Ein Abonnement von JoVE ist erforderlich, um diesen Inhalt anzuzeigen. Melden Sie sich an oder beginnen Sie noch heute mit einer kostenlosen Testphase.

Methodenartikel

Gleichzeitige Messung von intrazellulären Calcium und Membrane Potential in frisch isolierte und intakte Maus zerebralen Endothel

7.9K Aufrufe

⸱

DOI:

10.3791/58832

⸱

20. Januar 2019

 , 

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier demonstriert werden Protokolle zur intakten zerebralen Endothelzellen "Röhren" und (2) die gleichzeitige Messung von endothelialen Kalzium und Membranpotential im Endothel-derived Hyperpolarisation (1) frisch zu isolieren. Des weiteren können diese Methoden für die pharmakologische Optimierung von Endothelzellen Kalzium und elektrische Signalisierung als Einzel- oder interaktive experimentellen Variablen.

Zusammenfassung

Zerebralen Arterien und ihre jeweiligen Mikrozirkulation liefern Sauerstoff und Nährstoffe an das Gehirn über Blut Durchflussregulierung. Endothelzellen säumen das Lumen der Blutgefäße und Befehl Änderungen im vaskulären Durchmesser je nach Bedarf für die metabolische Nachfrage von Neuronen. Primäre Endothel-abhängige Signalwege der Hyperpolarisation des Membranpotentials (Vm) und Stickoxid-arbeiten in der Regel parallel zur Vermittlung Vasodilatation und steigern somit die Durchblutung. Obwohl integrale zur Koordinierung der Vasodilatation über mehrere Millimeter der vaskulären Länge wurden Bestandteile der Endothel-derived Hyperpolarisation (EDH) historisch schwierig zu messen. Diese Komponenten des EDH beinhalten intrazellulären Ca2 + [Ca2 +]ich erhöht und anschließende Aktivierung von klein - und Mittelstufe Leitwert Ca2 +-aktiviert K+ (SKCa/IKCa) Kanäle.

Hier präsentieren wir Ihnen eine vereinfachte Darstellung der Isolation des frischen Endothel von Maus zerebralen Arterien; gleichzeitige Messung von Endothelzellen [Ca2 +]ich und Vm mit Fura-2 Photometrie und intrazellulären scharfe Elektroden bzw.; und eine kontinuierliche Superfusion von Salzlösungen und pharmakologische Wirkstoffe unter physiologischen Bedingungen (pH 7.4, 37 ° C). Hintere Hirnarterien aus dem Kreis von Willis entfernt die hinteren kommunizieren und die Kameraausrüstung Arterien frei. Enzymatische Verdauung von gereinigten hinteren zerebralen arteriellen Segmente und anschließenden Verreibung erleichtert die Entfernung der Adventitia, perivaskuläre Nerven und glatten Muskelzellen. Resultierende hintere zerebrale arterielle Endothelzellen "Röhren" sind dann unter dem Mikroskop gesichert und mit einer Kamera, Photomultiplier Tube, und ein bis zwei Stromzähler unter kontinuierlicher Superfusion untersucht. Gemeinsam kann diese Methode gleichzeitig Änderungen in Endothelzellen [Ca2 +]ich und Vm in diskreten zellulären lagen, neben der Verbreitung des EDH durch Lücke Kreuzungen bis zu Millimeter Abstand entlang der intakten messen Endothel. Diese Methode wird voraussichtlich eine Hochdurchsatz-Analyse der zugrunde liegenden Blut fließen Regulationsmechanismen im normalen und kranken Gehirn endothelialen Gehirnfunktionen ergeben.

Einleitung

Blutfluss im Gehirn wird durch die Koordination der Vasodilatation bei zerebralen Arterien und Arteriolen in vaskulären Netzwerken1geregelt. Endothelzellen Futter zerebralen Arterien Befehl Widerstandsänderungen vaskulären Durchmesser je nach Bedarf für die metabolische Nachfrage von Neuronen1,2,3. Insbesondere während der Endothel-derived Hyperpolarisation (allgemein bekannt als EDH) intrazelluläre Ca2 + ([Ca2 +]ich) und elektrische Signalisierung in Endothelzellen koordinieren Vasodilatation unter den Endothelzellen u....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Protokoll

Bevor Sie die folgenden Experimente durchführen, sicherzustellen, dass alle Tierpflege verwenden und Protokolle sind vom Tier Heimen und verwenden Committee (IACUC) genehmigt und durchgeführt in Übereinstimmung mit der National Research Council " "Guide für die Pflege und Nutzung der Versuchstieren" " (8th Edition, 2011) und die ARRIVE-Richtlinien. Die IACUC der Loma Linda Universität genehmigt alle Protokolle für diese Handschrift für männliche und weibliche C57BL/6 Mäusen (Altersgruppe: 3 bis 30 Mo).

1. Geräte und Materialien

Hinweis: Details für das Protokoll benötig....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Ergebnisse

Die schematische Demonstration des oben beschriebenen Protokolls ist in den beigefügten Abbildungen gezeigt. Abbildung 1Azeigt eine Gehirn von einem jungen Erwachsenen männlichen C57BL/6N Maus (5 Monate) isoliert. Hintere Hirnarterien sind sorgfältig isoliert aus dem Kreis von Willis, ohne Bindegewebe entfernt, und schneiden Sie in Segmente (Abbildung 1 b-D). Aus teilweise verdaute arteriellen Segmente das intakt.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Diskussion

Angesichts der jüngsten Entwicklungen6,15,16,17zeigen wir nun die Methode zur Isolierung Maus zerebralen arteriellen Endothel in Vorbereitung für die gleichzeitige Messung von [Ca2 +] i und Vm zugrunde liegenden EDH konsequent für ~ 2 h bei 37 ° C. Obwohl es technisch schwierig ist, messen wir Zell-zu-Zell-Kupplung sowie (siehe Referenz6,.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Offenlegungen

Die Autoren erklären keine Interessenkonflikte.

