Combined Conditional Knockdown and Adapted Sphere Formation Assay to Study a Stemness-Associated Gene of Patient-derived Gastric Cancer Stem Cells

Zusammenfassung

In diesem Protokoll präsentieren wir ein experimentelles Design mit einem bedingten Knockdown-System und einem angepassten Kugelbildungstest, um die Wirkung von Clusterin auf die Stängel von patientenabgeleiteten GCSCs zu untersuchen. Das Protokoll kann leicht angepasst werden, um sowohl die In-vitro- als auch die In-vivo-Funktion von Stammgenen in verschiedenen CSCs-Typen zu untersuchen.

Zusammenfassung

Krebsstammzellen (CSCs) sind in tumorinititoriöse, Entwicklung und Rezidiv nach der Behandlung involviert und sind in den letzten Jahrzehnten zum Mittelpunkt vieler Studien geworden. Daher ist es wichtig, Methoden zu entwickeln, um die Rolle der Schlüsselgene zu untersuchen, die an der Vorstämmung von Krebszellen beteiligt sind. Magenkrebs (GC) ist eine der häufigsten und tödlichsten Krebsarten. Magenkrebs-Stammzellen (GCSCs) gelten als die Wurzel von Magenkrebsrückfall, Metastasierung und Medikamentenresistenz. Das Verständnis der GCSCs-Biologie ist notwendig, um die Entwicklung zielgerichteter Therapien voranzutreiben und schließlich die Sterblichkeit bei Patienten zu senken. In diesem Protokoll präsentieren wir ein experimentelles Design mit einem bedingten Knockdown-System und einem angepassten Kugelbildungstest, um die Wirkung von Clusterin auf die Stängel von patientenabgeleiteten GCSCs zu untersuchen. Das Protokoll kann leicht angepasst werden, um sowohl die In-vitro- als auch die In-vivo-Funktion von Stammgenen in verschiedenen CSCs-Typen zu untersuchen.

Einleitung

Magenkrebs (GC) ist eine der häufigsten und tödlichsten Krebsarten¹. Trotz Fortschritten in der kombinierten Chirurgie, Chemotherapie und Strahlentherapie in der GC-Therapie, Prognose bleibt schlecht und die Fünf-Jahres-Überlebensrate ist immer noch sehr niedrig². Rezidivundundundundien sind die Hauptgründe für die Todesfälle nach der Behandlung.

Krebsstammzellen (CSCs) sind eine Teilmenge von Krebszellen, die die Fähigkeit besitzen, sich selbst zu erneuern und die verschiedenen Zelllinien zu erzeugen, die den Tumor rekonstituieren³. CSCs werden geglaubt, um für KrebsRückfall und Metastasierung verantwortlich zu sein, wegen ihrer Fähigkeiten der Selbsterneuerung und Aussaat neuer Tumoren, sowie ihre Resistenz gegen traditionelle Chemo- und Radiotherapien⁴. Daher bieten die ausrichtung auf CSCs und die Eliminierung von CSCs ein spannendes Potenzial, um die Behandlung zu verbessern und die Sterblichkeit von Krebspatienten zu senken.

CSCs wurden von vielen Arten von soliden Tumoren isoliert⁵. Im Jahr 2009 wurden Magenkrebsstammzellen (GCSCs), die aus menschlichen Magenkrebszelllinien isoliert wurden, ursprünglich von Takaishi et al.⁶beschrieben. Chen und Kollegen identifizierten und reinigten zunächst GCSCs aus tumorgeweben des menschlichen Magenadenokarzinoms (GAC)⁷. Diese Ergebnisse bieten nicht nur die Möglichkeit, GCSCs Biologie zu studieren, sondern bieten auch eine große klinische Bedeutung.

