Die linke Pneumonektomie kombiniert mit Monocrotaline oder Sugen als Modell der pulmonalen Hypertonie bei Ratten

Zusammenfassung

Das Nagetier linken Pneumonektomie ist eine wertvolle Technik in der pulmonalen Hypertonie-Forschung. Hier präsentieren wir Ihnen ein Protokoll zur Beschreibung der Ratte Pneumonektomie Verfahren und Nachsorge zu minimalen Morbidität und Mortalität zu gewährleisten.

Zusammenfassung

In diesem Protokoll wir ausführlich die richtige Verfahrensschritte und die notwendigen Vorkehrungen, um erfolgreich durchführen einer linken Pneumonektomie und induzieren PAH in Ratten mit die zusätzliche Gabe von Monocrotaline (MCT) oder SU5416 (Sugen). Wir vergleichen auch diese beiden Modelle zu anderen PAH-Modelle, die häufig in der Forschung eingesetzt. In den letzten Jahren hat der Fokus von Tiermodellen PAH verschoben in Richtung Studium des Mechanismus der Angioproliferation von plexiformen Läsionen, in denen die Rolle der erhöhten pulmonalen Blutfluss als ein wichtiger Auslöser in der Entwicklung der schweren pulmonalen gilt vaskuläre remodeling. Eines der vielversprechendsten Nager-Modelle von erhöhten pulmonalen Fluss ist die einseitige linke Pneumonektomie, kombiniert mit einem "zweiten Hit" MCT oder Sugen. Die Entfernung von der linken Lunge führt zu erhöhten und turbulenten pulmonalen Blutfluss und vaskuläre remodeling. Derzeit gibt es keine Einzelheiten des Verfahrens der Pneumonektomie Chirurgie bei Ratten. Dieser Artikel beschreibt Schritt für Schritt Protokoll der Pneumonektomie chirurgischen Eingriff und Nachsorge bei männlichen Sprague-Dawley Ratten. Kurz gesagt, das Tier betäubt und die Truhe geöffnet. Sobald die linke Lungenarterie Pulmonalvene und Bronchus visualisiert werden, sie sind ligiert und die linke Lunge entfernt. Die Brust dann geschlossen und das Tier erholt. Blut ist gezwungen, nur auf der rechten Lunge zirkulieren. Diese erhöhte vaskuläre Druck führt zu einer progressiven Umbau und Verschluss der kleinen Lungenarterien. Der zweite Treffer der MCT oder Sugen ist verwendete eine Woche nach der Operation, endothelialen Dysfunktion zu induzieren. Die Kombination von erhöht den Blutfluss in der Lunge und der endothelialen Dysfunktion produziert schwere Pak. Die größte Einschränkung dieses Verfahrens ist, dass es allgemeine chirurgische Fähigkeiten erfordert.

Einleitung

Pulmonaler arterieller Hypertonie (PAH) ist eine progressive und tödliche Krankheit, gekennzeichnet durch eine Zunahme der pulmonalen Blutfluss, erhöhten Gefäßwiderstand, Entzündungen und Umbau des kleinen Lungengefäße Blut¹. Dieser Umbau in der Regel führt zu vaskulären Läsionen, die behindern und kleine Pulmonalarterien, verursacht Vasokonstriktion und Erhöhung der rechten Herzkammer Nachlast²zu verwischen. Einige erfolgreiche pharmakologische Behandlungen von Pak vorhanden sind; als Folge, PAH-Mortalität nach wie vor hoch. Vor kurzem hat sich der Schwerpunkt der Forschung auf der Pathobiologie der pulmonalen Hypertonie auf einen Mechanismus der Angio-Proliferation bewegt in dem die Rolle der erhöhten pulmonalen Blutfluss als ein wichtiger Auslöser in der Entwicklung der pulmonalen vaskulären gilt Umbau^3,4.