Danksagungen

Wir danken Charles Hewitt für ausgezeichnete technische Unterstützung beim Aufbau, Ausrüstung und Zubehör für die aktuellen Protokolle erforderlich. Wir danken Dr. Sean M. Wilson und Christopher G. Wilson aus dem ETA-Zentrum für perinatale Biologie, für die uns mit einer zusätzlichen inversen Mikroskop und Elektrometer, bzw.. Diese Forschung wurde durch die National Institutes of Health Grant R00-AG047198 (EJB) und Loma Linda University School of Medicine neue Fakultät für Start-up-Fonds unterstützt. Der Inhalt ist ausschließlich in der Verantwortung der Autoren und nicht unbedingt die offizielle Meinung der National Institutes of Health.

....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
GlukoseSigma-Aldrich (St. Louis, MO, USA)G7021
NaClSigmaS7653
MgCl2SigmaM2670
CaCl2Sigma223506
HEPESSigmaH4034
KClSigmaP9541
NaOHSigmaS8045
ATPSigmaA2383
HClThermoFisher Scientific (Pittsburgh, PA, USA)A466250
Kollagenase (Typ H Blend)SigmaC8051
DithioerythritolSigmaD8255
PapainSigmaP4762
ElastaseSigmaE7885
BSA SigmaA7906
PropidiumiodidSigmaP4170
DMSOSigmaD8418
Fura-2 AM FarbstoffInvitrogen, Carlsbad, CA, USAF14185
Umlaufkühler (Isotemp 500LCU)ThermoFisher Scientific13874647
Plexiglas-Superfusion Kammer Warner Instruments, Camden, CT, USARC-27
Glasdeckglas Unterseite (2,4  &mal;   5.0  cm)ThermoFisher Scientific12-548-5M
Plattform aus eloxiertem Aluminium (Durchmesser: 7,8  cm) Warner InstrumentsPM6 oder PH6
Compact Aluminiumbühne Siskiyou, Grants Pass, OR, USA8090P
MikromanipulatorSiskiyou  MX10
Stereomikroskope Zeiss, NY, USAStemi 2000 & 2000-C
Faseroptische Lichtquellen  Schott, Mainz, Deutschland & KL200, ZeissFostec 8375
Nikon Inverses MikroskopNikon Instruments Inc, Melville, NY, USATs2
Phasenkontrast-Objektive Nikon Instruments Inc ( Ph1 DL; 10X & 20X)
Fluoreszierende Objektive Nikon Instruments Inc20X (S-Fluor) und 40X (Plan Fluor)
Nikon Inverses MikroskopNikon Instruments IncEclipse TS100
Mikrospritzenpumpen-Controller (Micro4)World Precision Instruments (WPI), Sarasota, FL, USASYS-MICRO4
SchwingungsisolationstischTechnische Fertigung, Peabody, MA, USA  Micro-g
AmplifiersMolecular Devices, Sunnyvale, CA, USAAxoclamp 2B & Axoclamp 900A
Kopfstufen Molekulare BauelementeHS-2A & HS-9A
Funktionsgenerator EZ Digital, Seoul, SüdkoreaFG-8002
DatenerfassungssystemMolecular Devices, Sunnyvale, CA, USADigidata 1550A
Akustische Baseline-MonitoreAmpol US LLC, Sarasota, FL, USA  BM-A-TM
Digitales SpeicheroszilloskopTektronix, Beaverton, Oregon, USA  TDS 2024B
Fluoreszenzsystem-Schnittstelle, ARC Lampe + Netzteil, Hyperswitch, PMTMolecular Devices, Sunnyvale, CA, USAIonOptix Systems
Temperaturregler    Warner InstrumentsTC-344B oder C
Inline-Heizer Warner InstrumentsSH- 27B
Ventilsteuerung Warner InstrumentsVC-6
Inline-DurchflussregelventilWarner Instruments  FR-50
Elektronischer Abzieher Sutter Instruments, Novato, CA, USAP-97 oder P-1000 
MicroforgeNarishige, East Meadow, NY, USA  MF-900
Borosilikatglasrohre (Verreibung)World Precision Instruments (WPI), Sarasota, FL, USA1B100-4
Borosilikatglasrohre (Pinning)Warner InstrumentsG150T-6
Borosilikatglasrohre (scharfe Elektroden)Warner InstrumentsGC100F-10
Spritzenvorsatzfilter (0,22 &Mikro; m)   ThermoFisher Scientific722-2520
Petrischale aus Glas + Holzkohle SylgardLiving Systems Instrumentation, St. Albans City, VT, USADD-90-S-BLK
Vannas Style Schere (3 mm & 9,5  mm)World Precision Instruments555640S, 14364
Schere 3 & 7 mm KlingenFine Science Tools (oder FST), Foster City, CA, USAMoria MC52 & 15000-00
Geschärfte Pinzette mit feiner Spitze& nbsp;FSTDumont #5 & Dumont #55

Referenzen

  1. Longden, T. A., Hill-Eubanks, D. C., Nelson, M. T. Ion channel networks in the control of cerebral blood flow. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 36 (3), 492-512 (2016).
  2. Chen, B. R., Kozberg, M. G., Bouchard, M. B., Shaik, M. A., Hillman, E. M.

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Nachdrucke und Genehmigungen

Weitere Artikel entdecken

Fura-2-PhotometrieSharp-ElektrodeEndothelröhresimultane MessungGap JunctionsEndothel-abhängige Hyperpolarisationzerebrale Arterien der Maus