Ein besonderes Merkmal der CSCs ist ihre Fähigkeit, eine Kugel⁸zu bilden. Einzelne Zellen werden unter nicht haftenden Bedingungen bei geringer Dichte plattiert, und nur die Zellen, die mit Selbsterneuerung besessen sind, können zu einem festen, kugelförmigen Cluster, einer Kugel, der Kugel genannt wird, heranwachsen. So wurde der Kugelbildungstest als Goldstandard-Assay betrachtet und weit verbreitet eingesetzt, um das Potenzial der Stammzellselbsterneuerung in vitro zu bewerten.

RNA-Interferenz (RNAi) ist ein leistungsfähiges Forschungswerkzeug, um die Genfunktion durch den Knockdown eines bestimmten Gens zu untersuchen⁹. Langfristige stabile Gen-Knockdown-Technologien haben jedoch gewisse Einschränkungen, wie die Herausforderung, die Funktion eines Gens zu erforschen, das für das Überleben der Zelle unerlässlich ist. Bedingte RNAi-Systeme können für die Abregulierung der gewünschten Gene in zeitlicher und/oder speziell kontrollierter Weise durch die Verabreichung eines induzierenden Mittels nützlich sein. Die Tetracyclin (Tet)-induzierbaren Systeme sind eines der am häufigsten verwendeten bedingten RNAi-Systeme¹⁰. Die Tet-induzierbaren Systeme können Zielgen-Silencing induzieren, indem sie die Expression von shRNA nach Zugabe eines exogenen Induktors (vorzugsweise Doxycyclin, Dox) steuern. Die Tet-induzierbaren Systeme lassen sich in zwei Typen unterteilen: Tet-On- oder Tet-Off-Systeme. Die Expression von shRNA kann in Gegenwart des Induktors aktiviert (Tet-On) oder ausgeschaltet werden (Tet-Off). Im Tet-ON-System ohne Induktor bindet der konstitutiv exprimiv exprimiv exprimierte Tet-Repressor (TetR) an die Tet-responsive Element (TRE)-Sequenz, die einen Tet-responsivepolischen Pol III-abhängigen Promotor für die shRNA-Expression enthält, wodurch die Expression der shRNA unterdrückt wird. Während die TetR nach Zugabe von Dox vom Tet-responsivepol III-abhängigen Promoter entfernt wird. Dies erleichtert die Expression der shRNA und führt zu einem Genknockdown.

Das hier beschriebene Protokoll verwendet ein funktionelles Tetracyclin-induzierbares shRNA-System und einen angepassten Kugelbildungstest, um die Funktion von Clusterin in patientenabgeleiteten GCSCs zu untersuchen. Clusterin wurde in einer früheren Studie¹¹als neuartiges Schlüsselmolekül zur Aufrechterhaltung der Stammheit und des Überlebens von GCSCs identifiziert. Wir verwenden das beschriebene Protokoll, um die Auswirkungen von Clusterin bei der Selbsterneuerung von GCSCs zu untersuchen. Diese Methode gilt auch für andere Arten von Krebsstammzellen.

Protokoll

Alle Hier beschriebenen Experimente mit patientenabgeleiteten Magenkrebsstammzellen wurden von der lokalen Ethikkommission⁷genehmigt.

