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Methodenartikel

Isolierung, Fixierung und Immunfluoreszenz Imaging der Maus Nebennieren

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DOI:

10.3791/58530

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2. Oktober 2018

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier präsentieren wir eine Methode, um die Nebennieren von Mäusen zu isolieren, das Gewebe zu beheben, sie Abschnitt und durchführen Immunfluoreszenz-Färbung.

Zusammenfassung

Immunfluoreszenz ist eine etablierte Methode zur Erkennung von Antigenen in Geweben mit der Beschäftigung von Fluorochrom-konjugierten Antikörpern und verfügt über ein breites Spektrum an Anwendungen. Erkennung von Antigenen ermöglicht die Charakterisierung und Identifizierung von mehreren Zelltypen. Oberhalb der Nieren und durch eine Schicht von mesenchymalen Zellen eingekapselt, ist der Nebenniere eine endokrine Organ, bestehend aus zwei verschiedenen Geweben mit unterschiedlicher embryologischen Herkunft, der mesonephric mittlere Mesoderm abgeleitet äußere Rinde und der neuronalen Kamm-abgeleiteten inneren Medulla. Die Nebennierenrinde sondert Steroide (d. h. Mineralocorticoids, Glukokortikoide, Sexualhormone), während das Nebennierenmark Katecholamine (z.B. Adrenalin, Noradrenalin) produziert. Während der Nebennieren forschen, ist es wichtig, einzigartige Zellen mit unterschiedlichen Funktionen unterscheiden zu können. Hier bieten wir ein Protokoll entwickelt, die in unserem Labor, das beschreibt eine Reihe von aufeinander folgenden Schritten erforderlich für den Erhalt der Immunfluoreszenz-Färbung, die Zelltypen der Nebenniere zu charakterisieren. Wir konzentrieren uns zunächst auf die Zerlegung der Nebennieren Maus die mikroskopische Entfernung von Periadrenal Fett, gefolgt von der Fixierung, die Verarbeitung und das Paraffin Einbettung des Gewebes. Wir beschreiben der Gewebe Blöcke mit einer rotierenden Mikrotom schneiden. Zu guter Letzt zeigen wir ein Protokoll für immunofluorescent Färbung der Nebennieren, die wir entwickelt haben, um unspezifische Antikörperbindung und Autofluoreszenz zu minimieren, um ein optimales Signal zu erreichen.

Einleitung

Immunohistochemistry ist eine Technik zur Erkennung von gewebeanteile mit dem Einsatz von Antikörpern gegen spezifische zelluläre Moleküle und anschließende befleckenden Techniken der konjugierten Antikörpern1zu erkennen. Diese immunhistochemische Verfahren erfordert spezielle Fixierung und Verarbeitung von Geweben, die für das Antigen oft empirisch ermittelt werden, Gewebe und Antikörper verwendet2. Die Fixierung ist entscheidend für den "ursprünglichen" Zustand des Gewebes und damit Erhaltung intakten zellulären und subzellulären Strukturen und Expressionsmuster beizubehalten. Weitere sind Verarbeitung und Einbettung V....

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Protokoll

Alle Methoden wurden gemäß institutionell zugelassenen Protokolle unter der Schirmherrschaft des Ausschusses über Nutzung und Pflege von Tieren an der University of Michigan Universität durchgeführt.

1. Vorbereitung für die Operation

  1. Am Tag vor der Operation vorbereiten 4 % Paraformaldehyd (PFA) / Phosphat gepufferte Kochsalzlösung (PBS). Fahren Sie bei gefrorenen Aliquote mit einer Auftauen und Lagerung bei 4 ° C.
    Hinweis: 4 % ist PFA nicht für mehr als 48 h stabil.
    Achtung: PFA ist giftig, vermeiden Sie den Kontakt mit Haut und Augen, und in einen geeigneten Behälter entsorgen.
  2. Am Tag der Operation chirurgische I....

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Ergebnisse

Abbildung 1 stellt eine schematische Darstellung des das gesamte Protokoll beschriebenen. Nebennieren werden geerntet, von Mäusen, angrenzende Fettgewebe wird entfernt, unter dem sezierenden Mikroskop und die Nebennieren sind dann fixiert, in 4 % PFA. Nach diesem Schritt sind Nebennieren verarbeitet und in Paraffin eingebettet und geschnitten mit ein Mikrotom, die Orgel in dünne Scheiben schneiden, die auf Objektträger abgelegt werden. Nach dem Trocknen der A.......

