stärkegehalt der Arabidopsis thaliana Sämlinge. Stärke enzymatisch vor (0 h) gemessen wurde und um 12 h (ED) oder 24 h (EN) nach der Behandlung mit 2 µM AZD-8055 (schwarz) oder 0,05 % DMSO (Control, weiß). Die angezeigten Werte sind der Mittelwert ± Standardfehler (SE) (n = 4). Signifikante Unterschiede zwischen Sämlinge behandelt mit AZD-8055 und DMSO, mit Student t-test, sind mit Sternchen gekennzeichnet: * (P < 0,05) und *** (P < 0,001). Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Abbildung 5 : Ausdruck Ebene der betonen-in Verbindung stehende Gene. (A) Vergleich von ABF3 Abschriften in Hydrokultur und Substrat gewachsen Arabidopsis Col-0 Sämlinge. (B) Vergleich der ASN1 und TPS5 Transkripte in Arabidopsis Sämlinge behandelt mit 2 µM AZD-8055 und 0,05 % DMSO. Die normalisierte Ausdruck Niveaus werden als 2^(-dCt) angezeigt. Die angezeigten Werte sind der Mittelwert ± SE (n = 3). Signifikante Unterschiede mit der Student t-test, sind mit Sternchen gekennzeichnet: *** (P < 0,001). Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Zusätzliche Abbildung 1:dieses in-vitro- Hydrokultur-System ermöglicht es, Keimung zu synchronisieren und zu homogenen Sämlinge erhalten. Samen von A. Thaliana (C3) und S. Viridis (C4) wurden direkt in dieses System gekeimt. (A und C) waren die Sämlinge homogen in Bezug auf die Entwicklungsstufe und die Behandlung nach 11d (Arabidopsis) oder 7D (Setaria) angewendet wurde. (B und D) wachsen die Wurzeln direkt in Richtung der Nährlösung, die Zugabe von verschiedenen Substanzen und deren Absorption zu erleichtern. Diese Ergebnisse zeigen nachdrücklich, dass dieses System ein optimales Umfeld für das Pflanzenwachstum bietet und verwendet werden, kann um effizient eine Vielzahl von Tests durchführen. Darüber hinaus ist dieser Hydrokultur-System sehr nützlich für umfangreiche Experimente.

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