Tiermodelle der pulmonalen Hypertonie haben entscheidende Einblicke zur Verfügung gestellt, die helfen, die Pathophysiologie der Erkrankung zu erklären und als Plattform für Drogen, Zelle, Gene und Protein Lieferung gedient haben. Traditionell wurden die chronische Hypoxie-induzierten pulmonalen Hypertonie und dem MCT Lunge Verletzungen Modell die wichtigsten Modelle zur Untersuchung der PAH Pathophysiologie⁵. Sie sind jedoch nicht ausreichend, um erhöhten pulmonalen Blut fließen und Neointimal Muster der Umgestaltung im Vergleich zu Veränderungen bei menschlichen Patienten beschrieben zu erzeugen. Die chronische Hypoxie-Modell bei Nagetieren führt zu Verdickung der Gefäßwände mit hypoxischen Vasokonstriktion ohne Angio-Auslöschung der kleinen Lungengefäße⁶. Darüber hinaus ist die Hypoxie Zustand reversibel. Somit ist das Hypoxie-Modell auch nicht ausreichen, um schwere Pak zu produzieren. MCT Lunge Verletzungen Modell einige endothelialen Dysfunktion zu entlocken, aber die komplexe obliterans Gefäßläsionen findet man bei Menschen mit schweren primären Pak entstehen nicht in den Ratten². Darüber hinaus neigen MCT-behandelten Ratten von MCT-induzierte Lunge Toxizität, Veno-okklusive Lebererkrankung und Herzmuskelentzündung (Myokarditis) anstatt von PAH²sterben. Schließlich ist die Pneumonektomie allein nicht ausreicht, um Neointimal Läsionen in die kleinen Lungengefäße in kurzer Zeit zu produzieren. Nach der Pneumonektomie gibt es minimale Höhe in pulmonalen arteriellen Drucks⁷. Beim Menschen ist die Pneumonektomie gut verträglich, wenn die kontralaterale Lunge gesund⁷ist.

Das linke Pneumonektomie Verfahren kombiniert mit MCT oder Sugen ist jedoch vorteilhaft, da es erhöhten pulmonalen Blutfluss imitiert und pulmonalen vaskulären Umbau vergleichbar mit schweren klinischen Pak führt. Die Pneumonektomie erfolgt auf der linken Lunge, die nur 1 Lappen hat, anstatt auf der rechten Seite, die vier Lappen hat. Wenn die rechte Lunge entfernt wurde, wäre das Tier nicht kompensieren die respiratorische Insuffizienz. Im Pneumonektomie-MCT-Modell entwickelt sich Neointimal Muster der Umgestaltung in über 90 % der behandelten mit betrieben Tiere⁷. Ebenso führt die Kombination von Sugen und Pneumonektomie schwere Pak, gekennzeichnet durch Angio-obliterans vaskulären Läsionen, Proliferation, Apoptose und RV-Dysfunktion-⁸. Die linke Pneumonektomie Vorgehensweise ist auch vorteilhaft im Vergleich zu anderen chirurgischen Eingriffen, PAH zu induzieren. Bisher gehören beschriebenen Modelle bei Ratten zu pulmonalen Blutfluss in die Lunge zu erhöhen Aorto-Caval Shunt oder subclavia-pulmonale Arterie Anastomose. Diese Modelle sind äußerst kompliziert^7,9,10,11. Um ein Aorto-Caval Shunt durchzuführen, muss das Tier Bauch geöffnet werden. Der Shunt befindet sich in der abdominalen Aorta, die Durchblutung aller Bauchorgane statt nur die Lunge erhöht, somit PAH dauert wesentlich länger, zu entwickeln. Darüber hinaus ist es schwierig zu bestimmen, den Blutfluss durch den Shunt, während mit der Pneumonektomie der Blutfluss zu den verbleibenden Lunge Doppel. Die Anastomose subclavia-pulmonale Arterie hat auch viele Komplikationen. Der arteriellen Blutfluss in der Vene kann zur Thrombose der Anastomose und Blutungen führen. Wie die Aorto-Caval Shunt ist es schwierig zu bestimmen, den Blutfluss durch die Anastomose. Darüber hinaus ist es eine teure und schwierige Technik, die vaskuläre chirurgische Fähigkeiten erfordert. Die einseitige linke Pneumonektomie verdoppelt Blutfluss und Schubspannung in der kontralateralen Lunge und in Kombination mit MCT oder Sugen, verursacht die typischen hämodynamischen und histopathologischen Befunde der PAH der Endothelzellen Schaden^{8, 12}.

