Die Vaskuläre Entwicklung wird durch die sequentielle Expression spezifischer Gene bestimmt, die durch In-situ-Hybridisierungstests bei Zebrafischen in verschiedenen Entwicklungsstadien untersucht werden können. Um die Rolle von Endoglin(eng) bei der Gefäßbildung während der Entwicklung einer erblichen hämorrhagischen Telangangiektasien (HHT) zu untersuchen, werden Morpholino-vermittelte gezielte Knockdown von eng in Zebrafischen verwendet, um seine zeitliche Expression und die damit verbundenen Funktionen zu untersuchen. Hier wird die Voll-In-situ-RNA-Hybridisierung (WISH) für die Analyse von eng und seinen nachgelagerten Genen in Zebrafischembryonen eingesetzt. Außerdem werden Rohrbildungstests in HHT-Patienten-abgeleiteten induzierten pluripotenten Stammzell-differenzierten Endothelzellen eng (iPSC-ECs; mit eng-Mutationen) durchgeführt. Ein spezifisches Signalverstärkungssystem mit der gesamten In-Situ-Hybridisierung – WISH bietet eine höhere Auflösung und niedrigere Hintergrundergebnisse im Vergleich zu herkömmlichen Methoden. Um ein besseres Signal zu erhalten, wird die Nachfixierungszeit nach der Sondenhybridisierung auf 30 min eingestellt. Da Fluoreszenzfärbung bei Zebrafischembryonen nicht empfindlich ist, wird sie hier durch Diaminobelidin (DAB) ersetzt. In diesem Protokoll werden von HHT-Patienten abgeleitete iPSC-Linien, die eine eng-Mutation enthalten, in Endothelzellen differenziert. Nach der Beschichtung einer Platte mit Kellermembranmatrix für 30 min bei 37 °C werden iPSC-ECs als Monolayer in Brunnen ausgesät und 3 h bei 37 °C gehalten. Anschließend werden die Rohrlänge und die Anzahl der Zweige anhand mikroskopischer Bilder berechnet. So wird mit diesem verbesserten WISH-Protokoll gezeigt, dass eine reduzierte Eng-Expression die Endothel-Vorläuferbildung bei Zebrafischembryonen beeinflusst. Dies wird durch Rohrbildungstests mit iPSC-ECs bestätigt, die von einem Patienten mit HHT abgeleitet wurden. Diese Assays bestätigen die Rolle für eng in der frühen Gefäßentwicklung.