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Methodenartikel

Verdunkelung von Riesen-Unilamellar-Hybridvesikeln durch Elektroformation und Messung ihrer mechanischen Eigenschaften durch Micropipette Aspiration

8.5K Aufrufe

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DOI:

10.3791/60199

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19. Januar 2020

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Ziel des Protokolls ist es, die mechanischen Eigenschaften von Riesenvesikeln durch Mikropipette-Aspiration zuverlässig zu messen.

Zusammenfassung

Riesige Vesikel aus Phospholipiden und Copolymeren können in verschiedenen Anwendungen genutzt werden: kontrollierte und gezielte Wirkstoffabgabe, biomolekulare Erkennung innerhalb von Biosensoren zur Diagnose, funktionelle Membranen für künstliche Zellen und Entwicklung bioinspirierter Mikro-/Nanoreaktoren. In all diesen Anwendungen ist die Charakterisierung ihrer Membraneigenschaften von grundlegender Bedeutung. Unter den bestehenden Charakterisierungstechniken ermöglicht die von E. Evans entwickelte Mikropipette-Aspiration die Messung der mechanischen Eigenschaften der Membran wie Flächenkompressiermodul, Biegemodul und Lysespannung und Dehnung. Hier stellen wir alle Methoden und detaillierten Verfahren zur Gewinnung von Riesenbläschen aus dem Dünnschicht eines Lipids oder Copolymers (oder beidem), die Herstellung und Oberflächenbehandlung von Mikropipetten und das Aspirationsverfahren vor, das zur Messung aller zuvor genannten Parameter führt.

Einleitung

Riesenbläschen aus Phospholipiden (Liposomen) sind seit den 1970er Jahren als Basis-Zellmembranmodell1weit verbreitet. In den späten 1990er Jahren erschienen vesikuläre Morphologien, die aus der Selbstmontage von Copolymeren gewonnen wurden, polymersomen in Bezug auf ihre Lipidanaloga2,3, schnell als interessante Alternative zu Liposomen, die eine schwache mechanische Stabilität und eine schlechte modulare chemische Funktionalität besitzen. Ihr zellbiomimetischer Charakter ist jedoch im Vergleich zu Liposomen eher begrenzt, da letztere aus Phospholipiden bestehen, dem Hauptbestandteil d....

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Protokoll

1. Herstellung von Mikropipetten

HINWEIS: Hier sind Mikropipetten mit einem Innendurchmesser von 6 bis 12 m und einer Verjüngungslänge von ca. 3-4 mm erforderlich. Eine detaillierte Methode zur Herstellung von Mikropipette wird im Folgenden beschrieben.

  1. Legen Sie die Borosilikatglaskapillare in die Zugstange des Abziehers und fixieren Sie eine der Enden, indem Sie den Knopf anziehen.
  2. Schieben Sie das Glas vorsichtig durch die Löcher an der Seite der Heizkammer.
  3. Ziehen Sie den Klemmknopf am anderen Ende fest.
  4. Steuern Sie die Größe der Spitze und die Verjüngungslänge, um die gewünschten Spezifikationen ....

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Ergebnisse

Mit dem oben genannten Protokoll wir haben verschiedene synthetische Riesen-Unilamellar-Vesikel (GUV) untersucht, die aus einem Phospholipid gewonnen wurden: 2-Oleoyl-1-Palmitoyl-sn-glycero-3-phosphocholin (POPC), ein Triblock-Copolymer: Poly(Ethylenoxid)-b-Poly(Dimethylsiloxan)-b-Poly(Ethylenoxid) (PEO12-b-PDMS43-b-PEO12) in einer früheren Studie13und ein Diblock-Copolymer Poly(Dimethylsiloxan)-<.......

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Diskussion

Die Beschichtung der Mikropipette ist einer der wichtigsten Punkte, um zuverlässige Messungen zu erhalten. Die Haftung des Vesikels an der Mikropipette muss verhindert werden, und eine Beschichtung wird häufig in der Literatur17,18,19,20,21, mit BSA, '-Casein oder Surfasil verwendet. Details des Beschichtungsverfahrens werden selten erwähnt.