1. Magenkrebs Stammzellkultur

1. Vorbereitung von GCSCs komplettes Kulturmedium
   1. Bereiten Sie GCSCs komplette Kulturmedium durch Zugabe von frischen DME / F12 Medium mit den folgenden wesentlichen Zutaten: 20 ng/mL EGF, 10 ng/mL bFGF, 1% Insulin/Transferrin/Natriumselenit, 0,2% Glukose, 0,5% B27, 1% Glutamax, 1% Nicht-essentielle Aminosäure, 10 m 2-Mercaptoethanol, 0,75 mg/mL NaHCO₃, 10 m Thioglycerol, 100 I.E./ml Penicillin und 100 g/ml Streptomycin. Filtern und sterilisieren Sie mit einem 0,22 m-Filter.
      HINWEIS: GCSCs komplettes Kulturmedium wird empfohlen, vorzugsweise nicht mehr als zwei Wochen bei 4 °C gelagert.
2. Wiederherstellung von GCSCs und Kultur
   HINWEIS: GCSCs wurden wie folgt erhalten: Tumorproben wurden einer mechanischen und enzymatischen Dissoziation unterzogen. Einzelzellsuspensionen wurden durch Filtern mit Nylonnetz aus gut verstreuter Suspension gewonnen. Die resultierenden Krebszellen wurden in GCSCs Complete Culture Medium kultiviert, und einige Zellen wuchsen zu Sphären heran. Diese Sphären wurden dann enzymatischer Dissoziation unterzogen, und GCSCs können durch zytofluorometrische Sortierung der Zellpopulation erhalten werden, die mit CD44/CD54-Markern gefärbt ist. Das detaillierte Protokoll und die Funktionsassays der GCSCs wurden⁷berichtet.
   1. Vorwarme GCSCs komplettieren Kulturmedium bei 37 °C für nicht mehr als 30 min.
   2. Abtauen Sie GCSCs aus der Flüssigkeitsstickstoffspeicherung und tauen Sie in einem 37 °C-Wasserbad schnell Kryovials auf. Wirbeln Sie die Fläschchen so lange, bis der gesamte Inhalt vollständig schmilzt.
      HINWEIS: Gefrorene Zellen in einem 37 °C-Wasserbad schnell auftauen (<1 min).
   3. Übertragen Sie den gesamten Inhalt der Kryovials in ein 15 ml Zentrifugenrohr mit 10 ml GCSCs komplettem Kulturmedium. Zentrifuge bei 800 x g für 5 min bei RT.
   4. Aspirieren Sie den Überstand sorgfältig und hängen Sie das Zellpellet in 10 ml frischen GCSCs komplettes Medium auf. Die Zellsuspension in einer 100 mm Petrischale verkisten. Inkubieren Sie die Platte bei 37₂ °C in einem 5% CO2-Inkubator und fügen Sie 5 ml frisches komplettes Medium am dritten Tag hinzu.
3. Subkultur von GCSCs Tumorsphären
   HINWEIS: GCSCs des Tumorsphärenzentrums haben nur genügend Nährstoffe, bevor die Kugeln bis zu 80-100 m im Durchmesser wachsen. Sobald dunkle und geringe Refraktivitätssphären erscheinen (ca. 6 Tage Kultur), ist es notwendig, die Tumorsphären subkulturieren.
   1. Schütteln Sie die Schale vorsichtig und übertragen Sie das GCSCs Tumorsphärenkulturmedium (das Medium und die nicht haftenden Tumorsphären) in ein steriles 15 ml Zentrifugenrohr. Bei größeren mittleren Volumina können größere Zentrifugenrohre benötigt werden.
   2. Zentrifugieren Sie bei 600 x g für 5 min und entsorgen Sie den Überstand sorgfältig. Nach der Zentrifugation wird ein nicht-weißes Pellet sichtbar.
   3. Fügen Sie 2 ml Zelldissoziationslösung hinzu, um das Pellet für die mechanische und enzymatische Dissoziation bei 37 °C wieder aufzuhängen. 10 Mal alle 2-3 min im Verdauungsverfahren sanft auf und ab pfeifen, um die Kugeln auseinander zu brechen, bis die Tumorsphären in einzellige Suspension enpertiert werden. Dieser gesamte Dissoziationsprozess wird empfohlen, weniger als 15 min zu sein.
      HINWEIS: Führen Sie eine visuelle Überprüfung unter dem Mikroskop durch, um zu bestätigen, dass keine großen Kugeln oder Zellaggregate übrig bleiben.
   4. Fügen Sie 10 ml frische vorgewärmte GCSCs komplettes Kulturmedium (5x das Volumen der Zellablösung) hinzu, um den Verdauungsvorgang und die Zentrifuge bei 800 x g bei RT für 5 min zu beenden.
   5. Entsorgen Sie den Überstand und setzen Sie die Zellen mit 1 ml frisch erwärmenden GCSCs als komplettes Kulturmedium wieder aus. Säen Sie eine angemessene Anzahl von Zellen in eine neue 100 mm Petrischale mit 10 ml frisch vorgewärmten GCSCs komplettes Kulturmedium und brüten bei 37 °C, 5%_CO2.
   6. Refeed Tumorsphären Kulturen nach 3 Tagen durch Zugabe von 5 ml frische vorgewärmte komplette Medium. Nach 6 Tagen, Durchgangszellen, wenn Tumorsphären wachsen bis zu 80-100 m im Durchmesser.
4. Kryokonservierung von GCSCs
   HINWEIS: Cryopreserve GCSCs-Zellen nicht durch direkte Zugabe von Medium zu Tumorsphären. GCSCs-Tumorsphären sollten in Einzelzellen verdaut werden, damit Zellschutzmittel in jede Zelle eindringen können, um eine langfristig stabile Lagerung von Zellen zu gewährleisten. Stellen Sie sicher, dass sich die Zellen in einer gesunden Situation und ohne Kontamination befinden.
   1. Ernte GCSCs Tumorsphären. Zentrifuge bei 600 x g für 5 min.
   2. Entsorgen Sie den Überstand und fügen Sie 2 ml Zelldissoziationslösung hinzu, um GCSCs-Tumorsphären bei 37 °C zu dissoziieren. Beenden Sie den Verdauungsvorgang, indem Sie 10 ml GCSCs als vollständiges Kulturmedium hinzufügen.
   3. Zentrifuge bei 800 x g für 5 min und sammeln einzelne GCSCs.
   4. GCSCs mit serumfreiem kryokonservierungsmittelförmigem Medium vorsichtig aussetzen. Die empfohlene Endkonzentration beträgt 5 x 10⁵ - 5 x 10⁶ Zellen/ml.
   5. Geben Sie die Zellsuspension in 1 ml Aliquots in markierte kryogene Fläschchen.
   6. Die Kryovials, die die Zellen enthalten, sofort in eine Isopropanolkammer geben und bei -80 °C aufbewahren. Übertragen Sie die Durchstechflaschen am nächsten Tag zur Langzeitlagerung in flüssigen Stickstoff.

