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Methodenartikel

Durchführung von Human Skeletal Muscle Xenografts bei immundefizienten Mäusen

10.1K Aufrufe

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DOI:

10.3791/59966

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16. September 2019

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Komplexe menschliche Krankheiten können in traditionellen Labormodellsystemen eine Herausforderung darstellen. Hier beschreiben wir einen chirurgischen Ansatz zur Modellierung menschlicher Muskelerkrankungen durch die Transplantation menschlicher Skelettmuskelbiopsien in immundefizienten Mäusen.

Zusammenfassung

Behandlungseffekte, die in Tierstudien beobachtet werden, lassen sich in klinischen Studien oft nicht rekapitulieren. Obwohl dieses Problem vielschichtigen Probleme hat, ist ein Grund für diesen Ausfall die Verwendung unzureichender Labormodelle. Es ist eine Herausforderung, komplexe menschliche Krankheiten in traditionellen Labororganismen zu modellieren, aber dieses Problem kann durch das Studium menschlicher Xenografts umgangen werden. Die chirurgische Methode, die wir hier beschreiben, ermöglicht die Schaffung von menschlichen Skelettmuskel-Xenografts, die verwendet werden können, um Muskelerkrankungen zu modellieren und präklinische therapeutische Tests durchzuführen. Im Rahmen eines von einem Institutional Review Board (IRB) zugelassenen Protokolls werden Skelettmuskelproben von Patienten erworben und dann in NOD-Rag1nullIL2r-null (NRG) Wirtsmäuse transplantiert. Diese Mäuse sind ideale Wirte für Transplantationsstudien aufgrund ihrer Unfähigkeit, reife Lymphozyten herzustellen und sind daher nicht in der Lage, zellvermittelte und humoral adaptive Immunantworten zu entwickeln. Wirtsmäuse werden mit Isofluran betäuht, und die Maus tibialis anterior und extensor digitorum longus Muskeln werden entfernt. Ein Stück menschlicher Muskeln wird dann in das leere Tibialfach gelegt und an die proximalen und distalen Sehnen des Peroneus longus Muskels vernässt. Der xenotransplantierte Muskel wird vom Mauswirt spontan vaskularisiert und innerviert, was zu robust regenerierten menschlichen Muskeln führt, die als Modell für präklinische Studien dienen können.

Einleitung

Es wurde berichtet, dass nur 13,8% aller Arzneimittelentwicklungsprogramme, die sich in klinischen Studien befinden, erfolgreich sind und zu zugelassenen Therapien führen1. Während diese Erfolgsquote höher ist als die zuvor gemeldeten 10,4%2, gibt es noch erheblichen Raum für Verbesserungen. Ein Ansatz zur Steigerung der Erfolgsrate klinischer Studien besteht darin, Labormodelle zu verbessern, die in der präklinischen Forschung verwendet werden. Die Food and Drug Administration (FDA) verlangt, dass Tierstudien die Wirksamkeit der Behandlung nachweisen und die Toxizität vor klinischen Phase-1-Studien bewerten. Allerdings ....

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Protokoll

Alle Verwendung von Forschungsproben von menschlichen Probanden wurde vom Johns Hopkins Institutional Review Board (IRB) genehmigt, um die Rechte und das Wohlergehen der Teilnehmer zu schützen. Alle Tierversuche wurden vom Johns Hopkins University Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) in Übereinstimmung mit dem National Institutes of Health (NIH) Guide for the Care and Use of Laboratory Animals genehmigt. Männliche NOD-Rag1nullIL2r-null (NRG) Wirtsmäuse (8-12 Wochen alt) werden verwendet, um Xenograft-Experimente durchzuführen. Diese Mäuse sind in belüfteten Regalen untergebracht und erhalten HEPA....

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Ergebnisse

Wie von Yuanfan Zhang et al. gezeigt, ist dieses chirurgische Protokoll eine einfache Methode, um menschliche Skelettmuskel Xenografts zu produzieren8. Regenerierte Xenografts werden spontan innerviert und zeigen funktionale Kontraktilität. Darüber hinaus rekapituliert Muskelxenografted von FSHD-Patienten Veränderungen in der Genexpression, die bei FSHD-Patienten beobachtet wurden8.

Nach unserer Erfahrung zeigen ca. 7 von 8 Xenografts, die aus Ko.......

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Diskussion

Patienten-abgeleitete Xenografts sind eine innovative Möglichkeit, Muskelerkrankungen zu modellieren und präklinische Studien durchzuführen. Die hier beschriebene Methode zur Herstellung von Skelettmuskel-Xenografts ist schnell, unkompliziert und reproduzierbar. Einseitige Operationen können in 15 bis 25 Minuten oder bilateral in 30 bis 40 Minuten durchgeführt werden. Bilaterale Xenografts können zusätzliche experimentelle Flexibilität bieten. Zum Beispiel können Forscher eine lokalisierte Behandlung eines Xenografts dur.......