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Danksagungen

Die Autoren danken dem ANR für die finanzielle Unterstützung (ANR Sysa).

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Erforderliche Ausrüstung und Materialien für die Konstruktion von Mikropipetten
Borosilikatglas KapillarenWorld Precision Instruments1B100-4Außen- und Innendurchmesser von 1 mm bzw. 0,58 mm.
Filament installiertSutter Instrument Co.FB255B2,5 mm * 2,5 mm Box Filament
Flammen / Brauner MikropipettenabzieherSutter Instrument Co.Modell P-97
MicroforgeNARISHGE Co.MF-900mit zwei Objektiven (10x und 32x)
Materialien für die Beschichtung von Pipettenspitzen mit BSA
Rinderserumalbuminfraktion V (BSA)Sigma-Aldrich10735078001
Einwegspritze 1 ml LuerspitzeCodan62.1612
Einwegspritze 10 ml LuerspitzeCodan626616
Einwegspritze 5 ml Luer TipCodan62.5607
Einweg-Acetat-ZellulosefilterCluzeau Info LaboL5003SPAPorengröße: 0,22 & Mikro; m, Durchmesser: 25 mm
Flexibler Quarzglas-KapillarschlauchPolymicro Technologies.TSP530660Innendurchmesser 536µ m, Außendurchmesser 660 & Mikro; m,Glucose
Sigma-AldrichG5767
Spritze 500 & Mikro; L luer Lock GASTIGHTHamilton Syringe Company1750
Reagenzglas-RotationsmischerLabinco28210109
Mikromanipulation Setup
Aluminium Optische Schiene, 1000 mm Länge, M4 Gewinde, X48 SerieNewport
Gedämpfter optischer TischNewportWird als Stütze des Mikroskops verwendet, um äußere Vibrationen zu vermeiden.
MikromanipulatorEppendorfPatchman NP 2Die Moduleinheit (Motoreinheit für X-, Y- und Z-Bewegung) wird mit Hilfe eines Adapters auf das inverse Mikroskop montiert.
MikrometerMitutoyo Corporation350-354-10Digimatic LCD Mikrometer Kopf 25,4 mm Reichweite 0,001 mm
Wasserreservoir aus Plexiglas (100 ml)Selbstgebautes
inverses konfokales Mikroskop TCS SP5 (DMI6000), ausgestattet mit einem Resonanzscanner und einem Wasserimmersionsobjektiv (HCX APO L 40x/0,80 WU-V-I).Leica
X48 Schienenträger 80 mm Länge, mit 1/4-20, 8-32 und 4-40 GewindeNewport
Materialien für die Herstellung von Saccharose und amphiphilen Lösungen<
a href="https://www.sigmaaldrich.com/catalog/substance/2oleoyl1palmitoylsnglycero3phosphocholine760082685331611" target="_blank"> 2-Oleoyl-1-palmitoyl-sn-glycero-3-phosphocholinSigma-Aldrich
ChloroformVWR22711.244
L-α-Phosphatidylethanolamin-N-(Lissamin, Rhodamin, B, Sulfonyl)Sigma-Aldrich810146CRhodamin verschlagwortet mit Lipid
SaccharoseSigma-AldrichS7903
Elektroformation einrichten
10 & micro; L Glas KapillarringkappenHirschmann9600110
Einweg 1 ml Spritze Luer TipCodan62.1612
H FettApiezonApiezon H FettSilikonfreies Fett
Indiumzinnoxid beschichtete GlasobjektträgerSigma-Aldrich703184
NadelTerumoAN2138R10,8 x 38 mm
Ohmmeter (Multimeter)VoltcraftVC140
ToluolVWR28676.297
SpannungsgeneratorKeysight33210A
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Referenzen

  1. Bangham, A. D., Standish, M. M., Watkins, J. C. Diffusion of univalent ions across the lamellae of swollen phospholipids. Journal of Molecular Biology. 13 (1), (1965).
  2. Discher, D. E., Eisenberg, A. Polymer vesicles. Science. 297 (5583), 967-973 (2002).
  3. Hammer, D., et al.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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