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Methodenartikel

Stabiler Knockdown von Genen, die extrazelluläre Matrixproteine in der C2C12 Myoblast-Zelllinie mit Small-Hairpin (sh)RNA kodieren

7.9K Aufrufe

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DOI:

10.3791/60824

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12. Februar 2020

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir bieten ein Protokoll, um Gene, die extrazelluläre Matrixproteine (ECM) in C2C12-Myoblasten kodieren, mit Small-Hairpin (sh) RNA zu fallig zu senken. Als Beispiel für ADAMTSL2 beschreiben wir die Methoden zur Validierung der Knockdown-Effizienz auf mRNA-, Protein- und Zellebene während der Myotube-Differenzierung von C2C12.

Zusammenfassung

Extrazelluläre Matrixproteine (ECM) sind entscheidend für die Entwicklung von Skelettmuskeln und Homöostase. Der stabile Knockdown von Genen, die für ECM-Proteine in C2C12-Myoblasten kodieren, kann angewendet werden, um die Rolle dieser Proteine bei der Entwicklung der Skelettmuskeln zu untersuchen. Hier beschreiben wir ein Protokoll zur Erschöpfung des ECM-Proteins ADAMTSL2 als Beispiel, indem man small-hairpin (sh) RNA in C2C12-Zellen verwendet. Nach der Transfektion von shRNA-Plasmiden wurden stabile Zellen mit Puromycin chargenausgewählt. Wir beschreiben weiter die Aufrechterhaltung dieser Zelllinien und die phänotypische Analyse mittels mRNA-Expression, Proteinexpression und C2C12-Differenzierung. Die Vorteile der Methode sind die relativ schnelle Erzeugung stabiler C2C12-Knockdown-Zellen und die zuverlässige Differenzierung von C2C12-Zellen in mehrkernige Myotuben bei Erschöpfung des Serums im Zellkulturmedium. Die Differenzierung von C2C12-Zellen kann durch Hellfeldmikroskopie und durch Messung der Expressionskonzentrationen kanonischer Markergene wie MyoD, Myogenin oder Myosin-Schwere Kette (MyHC) überwacht werden, was auf das Fortschreiten der C2C12-Myoblastendifferenzierung in Myoröhren hinweist. Im Gegensatz zum vorübergehenden Knockdown von Genen mit small-interfering (si) RNA können Gene, die später bei der C2C12-Differenzierung oder während der Myotube-Reifung exprimiert werden, effizienter gezielter werden, indem C2C12-Zellen erzeugt werden, die shRNA stabil exprimieren. Einschränkungen der Methode sind eine Variabilität der Knockdown-Effizienz, abhängig von der spezifischen shRNA, die durch die Verwendung von Gen-Knockout-Strategien auf der Grundlage von CRISPR/Cas9 überwunden werden kann, sowie potenziellen Off-Target-Effekten der shRNA, die in Betracht gezogen werden sollten.

Einleitung

Extrazelluläre Matrixproteine (ECM) unterstützen strukturell alle Gewebe, vermitteln die Zell-Zell-Kommunikation und bestimmen das Zellschicksal. Die Bildung und dynamische Umgestaltung des ECM ist daher entscheidend für die Erhaltung der Gewebe- und Organhomöostase1,2. Pathologische Varianten in mehreren Genen, die für ECM-Proteine kodieren, führen zu Muskel-Skelett-Erkrankungen mit Phänotypen, die von Muskeldystrophien bis zum pseudomouscularen Aufbau3,4reichen. Zum Beispiel verursachen pathogene Varianten in ADAMTSL2 die extrem seltene Musk....

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Protokoll

1. Vorbereitung der shRNA Plasmid DNA von Escherichia coli

  1. Erzeugung klonaler Bakterienkolonien, die die shRNA-Plasmide tragen
    1. Erhalten Sie Glyzerinvorräte von E. coli, die zielspezifische shRNA-Plasmide und ein Kontrollplasmid aus kommerziellen Quellen tragen (Materialtabelle).
      HINWEIS: Es wurden drei verschiedene shRNA-Plasmide verwendet, die auf verschiedene Regionen der murinen Adamtsl2 mRNA abzielen. Eine shRNA wurde ausgewählt, um die 3'-unübersetzte Region (3'UTR) von Adamtsl2 zu zielen, um Rettungsexperimente mit Expressionsplasmiden zu erleichtern, die rekombinante ADAMTSL2- oder einzel....