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Offenlegungen

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde von der Myositis Association und der Peter Buck Foundation unterstützt. Wir danken Dr. Yuanfan Zhang für den Austausch ihrer Expertise und Ausbildung in der Xenograft-Chirurgietechnik.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
100 mm x 15 mm PetrischaleFisher ScientificFB0875712
2-MethylbutanFisherO3551-4
20 mm x 30 mm Mikro-DeckglasVWR48393-151
TierwaageKent ScientificSCL-1015
Antibiotisch-Antimykotische LösungCorning, Cellgro30-004-CI
AutoClip SystemF.S.T12020-00
Castroviejo NadelhalterF.S.T12565-14
Extrakt aus KükenembryonenAccurateCE650TL
CM1860 UV-KryostatLeica BiosystemsCM1860UV
Coplin FärbeglasThermo Scientific19-4
SeziernadelnFisher ScientificS13976
Trockeneis - PelletFisher ScientificNC9584462
Embryonaler Myosin-AntikörperDSHBF1.652empfohlene Konzentration 1:10
EthanolFisher Scientific459836
Fötales RinderserumGE Healthcare Life SciencesSH30071.01
Fiber-Lite MI-150Dolan-JennerMi-150
PinzetteF.S.T11295-20
Ziege Anti-Maus IgG1, Alexa Fluor 488InvitrogenA-21121empfohlene Konzentration 1:500
Ziege Anti-Maus IgG2b, AlexaFluor 594InvitrogenA-21145empfohlene Konzentration 1:500
Gummi TraganthSigmaG1128
Schinken F-10 MediumCorning10-070-CV
Histoacryl Blue Topical Skin AdhesiveTissue SealTS1050044FP
Humanspezifischer Lamin A/C AntikörperAbcamab40567Empfohlene Konzentration 1:50-1:100
Humanspezifischer Spektren-AntikörperLeica BiosystemsNCLSPEC1Empfohlene Konzentration 1:20-1:100
InduktionskammerVetEquip941444
Iris ForcepsF.S.T11066-07
Irradiated Global 2018 (Uniprim 4100 ppm)EnvigoTD.06596Antibiotische Nagetierdiät zum Schutz vor Atemwegsinfektionen
IsofluranMWI Veterinary Supply502017
KimwipesKimberly-Clark34155chirurgische Tücher
Mapleson E Breathing CircuitVetEquip921412
MethanolFisher ScientificA412
Mobiles AnästhesiegerätVetEquip901805
Maus auf Maus BasicKit Vector LaboratoriesBMK-2202Maus IgG-blockierendes Reagenz
NagellackElektronenmikroskopie Sciences72180
NAIR Haarentferner Lotion/ÖlFisher ScientificNC0132811
NOD-Rag1null IL2rg null (NRG) MäuseThe Jackson Laboratory0077992 bis 3 Monate alt
O.C.T. CompoundFisher Scientific23-730-571
SauerstoffAirgasOX USPEA
PBS (phosphatgepufferte Kochsalzlösung)Puffer Fisher Scientific4870500
Povidon Jod AufbereitungslösungDynarex1415
ProLong™ Goldenes Eindeckmittel mit LichtschutzFisher ScientificP10144 (ohne DAPI); P36935 (mit DAPI)
Puralube Ophthalmic SalbeDechra17033-211-38
Rimadyl (Carprofen) injizierbarPatterson Veterinary10000319chirurgisches Analgetikum, subkutan in einer Dosis von 5 mg/kg verabreicht
Skalpellklingen - #11F.S.T10011-00
Skalpellgriff - #3F.S.T10003-12
Stereo MikroskopAccu-scope3075
Superfrost Plus ObjektträgerFisher Scientific12-550-15
Nahtmaterial, synthetisch, nicht resorbierbar, 30 Zoll lang, CV-11 NadelCovidienVP-706-X
1ml Spritze (26 Gauge, 3/8 Zoll Nadel)BD Biosciences329412
TrimmerKent ScientificCL9990-KIT
Vannas Federschere, 8,0 mm SchneideF.S.T15009-08
VaporGaurd AktivkohlefilterVetEquip931401
gewickelte Clips, 9 mmF.S.T12022-09

Referenzen

  1. Wong, C. H., Siah, K. W., Lo, A. W. Estimation of clinical trial success rates and related parameters. Biostatistics. 0, 1-14 (2018).
  2. Hay, M., Thomas, D. W., Craighead, J. L., Economides, C., Rosenthal, J. Clinical development success rates for investigational drugs. Nature ....

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