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Methodenartikel

Zelle Fraktionierung von U937 Zellen in der Abwesenheit von High-Speed-Zentrifugation

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DOI:

10.3791/59022

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18. Januar 2019

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier präsentieren wir ein Protokoll, um die Plasmamembran, Zytoplasma und Mitochondrien von U937 Zellen ohne den Einsatz von High-Speed-Zentrifugation zu isolieren. Diese Technik lässt sich subzelluläre Fraktionen für die anschließende Untersuchung des Proteins Lokalisierung über Immunoblotting zu reinigen.

Zusammenfassung

In diesem Protokoll zeigen wir eine Methode, subzelluläre Bruchteile von U937 Zellen ohne den Einsatz von Ultrazentrifugation oder wahllose Reinigungsmittel zu erhalten. Diese Methode nutzt hypotone Puffer, Digitonin, mechanische lyse und differentielle Zentrifugation, Zytoplasma, Mitochondrien und Plasmamembran zu isolieren. Der Prozess kann skaliert werden, um den Bedürfnissen der Forscher, ist preiswert und unkompliziert. Diese Methode ermöglicht abschätzen, Protein-Lokalisierung in Zellen ohne spezielle Zentrifugen und ohne den Einsatz von kommerziellen Kits, die teuer werden können. Wir haben erfolgreich diese Methode cytosolischen trennen, Plasmamembran und mitochondrialen Proteine in die menschliche Monocyte-Zellinie U937 verwendet.

Einleitung

Zuverlässige Identifikation von Protein-Lokalisierung ist oft notwendig, bei der Prüfung, molekulare Signalwege in eukaryotischen Zellen. Methoden, subzelluläre Brüche zu erhalten sind übernommen werden Forscher zelluläre Komponenten von Interesse näher zu untersuchen.

Die Mehrzahl der bestehenden Zelle Fraktionierung Methoden fällt in der Regel in zwei große Kategorien, Waschmittel-basierte1,2 und Ultrazentrifugation basierende3,4,5, die sein kann unterscheiden sich durch Schnelligkeit, Pr....

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Protokoll

1. bereiten Sie Puffer und Reagenzien

Hinweis: Siehe Tabelle 1.

  1. Lösungen von Puffer A, Lyse Puffer B, Probenpuffer und Digitonin vorzubereiten.
    1. Bereiten Sie Puffer A durch Zugabe von 8,77 g NaCl und 50 mL HEPES (1 M, pH 7,4), 900 mL entionisiertem Wasser, Anpassung Endvolumen bis 1 L mit entionisiertem Wasser.
      Hinweis: Endkonzentrationen sind 150 mM NaCl und 50 mM HEPES.
    2. Bereiten Sie Lyse Puffer B durch Zugabe von 20 mL HEPES (1 M, pH 7,4), 0,75 g KCl, MgCl2, 2 mL Ethylenediaminetetraacetic Säure (0,5 M EDTA), 0,19 g 2 mL Ethylenglykol-Bis(β-aminoethyl ether)-N, N, N', N'-Tetraacet....

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Ergebnisse

Erfolgreiche Fraktionierung der undifferenzierten U9378 Zellen in Suspension angebaut wurde durchgeführt unter Verwendung des Protokolls genannten und in Abbildung 1dargestellt. Die Proben, die mit dieser Methode wurden westlichen befleckenden9 Nutzung eine nasse Übertragungsmethode auf eine Membran Polyvinylidene Fluorid (PVDF) unterzogen. Die Membran wurde anschließend mit Antikörpern gegen sondiert zytoplasma.......

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Diskussion

Die Entwicklung dieses Protokolls entstand aus einer Unfähigkeit, mitochondriale trennen und Membran-Proben, mit handelsüblichen Kits für die Analyse von Protein-Lokalisierung während Necroptosis14. Die primäre Einschränkungen von vorgefertigten Kits sind ihre Unfähigkeit, auf die Bedürfnisse des einzelnen Forschers angepasst werden die Kosten pro Probe und begrenzte Anzahl von Proben können verarbeitet werden. Die hier vorgestellte Methode kann ohne den Einsatz von teuren Reagenzien und ohne die .......

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Offenlegungen

Die Autoren erklären kein Interessenkonflikt

Danksagungen

Arbeit wurde unterstützt von NIH-1R15HL135675-01, Timothy J. LaRocca

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
DigitoninTCI ChemicalsD0540Für die Zytoplasma-Extraktion
D-MannitolSigma-AldrichM4125Für Lysepuffer B
Dounce HomogenisatorVWR22877-282Für die Homogenisierung
End-over-End-RotatorBarnsteadN/AFür die Zytoplasma-Extraktion
Ethylenglykol-bis(β-aminoethylether)-N,N,N' ,N'-Tetraessigsäure (EGTA)Alfa AesarJ61721Für Lysepuffer B
Ethylendiamintetraessigsäure (EDTA)Sigma-AldrichE7889Für Lysepuffer
B GAPDH (14C10)Cell Signalling Technologies2118Für den Nachweis zytoplasmatischer Fraktionen auf Western Blot, Verdünnung: 1:10000
HEPESVWRJ848Für Lysepuffer A und B
KClSigma-AldrichP9541Für Lysepuffer B
MgCl2Alfa Aesar12315Für Lysepuffer
B Na, K-ATPase a1 (D4Y7E)Cell Signalling Technologies23565Für den Nachweis von Plasmamembranfraktionen auf Western Blot, Verdünnung: 1:1000
NaClSigma-Aldrich793566Für Lysepuffer A
Phenylmethansulfonylfluorid (PMSF)VWRM145Für die Zytoplasmaextraktion und Homogenisierung
Puffersonde UltraschallgerätQsonicaQ125-110Für Endproben
Proteaseinhibitor Cocktail, Allgemeine VerwendungVWRM221-1MLFür die Zytoplasmaextraktion
gekühlte ZentrifugeBeckman-CoulterN/A
Natriumdodecylsulfat (SDS)VWR227Für Probenpuffer
Natriumorthovanadat (SOV)Sigma-Aldrich450243Für Lysepuffer A und B
SaccharoseSigma-AldrichS0389Für Lysepuffer B
Tris-gepufferte Kochsalzlösung (TBS)VWR788Für Probenpuffer
VDAC (D73D12)Zellsignaltechnologien4661Zum Nachweis mitochondrialer Fraktionen auf Western Blot, Verdünnung: 1:1000

Referenzen

  1. Baghirova, S., Hughes, B. G., Hendzel, M. J., Schulz, R. Sequential fractionation and isolation of subcellular proteins from tissue or cultured cells. MethodsX. 2, e440-e445 (2015).
  2. Hwang, S. II, Han, D. K.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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