2. Generierung von induzierbaren Knockdown GCSCs-Linien

VORSICHT: Rekombinante Lentiviren wurden vom National Institute of Health and Center for Disease Control als Level-2-Organismen eingestuft. Die Arbeit mit dem Lentivirus erfordert die Aufrechterhaltung einer Einrichtung der Biosicherheitsstufe 2, da die von diesen lentiviralen Systemen erzeugten viralen Überstoffe potenziell gefährliche rekombinante Viren enthalten könnten.

1. Generierung von Lentivirus-Partikeln
   1. Synthesize 2 lentivirale Vektoren mit induzierbarer shRNA, die auf menschliches Clusterin abzielen, und einen nicht zielgerichteten lentiviralen Vektor (GV307) von GeneChem basierend auf dem Design von Tabelle 1 (GV307-Vektor enthält: TetIIP-TurboRFP-MCS(MIR30)-Ubi-TetR-IRES-Puromycin).
   2. Samen 4 x 10⁶ 293T lenti-virale Verpackungszellen in eine 100 mm Petrischale mit 10 ml DMEM, ergänzt mit 10% fetalem Rinderserum.
   3. 293T-Zellen über Nacht bei 37 °C, 5%_CO2inkubieren. Stellen Sie sicher, dass 293T Zelldichte ist etwa 50-80% konfluent am Tag der Transfektion.
   4. Bringen Sie das reduzierte Serummedium auf Raumtemperatur und bereiten Sie Tube A und Tube B wie in Tabelle 2beschrieben vor.
   5. Übertragen Sie Tube A in Tube B, mischen Sie sie gut und inkubieren Sie die Komplexe 20 min bei Raumtemperatur, um Lipid-DNA-Komplexe vorzubereiten.
   6. Entfernen Sie 5 ml Medium, bevor Sie Lipid-DNA-Komplex hinzufügen, so dass insgesamt 5 ml.
   7. Fügen Sie 5 ml Lipid-DNA-Komplex in die Kulturschale tropfenweise und sanft wirbeln die Schale, um den Komplex zu verteilen.
      HINWEIS: Geben Sie vorsichtig Flüssigkeit an die Tellerwand, um störende 293T-Zellen zu vermeiden.
   8. Inkubationskulturgericht für 24 h bei 37 °C, 5%_CO2.
   9. Nach 24 Stunden nach der Transfektion das Transfektionsmedium vorsichtig entfernen und vorsichtig durch 10 ml vorgewärmtes DMEM ersetzen, ergänzt durch 10% FBS. Inkubieren für 24 h bei 37 °C, 5%_CO2.
      HINWEIS: Alle Überstandundungen und Spitzen sollten vor der Entsorgung mit 10% Bleichmittel behandelt werden.
   10. Etwa nach 48 Stunden nach der Transfektion 10 ml Lentivirus-haltige Überstände ernten.
       HINWEIS: Alle Zellkulturgefäße und -spitzen sollten vor der Entsorgung mit 10% Bleichmittel behandelt werden.
   11. Filtern Sie den lentiviralen Überstand mit einem 0,45 m Porenfilter, um zellulären Schmutz zu entfernen.
       HINWEIS: Alle Filter und Spritzen sollten vor der Entsorgung mit 10% Bleichmittel behandelt werden.
   12. Überdeutlichung geklärter Überstand in einen sterilen Behälter geben, Lenti-X Konzentrator (1/3 Volumen geklärter Überstand) hinzufügen, um durch sanfte Inversion zu mischen.
   13. Inkubationsmischung bei 4 °C über Nacht.
   14. Zentrifugenproben bei 1.500 x g für 45 min bei 4 °C. Nach der Zentrifugation, und off-white Pellet wird sichtbar sein. Entfernen Sie vorsichtig Überstand, achten Sie darauf, das Pellet nicht zu stören.