Die Neuheit dieser Handschrift ist in das sehr detaillierte und umfassende chirurgische Protokoll von der linken Pneumonektomie bei Ratten und in der Diskussion über die technischen und physiologischen Anforderungen dieser Modelle vorgestellt. Da dieses Protokoll nicht verfügbar ist, halte viele Forscher das Modell schwer Verwendung. Ermittler, die die linke Pneumonektomie durchgeführt haben hohe Mortalität und Morbidität verbunden mit den unnötigen Verlust von Tieren, Kompromisse bei der wissenschaftlichen Bewertung konfrontiert. Stattdessen verwenden viele klassische Modelle wie MCT-Injektion, chronische Hypoxie oder nur die Pneumonektomie Pak zu erstellen. Diese Modelle sind jedoch weit weniger effizient als die Kombination von MCT oder Sugen mit der linken Pneumonektomie. Der primäre Zweck dieses Artikels ist es, zunächst detailliert und reproduzierbar chirurgischen Protokolls für die linken einseitige Pneumonektomie bei Ratten und bieten die beste chirurgische Modell von Pak. Dieses Protokoll für linken einseitige Pneumonektomie mit MCT oder SU5416 kombinieren ermöglicht Ermittler zum Erstellen eines sehr viel effektiveren und klinisch relevanten Modells von schweren Pak, die Pathogenese von dieser tödlichen Krankheit zu studieren.

Protokoll

Die nachstehend beschriebenen Verfahren wurden von den institutionellen Animal Care und Nutzung Committee (IACUC) von der Icahn School of Medicine am Mount Sinai genehmigt. Alle Ratten erhielten humane Pflege im Einklang mit dem Mount Sinai "Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren".

1. Vorbereitung für die Operation

1. Autoklaven Cooley-Mayo gebogene Schere (große Schere), Gerald Gewebe Zange, einfachen Draht Spekulum (selbst behalten gerade Iris-Schere (kleine Schere), McPherson-Vannas Iris Schere (hintere Schere), Wangensteen Gewebe Zange (atraumatische Pinzette) Retraktor), kleines Schiff linken, Gaze, doppelseitigen Sonde, dünne vaskulären Nadelhalter und Mikro-Jacobson Moskito blutstillende Zange (Mücke).