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Diskussion

Dieses Protokoll beschreibt eine Methode für die Isolierung von Maus Nebennieren zusammen mit der Vorbereitung und Färbung der geschnittenen Paraffin-eingebetteten Maus Nebennieren.

Im Vergleich zu anderen Protokollen, die wir getestet, hat dieses Immunfluoreszenz-Protokoll für die meisten der in unserem Labor verwendeten Antikörper geeignet erwiesen. In bestimmten Fällen kann es jedoch, einige Anpassungen zur Verbesserung der Färbung Ergebnisse verlangen. Eine Variable, die leicht geändert un.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Danksagungen

Wir danken Dr. Mohamad Zubair für seine Anregungen und technische Hilfe bei der Schaffung dieses Protokolls. Diese Arbeit wurde vom National Institute of Diabetes und Magen-Darm und Nieren-Erkrankungen, nationale Institute der Gesundheit Research Grant 2R01-DK062027 (zu G.D.H) unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
24-Well-ZellkulturplatteNest Biotechnology Co.0412B
Einmalkanülen 25 G x 5/8"Exel International26403
Paraformaldehyd (PFA)Sigma-Aldrich P6148
Paraplast plus McCormik Scientific39502004Paraffin für die Gewebeeinbettung
Shandon-Biopsiekassetten II mit aufgesetztem DeckelThermowissenschaftliche1001097Kassetten für die Gewebeverarbeitung
Hochprofil-MikrotomklingenAccu-Edge4685Einwegklingen aus Edelstahl
Einweg-Einbettungsformen aus KunststoffPolysciences Inc.18986Abgeschnitten, 22 mm quadratisch oben verjüngt auf 12 mm unten
Superfrost Plus ObjektträgerFisherbrand12-550-1575 mm x 25 mm x 1 mm
XylolFisher ChemicalX5P1GAL 
200 Proof EthanolDecon Labs, Inc.
Certi-Pad Mull-Pads Zertifizierte Sicherheit Mfg, Inc231-2103" x 3. Sterile latexfreie Mullbinden
M.O.M. Kit Vector laboratoriesBMK-2202Zum Nachweis von primären Maus-Antikörpern auf Mausgewebe
KimWipesKimtech34155Wipes 4,4 Zoll x 8,4 Zoll
Super PAP PENInvitrogen 00-8899Stift zum Zeichnen auf Objektträgern
Mikroskop-Deckglas Fisherbrand12-544-DGröße: 22 x 50 x 1,5
DAPISigmaD9542 (Hergestellt in 20 mg/mL Stamm)
ProLong Gold Antifading-ReagenzMolekulare SondenP36930Eindeckmittel für Immunfluoreszenz
X-cite series 120QLumen DynamicsLichtquelle
Coolsnap MyoPhotometricsCamera
Optiphot-2 NikonMikroskop
MikrotomAmerican Optical
Tissue EmbedderLeicaEG1150 H 
Verarbeiter von Gewebe LeicaASP300S
Normales ZiegenserumSigmaG9023
Maus Anti-THMilliporeMAB318Primärantikörper
Kaninchen Anti-SF1Ab Proteintech Gruppe (PTGlabs) kundenspezifischerPrimärantikörper
Alexa-488 Maus IgG  gezüchtete ZiegeJackson ImmunoResearch115-545-003 Sekundärer Antikörper
Dylight-549 Kaninchen IgG aufgezogen ZiegeJackson ImmunoResearch111-505-003Sekundärantikörper
Citrat Säure wasserfreiFisher ChemicalA940-500
NIS-Elements Grundlagenforschung NikonSoftware für die Bildgebung

Referenzen

  1. Brandtzaeg, P. The increasing power of immunohistochemistry and immunocytochemistry. Journal of Immunological Methods. 216 (1-2), 49-67 (1998).
  2. Matos, L. L., Trufelli, D. C., de Matos, M. G., da Silva Pinhal, M. A. Immunohistochemistry as....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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