       HINWEIS: Alle Überstandundungen und Spitzen sollten vor der Entsorgung mit 10% Bleichmittel behandelt werden.
   15. Das Pellet in 1 ml DMEM, ergänzt mit 10% FBS als Virusbestand, vorsichtig wieder aufhängen, bei -80 °C lagern.
2. Erzeugung stabiler transfizierter Zelllinien
   1. Samen 6 x 10⁶ GCSCs in eine 100 mm Petrischale mit 10 ml DMEM ergänzt mit 10% FBS für 24 h bei 37 °C, 5%_CO2 (70-80% Zusammenfluss vor der Infektion).
   2. Das Medium in der Schale ansaugen, die konzentrierten lentiviralen Partikel mit 4 ml komplettem DMEM-Medium verdünnt, das Polybrenereagenz (5 g/ml) enthält, in die Schale geben. 18 h bei 37 °C, 5%_CO2inkubieren.
      HINWEIS: Die optimale Konzentration von Polybrene hängt vom Zelltyp ab und muss möglicherweise in verschiedenen Konzentrationen getestet werden, um die effektiven Konzentrationen zu bestimmen. Andernfalls kann es empirisch bestimmt werden, in der Regel im Bereich von 2-10 g/ml. Alle Schläuche und Spitzen sollten vor der Entsorgung mit 10% Bleichmittel behandelt werden.
   3. Das Medium wechseln, mit 10 ml DMEM durch 10% FBS-Medium ersetzen und 24 h bei 37 °C, 5%_CO2inkubieren.
      HINWEIS: Alle Mittel und Spitzen sollten vor der Entsorgung mit 10% Bleichmittel behandelt werden.
   4. Den Überstand mit Zellablagerungen aspirieren, durch frisches DMEM ersetzen, ergänzt durch 10% FBS-Medium, das Puromycin enthält (2,5 g/ml) und 24 h bei 37 °C, 5%_CO2inkubieren. Dann ersetzen Sie frisches DMEM, das durch 10% FBS-Medium mit Puromycin (5 g/ml) ergänzt wird, und brüten bei 37 °C, 5%_CO2 für zusätzliche 24 h.
   5. Spülen Sie die anhaftenden GCSCs zweimal mit 5 ml DPBS ohne Kalzium und Magnesium.
   6. Dissoziieren Sie GCSCs mit 1 ml vorgewärmter Zelldissoziationslösung und inkubieren Sie 2-3 min bei 37 °C.
   7. Fügen Sie der Zellsuspension 5 ml frische vorgewärmte GCSCs als komplettes Kulturmedium hinzu.
   8. Geben Sie 3 ml in ein 15 ml Zentrifugalrohr (Rohr A) zur Kryokonservierung der Zellen und die anderen 3 ml in ein 15 ml Zentrifugalrohr (Rohr B) zur Induktion durch Doxycyclin.
   9. Zentrifugenrohr A und Rohr B bei 800 x g für 5 min.
   10. Das Pellet von Rohr A mit 1 ml serumfreiem kryokonservierungsmittelhaltigen Medium aufheben, die Durchstechflasche über Nacht auf -80 °C übertragen und in flüssige Stickstoffspeicher entfernen.
   11. Aspirieren Sie den Überstand und setzen Sie die Zellen von Tube B in 1 ml frisch erwärmenden GCSCs vollständigEr Kulturmedium aus. Säen Sie eine angemessene Anzahl von Zellen in eine neue 100 mm Petrischale von 10 ml frisch vorgewärmten GCSCs komplettes Kulturmedium mit Doxycyclin (Dox) (2,5 g/ml) und inkubieren sie für 48 h bei 37 °C, 5%_CO2.
       HINWEIS: Die optimale Konzentration von Dox kann zwischen den Zelllinien variieren. Jede Zelllinie sollte in verschiedenen Dox-Konzentrationen getestet werden, um die effektiven Konzentrationen für KD und die Toxizität auf den Zellen zu bestimmen.
   12. Bestätigen Sie die stabile Unterdrückung von Clusterin in GCSCs durch Western Blotting.