2. Vorbereitung und Intubation von Ratten

1. Verwalten Sie eine subkutane Injektion von Buprenorphin Analgesie (0,1 mg/kg) bei 6 – 8 Wochen alten männlichen, Sprague-Dawley Ratten, 30 min vor der Operation.
2. Legen Sie die Ratte einzeln in einer Kammer, Isofluran 4 % und Sauerstoff (1 L/min) für 3 – 4 min. ausgesetzt, bis die Ratte richtig betäubt ist (d.h., bewusstlos, atmet langsam und reagiert nicht auf Berührung oder sound).
3. Intubation von Ratten
   1. Entfernen Sie die Ratte aus der Kammer zu und kleben Sie die Ratte auf ein Brett, damit die Ratte auf den Rücken, mit dem Mund an den Rand des Brettes flach aufliegt. Verwenden Sie die Zeichenfolge, um die Ratte durch die beiden vorderen Zähne zu halten, so dass der Hals flach/gerade bleibt.
   2. Legen Sie eine Fiber optic Gans Lichtquelle über den Hals über dem Kehlkopf, heben Sie und halten Sie die Zunge mit den Fingern und verschieben Sie der Kehldeckel nach oben, um die Stimmbänder zu visualisieren. Die Luftröhre sollte hinter der Stimmbänder hell; passen Sie die Position des Lichts, bis die Luftröhre hell ist.
   3. Intubation die Ratten durch Einfügen eines 16 G-Katheters in den Kehlkopf innerhalb von 60 s die Ratte aus der Kammer zu entfernen, da sie schnell aufwachen. Wenn die Ratte vor erfolgreiche Intubation weckt, setzen Sie die Ratte zurück und wiederholen.
   4. Schließen Sie die Ratte an das Beatmungsgerät wieder Isoflurane und Sauerstoff Lieferung sofort an. Bestätigen Sie die Intubation mit einem kalten Spiegel, um Kondensation der Luftfeuchtigkeit in der Ausatmungsluft vom Katheter zu beobachten. Stellen Sie sicher, dass das Tier noch atmen durch die Ausdehnung der Brust ist.
4. Schließen Sie die Ratte an das Beatmungsgerät. Festlegen der Sauerstoff, 1 L/min. fließen die Belüftungsrate voraussichtlich 70 Atemzüge/min mit einem Tidalvolumen von 0,35-0,45 mL. Setzen Sie positive Ende exspiratorischen Druck (PEEP) auf 2 – 4 cm H₂O. Reduce Isofluran auf 2 – 3 %.
5. Stellen Sie die Ratte unter dem Mikroskop auf richtige Dekubitus auf ein Heizkissen bei 37 ° C. Kleben Sie die Vorderbeine nach unten. Rasieren Sie den linken Brustkorb hinter dem vorderen Bein bis zum Ende des Brustkorbes mit Klipper. Reinigen Sie den OP-Bereich mit Gaze und 10 % Povidon-Jod-Lösung, gefolgt von 70 % igem Ethanol (dreimal).
6. Legen Sie das Pulsoximeter auf die Ratte Fuß und Überwachung der Herzfrequenz und Sauerstoffsättigung während der Operation. Herzfrequenz zwischen 200 – 500 Bpm und Sauerstoffsättigung sollte sein soll > 95 %.

3. Vorbereitung der sterilen Umgebung

1. Visualisieren Sie den OP-Bereich unter die Lupe genommen. Dies muss zuerst erfolgen, da das Mikroskop nicht eingestellt werden kann, sobald die Umgebung steril ist.
2. Steril, chirurgische Handschuhe anziehen. Nicht neben der sterilisierte Instrumente, OP-Abdeckungen und OP-Bereich der Ratte Körper anfassen.
3. Legen Sie ein steriles Tuch über die Ratte in den Körper und das Instrument Fach, eine sterile Umgebung zu schaffen.
4. Legen Sie mit sterilen Handschuhen sterile Instrumenten auf dem sterilen Instrument tray