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Ergebnisse

Die Auswahl von puromycinresistentem C2C12 kann in 10 bis 14 Tagen nach der Transfektion durch effiziente Eliminierung nicht resistenter, d.h. untransfizierter Zellen erreicht werden (Abbildung 1B). In der Regel lösen sich mehr als 80 % der Zellen von der Zellkulturschale und diese Zellen werden während der routinemäßigen Zellerhaltung entfernt. Puromycin-resistente C2C12-Zellen, die die Kontroll-schRNA exzellent, behalten die Spindelform, die längsförmige Zellmorphologie be.......

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Diskussion

Wir beschreiben hier ein Protokoll für den stabilen Abbau von ECM-Proteinen in C2C12-Myoblasten und für die phänotypische Analyse der Differenzierung von C2C12-Myoblasten in Myotuben. Mehrere Faktoren bestimmen das Ergebnis des Experiments und müssen sorgfältig geprüft werden. Die Aufrechterhaltung von C2C12-Zellen in der Vermehrungsphase ist ein entscheidender Schritt, um die C2C12-Zellen im Myoblast-Vorläuferzustand zu halten. Die Beibehaltung der Fähigkeit von C2C12-Zellen, sich konsequent in Myotuben zu differenziere.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Danksagungen

D.H. wird von den National Institutes of Health (National Institute for Arthritis and Musculoskeletal and Skin Diseases, NIAMS, Grant Number AR070748) und Der Samenförderung der Leni & Peter W. May Department of Orthopedics, Icahn School of Medicine Mt. Sinai.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
AcetonFisher Chemisches191784
AgarFisher BioreagenzienBP1423
AmpicillinFisher BioreagenzienBP1760-5
Automatisierter Zellzähler Countesse IIInvitrogenA27977
Bradford ReagenzThermo ScientificP4205987
C2C12 ZellenATCCCRL-1772
ObjektträgerInvitrogenC10283
ChloroformFisher Chemical183172
DMEMGIBCO11965-092
DMSOFisher BioreagenzienBP231-100
DNase I (Amplifikationsgrad)Invitrogen18068015
fötales RinderserumVWR97068-085
GAPDHEMD MilliporeMAB374
GlycinVWR Life Sciences19C2656013
Ziegen-Anti-Maus-Sekundärantikörper (IRDYE 800CW)Li-CorC90130-02
Ziegen-Anti-Maus-Sekundärantikörper (Rhodamin-rot)Jackson Immune Research133389
HClFisher ChemicalA144S
Inkubator (Schüttler)Denville Scientific Corporation1704N205BC105
MercaptoethanolAmresco, VWR Life Sciences2707C122
Midiprep Plasmid-ExtraktionskitQiagen12643
Myosin 4 (Myosin schwere Kette)Invitrogen14-6503-82
EindeckmediumInvitrogen2086310
NaClVWR Life Sciences241
nichtionisches Tensid/DetergensVWR Life Sciences18D1856500
ParaformaldehydMP199983
PBSFisher BioreagentsBP399-4
PEIPolysciences23966-1
Penicillin/Streptomycin-AntibiotikaGIBCO15140-122
PetrischalenCorning353003
Polypropylen-RöhrchenFisherbrand149569C
Proteasehemmer CocktailtablettenRoche33576300
PuromycinFisher ScientificBP2956100
PCR (Echtzeit)Angewandte Biosysteme4359284
Reaktion RöhrchenEppendorf22364111
Reverse Transkription Master MixApplied Biosystems4368814
RIPA PufferThermo ScientificTK274910
sh KontrollplasmidSigma-Aldrich07201820MN
sh 3086 PlasmidSigma-AldrichTRCN0000092578
sh 972 PlasmidSigma-Aldrich
sh 1977 PlasmidSigma-AldrichTRCN0000092582
Spektralphotometer (Nanodrop)Thermo ScientificNanoDrop One C
SYBR Green Reagenz-MastermixAngewandte Biosysteme743566
TrichloressigsäureAcros Organics30145369
Trizol-ReagenzAmbion
TrypanblauGIBCO15250-061
TryptonFisher BioreagenzienBP1421
Trypsin EDTA 0,25%Gibco-Life Technology Corporation2085459
Wasser (DEPC-behandelt und nukleasefrei)Fisher Bioreagenzien186163
Western-Blotting-GerätBioradMini Protean Tetra Cell
HefeextraktFisher BioreagentsBP1422
TRCN0000092579254707

Referenzen

  1. Tanzer, M. L. Current concepts of extracellular matrix. Journal of Orthopaedic Science: Official Journal of the Japanese Orthopaedic Association. 11 (3), 326-331 (2006).
  2. Hubmacher, D., Apte, S. S. The biology of the extrace....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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