3. Kugelformationstest

1. Tauen Sie die eingefrorenen induzierbaren Knockdown GCSCs-Linien (siehe Schritt 1.2).
2. Bestimmen Sie die lebensfähige Zelldichte einer 10-L-Probe mithilfe eines automatisierten Zellzählers.
3. Passen Sie das Volumen mit vorgewärmten GCSCs als komplettes Kulturmedium an, um eine Konzentration von 2 x 10⁴ lebensfähigen Zellen/ml zu erhalten.
4. Geben Sie in 3 neue 96-Well Ultra-Low-Attachment-Kulturplattenbrunnen (0,1 ml/well) pro Gruppe ein.
5. Inkubieren Sie die Zellen in einem Inkubator bei 37 °C mit 5%_CO2. Die Kugelbildung sollte innerhalb von 3-10 Tagen erfolgen. Überwachen und zeichnen Sie die Visualisierung der Tumorsphärenbildung alle 2 Tage auf.
   HINWEIS: Es wird nicht empfohlen, das Medium im Falle einer Störung der Tumorsphärenbildung zu ändern. Diese Tumorsphären sollten leicht von einzelnen und aggregierten Zellen unterschieden werden.
6. Bestimmen Sie die Ergebnisse der Tumorsphärenbildung, indem Sie die Größe der gebildeten Tumorsphären mithilfe von Bildgebungssoftware auswerten.