4. linke Pneumonektomie chirurgischen Eingriff

1. Verwenden Sie Cooley-Mayo Schere und Gerald Gewebe Zange, schneiden Sie ein kleines Loch in die chirurgische drapieren. Das Loch sollte ca. 2 – 3 cm im Durchmesser, den Schnitt voll zu visualisieren, aber nicht zu groß, so dass nur sterilisiert Haut ausgesetzt ist.
2. Machen Sie einen 2 cm langen seitlichen Schnitt im linken Thorax mit einer chirurgischen Klinge. Mit Gaze und Elektrokauter Stift Blutungen/pflegen Blutstillung verwaltet werden. Verwenden Sie die Cooley-Mayo Schere, um jede Schicht des Gewebes zu schneiden, bis die Rippen und Zwischenrippenmuskeln ausgesetzt sind.
3. Intercostalneuralgie Leerzeichen eingeben
   1. Verwenden Sie die Mücke, um ein Loch durch den Muskel der dritten Intercostalneuralgie Platz zu machen.
   2. Die doppelseitigen Sonde verwendet werden, um die Lunge aus dem Weg zu visualisieren, die Lungenarterie zu bewegen. Der Prüfer kann ein weiteres Intercostalneuralgie Leerzeichen eingeben, wenn der Lungenarterie nicht zugänglich ist.
   3. Verwendung Iris Schere und McPherson-Vannas Iris Schere (hintere Schere), öffnen Sie die Zwischenrippenmuskeln, ca. 1 – 2 cm. verwenden den Elektrokauter Stift, um eine Blutung zu stoppen.
   4. Legen Sie ein kleines, selbst behalten Retraktor, die Rippen zu halten und Muskeln öffnen.
4. Öffnen Sie nur die linke Pleura und nach der linken Lunge unten unten in den Bauch der Lungenarterie und Bronchus zugänglich. Laden Sie eine mittlere Hemoclip in der Ligation Clip-Applikator.
5. Unterbindung der wichtigsten linken Bronchus und linken Haupt Lungenarterie
   1. Heben Sie den oberen Teil der linken Lunge sorgfältig mit Wangensteen atraumatische Pinzetten, die Lungenarterie verfügbar zu machen.
   2. Clip der Lungenarterie durch Schließen der Clips und Applikator in die Arterie. Achten Sie darauf, nicht zu schließen oder Bruch die linken Azygos Ader. Nicht einspannen zu kräftig sonst, das Schiff kann Bruch.
   3. Öffnen Sie den Schnitt weiter mit der Tonsillen, um die Muskelfasern zu trennen.
   4. Laden Sie eine andere mittlere Hemoclip in selbstligierendes Clip Applikator, so dass sie bereit ist.
   5. Verwenden Sie die atraumatische Pinzetten, um den unteren Teil der Lunge aus der Schnitt zu heben, bis die wichtigsten linken Bronchus und linken Pulmonalvene visualisiert werden. Atraumatische Pinzette muss ziehen verwendet, um die Lunge und aus der Schnitt bewegen. Da die Lunge zu groß, um in einer Bewegung herausgezogen werden, ohne zu reißen des Gewebes ist, sind die Problem-Zange notwendig, um die Lunge im Ort zu halten, während die atraumatische Pinzette vorsichtig verwendet werden, um mehr Lunge herausziehen.
   6. Verbinden Sie die wichtigsten linken Bronchus und linken Haupt Pulmonalvene durch Schließen des Applikators um sie herum zusammen. Die Vene und Bronchus zu kräftig sonst nicht einspannen, das Schiff kann Bruch.
6. Entfernen Sie die Lunge mit einer Schere. Achten Sie darauf, nicht zu schneiden oder reißen sich den Clip. Verwenden Sie ein kleines Stück von steriler Gaze, um Blut zu absorbieren und stellen Sie sicher, es gibt keine Blutung.
7. Schließung der Rippen und Zwischenrippenmuskeln
   1. Vor dem Schließen der Zwischenrippenmuskeln, einsetzen Sie einen 16 G-Katheter in die Brusthöhle von der chirurgischen Inzision und in den siebten Intercostalneuralgie Raum. Stellen Sie sicher, dass der Prüfer die Nadel um alle lebenswichtigen Organe oder Gefäße Punktion nicht zu visualisieren kann.
   2. Entfernen Sie die Nadel, so dass des Katheters an Ort sofort. Dies wird als eine Thoraxdrainage verwendet werden.
   3. Schließen Sie die Rippen und Zwischenrippenmuskeln mit einer 4: 0 Prolene Naht.
   4. Schließen Sie die Haut und subkutanen Raum mit einer laufenden 5-0-Naht (Table of Materials).
   5. Platz 5: 0-Naht (Table of Materials) in der Haut und um die Brust tube, also wenn die Thoraxdrainage entfernt wird, wird das Loch gebunden werden geschlossen.
8. Evakuierung der Luft aus der Pleurahöhle mit einer 3 mL Spritze durch den Katheter wieder den normalen Unterdruck im Thorax. Klemmen Sie sofort den Katheter mit einem Nadelhalter zu verhindern, dass Luft in die Brusthöhle zurückzugehen. Schnell entfernen Sie den Katheter und binden Sie die Naht um das Loch zu schließen.

5. postoperative Erholung

1. Setzen Sie das Tier auf der sternalen. Schalten Sie die Isoflurane aber auch weiterhin geben die Ratte Sauerstoff über Endotrachealtubus. Nicht unbeaufsichtigt lassen das Tier an jedem beliebigen Punkt bis es genügend Bewusstsein um ambulate wiedererlangt und das Tier sicher in seinem Käfig hat ist.
2. Verabreichen Sie 2 – 3 mL sterile gesäugt Ringer-Lösung subkutan.
3. Überwachung der Herzfrequenz (≈200 – 500 Bpm), Sauerstoffsättigung (≥95 %) und tierischen Farbe, das Tier zu bestätigen ist gut atmen.
4. Wenn das Tier fängt an, Spontanatmung Bewegungen und Hals Bewegungen und reagiert auf physikalische Reize (z. B. Augen Erweiterung, bewegt Nase und Ohren reagieren auf Klang), Extubate das Tier durch Herausziehen des Katheters und trennen Sie den Ventilator.
5. Das Tier zu einem leeren Käfig, Weg von der Firma anderer Tiere zurück. Das Tier sollte für mindestens 3 Tage allein sein.
6. Zur Schmerzkontrolle verwalten Sie 0,1 mg/kg von Buprenorphin subkutan alle 12 h für 3 Tage.

6. Verwaltung der "Zweiten Hit" MCT oder Sugen

1. 1 mL MCT (60 mg/kg) oder 1 mL Sugen (25 mg/kg) durch subkutane Injektion, 1 Woche nach der Operation zu verwalten.

(7) terminal Ernte

1. Legen Sie sieben Wochen nach der Verabreichung von MCT oder Sugen, das Tier in eine Kammer mit flüssigen Sauerstoff (1 L/min) und 4 % Isofluran.
2. Verbinden Sie das Tier an den Ventilator über Bugnase. Halten Sie fließt Sauerstoff und senken Sie Isofluran auf 2,5-3 % zu. Legen Sie das Tier auf dem Rücken und Band nach unten alle Gliedmaßen.
3. Rasieren Sie das Tier entlang der gesamten Bauch.
4. Die Truhe öffnet
   1. Machen Sie einen Schnitt über der Brust mit einem Skalpell von der subclavian Kerbe an der Xyphoid.
   2. Verwenden Sie die Gewebe-Zange die Xyphoid halten. Durchschneiden des Brustbeins mit der Cooley-Mayo Schere, bis das Herz und die Lungenarterie voll zugänglich sind. Verwenden Sie die Elektrokauterisation, um die Blutung zu stoppen. Halten Sie die Rippen mit einem Retraktor zu öffnen.
5. Identifizieren der Lungenarterie. Stellen Sie die Ausrichtung des Herzens, gegebenenfalls durch Zugabe von Gaze unter. Verwenden Sie einen 20 G-IV-Katheter, um die Lungenarterie zwischen die Pulmonalklappe und die Verzweigung der wichtigsten Lungenarterie zu durchbohren. Vorab nur 20 G Katheter in die Arterie und die Nadel entfernen. Voraus die 1.2 Fr transonic Druck Katheter in IV-Katheter, der in der Lungenarterie ist. Sobald die PA-Kurve stetig ist, zeichnen Sie dem Druck für mindestens 10 S. wiederholen folgendermaßen vor, um den Druck in der rechten Herzkammer aufnehmen auf.
6. Entfernen Sie das Herz und die Lunge. Legen Sie die Stücke von der Lunge in Formalin fixiert in Paraffin und mit Hämatoxylin und Eosin befleckt werden.

Ergebnisse

Nach der akzeptierten Systematik ist Lungenhochdruck gekennzeichnet durch eine mittlere Lungenarterie Druck (mPAP) über die obere Grenze des normalen Lungenarterie Druck (d. h. 25 mm Hg). In der Pneumonektomie + MCT-Gruppe entwickelt schwere Pak bis Tag 21 mit einer erhöhten mPAP (Abbildung 1). Der mPAP wird nach folgender Formel berechnet:

Diskussion

In Pak-betroffenen Lungen, vaskuläre Proliferation mit Neointimal Bildung und Auslöschung der Lungenarterien führen zu schweren hämodynamischen Veränderungen, rechtsventrikuläre scheitern und frühe Sterblichkeit^7,8. Die Änderungen an den Gefäßwänden erhöhen Widerstandsfähigkeit gegen Blutfluss, arterielle und rechtsventrikulärer Druck. In der Regel in den frühen Stadien der PAH entwickelt das 3 Wochen nach der Verabreichung MCT oder Sugen, Ratten unspezifische hi...