Ergebnisse

Magenkrebs-Stammzellen aus primären menschlichen Magenadenokarzinom wurden in serumfreiem Kulturmedium kultiviert. Nach 6 Tagen dehnten sich zellenweise aus dem einzelzellähnlichen Phänotyp (Abbildung 1A) zu großen Kugeln aus (Abbildung 1B).

Um die Funktion von Clusterin in GCSCs zu bewerten, wurden shRNA-Sequenzen gegen Clusterin und S...

Diskussion

GC ist die dritthäufigste Ursache für krebsbedingte Todesfälle weltweit. GCSCs sind entscheidend bei Magenkrebsrückfällen, Metastasen und Medikamentenresistenzen. Mit GCSCs von Magenkrebspatienten können wir ihre Schwachstelle erforschen und die Targeting-Medikamente zur Behandlung von GC-Patienten entwickeln.

Der Sphärenbildungstest ist eine nützliche Methode, um das Selbsterneuerungspotenzial von Krebsstammzellen in vitro zu untersuchen. Die Ergebnisse können als Prozentsatz der gebildeten K...

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien

Name	Unternehmen	Katalognummer	Kommentare
0,22 μm m Filter	Millipore	SLGP033RB
1-Thioglycerol	Sigma-Aldrich	M6145
2-Mercaptoethanol	Gibco	2068586
tierversuchsfrei rekombinant human EGF	Peprotech	AF-100-15
B-27 Supplement (50X), serumfrei	Gibco	17504044
Corning Costar Ultra-Low Attachment Multi-Well-Platte	Sigma-Aldrich	CLS3474
Countess Zellzählkammer Objektträger	Invitrogen	C10228
Countess II Automatisierter Zellzähler	Invitrogen	AMQAX1000
D-(+)-Glukose	Sigma-Aldrich	G6152
DMEM/F-12, HEPES	Gibco	11330032
hoher Glukosegehalt, GlutaMAX, Pyruvat	Gibco
Doxycyclin-Hyclat	Sigma-Aldrich	D9891
DPBS, kein Calcium, kein Magnesium	Gibco	14190250
Fötales Rinderserum, qualifiziert, Australien	Gibco	10099141
GlutaMAX Supplement	Gibco	35050061
Insulin, Transferrin, Selenlösung (ITS-G), 100X	Gibco
lentiviraler Vektor	GeneChem	GV307
Lenti-X Konzentrator	Takara	631232
Lipofectamine 3000 Transfektionsreagenz	Invitrogen	L3000015
MEM nicht essentielle Aminosäuren Lösung, 100X	Gibco	11140050
Millex-HV Spritzenfiltereinheit, 0,45 &; Mikro; m, PVDF, 33 mm, gammasterilisiert	Millipore	SLHV033RB
Nalgene Allgemeine Kryoröhrchen für die Langzeitlagerung	Thermo Scientific	5000-1020
Nunc Zellkultur-/Petrischalen	Thermo Scientific	171099
Opti-MEM I Medium mit reduziertem Serum	Gibco	31985070
Penicillin-Streptomycin, flüssiges	Gibco	15140122
pHelper 1.0 (knebel/pol-Komponente)	GeneChem	pHelper 1.0
pHelper 2.0 (VSVG-Komponente)	GeneChem	pHelper 2.0
Polybrene	Sigma-Aldrich	H9268
Rekombinant human FGF-basic	Peprotech	100-18B
Natriumbicarbonat	Sigma-Aldrich	S5761
STEM-CELLBANKER Kryokonservierungsmedium	ZENOAQ	11890
StemPro Accutase Zelldissoziationslösung	Gibco	A1110501
UltraPure 1 M Tris-HCI Puffer, pH 7,5	Invitrogen	15567027
ZEISS Inverses Mikroskop	ZEISS	Axio Vert.A1