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien

Name	Unternehmen	Katalognummer	Kommentare
Chirurgische Klinge	Bard-Parker	371215	Inzision
Foran (Isofluran, USP)	Baxter	NDC 10019-360-40	Anästhesie
BD Angiocath 16 G	BD	381157	Intubationssonde, Thoraxdrainage
BD 1 mL Insulinspritze BD		329652	postoperativer Verabreichung von Buprinex
Biogel Chirurgen OP-Handschuhe	Biogel	30460-01	sterile OP-Handschuhe
Wahl BravMini+ Trimmer	Braintree Scientific	CLP-41590 P	Rasur Operationsstelle
SU5416	Cayman Chemical	13342	Sugen
Faseroptischer Illuminator	Cole-Parmer	EW-41723-02	Licht für die Intubation
Surgipro II 4-0 Naht	Covidien	VP831X	Verschluss der Interkostalmuskulatur
Polysorb 5-0 Naht	Covidien	GL-885	Verschluss der Haut
Medium Slide Top Induktionskammer	DRE Veterinary	12570	Sauerstoff- und Isofluranabgabe
DRE Compact 150 Nagetier Anästhesiegerät	DRE Veterinary	373	Sauerstoff- und Isofluranabgabe
Kleingefäß-Kauterisator-Kit	Fine Science Tools	18000-00	Kauterisator zur Minimierung von Blutungen
VentElite Kleintierbeatmungsgerät	Harvard Apparatus	55-7040	Beatmungsgerät
MausSTAT Jr	Kent Scientific	MSTAT-JR	Pulsoximeter und Herzfrequenzmesser
Maus Pfote Pulsoximeter Sensor	Kent Scientific	SPO2-	Pulsoximeter & Herzfrequenz-Pfotensensor
PhysioSuite RightTemp	Kent Scientific	PS-02	Temperaturpad
PVP Prep Solution	Medline	MDS093944	Reinigung der Operationsstelle
Polygefüttertes Abdecktuch	Medline	NON21002Z	Bezug Tier
3 mL Spritze	Medline	SYR103010	postoperative Verabreichung von Flüssigkeiten
Mikrochirurgische Kits, Integra	Miltex	95042-540	chirurgische Instrumente: Spekulum aus glattem Draht, doppelseitige Sonde, McPherson-Vannas Irisschere gerade, gerade Irisschere
hämostatische Pinzette - Micro-Jacobson-Mosquito	Miltex	17-2602	Mosquito
Buprenorphrin HCl 0,3 mg/mL	Par Pharmaceutical	NDC 42023-179-01	Schmerzlinderung
Cooley-Mayo gebogene Schere	Pilling	352090	Große Schere
Gerald Gewebezange	Pilling	351900	Pinzette
Wangesnsteen Gewebezange	Pilling	342929	atraumatische Pinzette
Pilling Thin Vascular Nadelhalter	Pilling	354962DG	Nadelhalter
Crotaline	Sigma-Aldrich	C2401-1G	MCT
Surflash 20 G IV Katheter	Terumo	SR*FF2051	Für die Druckmessung während der Organentnahme
ADVantage PV System mit 1,2 Fr Katheter	Transonic Inc	ADV500	Aufzeichnung des Lungenarterien- und rechten Ventrikeldrucks
Medium Hemoclip	Weck	523700	Ligatgefäße
Open Ligating Clip Applikator; Mittelgroßer, gebogener	Weck Horizon	237081	Hämoclip-Applikator
Operationsmikroskop	Zeiss OPMI MD	1808	Vergrößerung