Ein Abonnement von JoVE ist erforderlich, um diesen Inhalt anzuzeigen. Melden Sie sich an oder beginnen Sie noch heute mit einer kostenlosen Testphase.

Methodenartikel

Imaging Intranuclear Actin Rods in Live Heat Stressed Drosophila Embryos

3.3K Aufrufe

⸱

DOI:

10.3791/61297

⸱

15. Mai 2020

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Das Ziel dieses Protokolls ist es, Rhodamine-konjugiertes Kugelaktin in Drosophila-Embryonen zu injizieren und die intranukleare Aktinstabsmontage nach Hitzestress abzubilden.

Zusammenfassung

Der Zweck dieses Protokolls ist es, intranukleare Aktinstäbe zu visualisieren, die sich in lebenden Drosophila melanogaster Embryonen nach Hitzestress zusammensetzen. Actin-Stäbe sind ein Kennzeichen einer konservierten, induktiven Actin Stress Response (ASR), die menschliche Pathologien begleitet, einschließlich neurodegenerativer Erkrankungen. Zuvor haben wir gezeigt, dass die ASR zu Morphogenese-Ausfällen und einer verminderten Lebensfähigkeit der sich entwickelnden Embryonen beiträgt. Dieses Protokoll ermöglicht die kontinuierliche Untersuchung der Mechanismen, die der Aktinstabbaugruppe und der ASR in einem Modellsystem zugrunde liegen, das sehr bildgebend, genetisch und biochemie geeignet ist. Embryonen werden gesammelt und auf einem Deckslip montiert, um sie für die Injektion vorzubereiten. Rhodamine-konjugiertes Kugelaktin (G-ActinRed) wird verdünnt und in eine Mikronadel geladen. Eine einzige Injektion erfolgt in das Zentrum jedes Embryos. Nach der Injektion werden Embryonen bei erhöhter Temperatur inkubiert und intranukleare Aktinstäbe werden dann durch konfokale Mikroskopie visualisiert. Fluoreszenzrückgewinnung nach Photobleichung (FRAP) Experimente können an den Aktinstäben durchgeführt werden; und andere aktinreiche Strukturen im Zytoplasma können ebenfalls abgebildet werden. Wir stellen fest, dass G-ActinRed wie endogenes G-Actin polymerisiert und allein nicht die normale Embryoentwicklung beeinträchtigt. Eine Einschränkung dieses Protokolls besteht darin, dass während der Injektion Vorsicht geboten ist, um eine schwere Verletzung des Embryos zu vermeiden. Jedoch, mit der Praxis, Injektion von G-ActinRot in Drosophila Embryonen ist eine schnelle und zuverlässige Möglichkeit, Aktin-Stäbe zu visualisieren und kann leicht mit Fliegen jeder Art oder mit der Einführung von anderen zellulären Spannungen verwendet werden, einschließlich Hypoxie und oxidativen Stress.

Einleitung

Dieses Protokoll beschreibt, wie Man G-ActinRed injizieren, um die Montage von intranuklearen Aktinstäben in wärmebelasteten Embryonen zu visualisieren, die sich einer induzierbaren Actin-Stressreaktion (ASR)1unterziehen. Wir entwickelten dieses Protokoll, um Studien der ASR zu unterstützen, die bei Embryonen zu gestörter Morphogenese und verminderter Lebensfähigkeit führt, und bei erwachsenen menschlichen Zelltypen ist mit Pathologien wie Nierenversagen2, Muskelmyopathien3und Alzheimer und Huntington4,5,

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Protokoll

1. Bereiten Sie Embryo-Sammelbecher und Apfelsaft-Agar-Platten vor

  1. Fünf Tage vor dem Injektionsexperiment28 konstruieren oder mindestens zwei kleine Embryo-Entnahmebecher beschaffen. Machen Sie frische 60 mm Apfelsaft Agar Teller mit kleinen Sammelbechern28verwendet werden. Platten in Plastikboxen lagern, die mit feuchten Papiertüchern bei 4 °C bedeckt sind.
    HINWEIS: Kleine Embryo-Entnahmebecher, die mit Fliegenzahlen bestückt sind, wie in Schritt 1.3 beschrieben, bieten ausreichende Embryozahlen pro Experiment und sorgen gleichzeitig dafür, dass embryonale Handhabung und Injektion in kurzer Zeit durchgeführ....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Ergebnisse

In Abbildung 1ist ein schematischer Arbeitsablauf für die Handhabung von Embryonen dargestellt, und in Tabelle 1ist ein Zeitplan für ein typisches Experiment dargestellt. Eine Schätzung für ein gutes experimentelles Ergebnis ist, dass auf 10 injizierte Embryonen mindestens die Hälfte der betrachteten Embryonen im richtigen Entwicklungsstadium sein wird, unbeschädigt, und eine robuste ASR mit Hitzespannung bei 32 °C aufweisen. Diese ASR wird durch die Montage von intranuklea.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Diskussion

Die Bedeutung dieser Methode ist, dass sie das etablierte Protokoll der Mikroinjektion in Drosophila-Embryonen 21,22,23,24,25,26,27 nutzt, um neue Forschungen in Bezug auf die ASR und die begleitende Aktinstabmontage zu ermöglichen. Ein großer Vorteil der Injektion von G-ActinR.......

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Offenlegungen

Keine Interessenkonflikte deklariert.

Danksagungen

Die Autoren würdigen die Arbeit von Liuliu Zheng und Zenghui Xue, die diese Technik im Sokac-Labor mitvorangetrieben haben, sowie Hasan Seede, der bei der Analyse mitgeholfen hat. Die Arbeit für diese Studie wird durch ein Stipendium des NIH (R01 GM115111) finanziert.

....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Adenosintriphosphat (ATP)Millipore-SigmaA23835GBestandteil von G-Puffer
Apfelsaft, Mott's, 64 fl ozMott's014800000344Bestandteil von Apfelsaftplatten
Bacto AgarBD214010Bestandteil von Apfelsaftplatten
Bleach, PureBright Keimizid, 6,0% NatriumhypochloritKIK International059647210020Für die Dechorionierung von Embryonen
CalciumchloridMillipore-SigmaC1016500GBestandteil des G-Puffers
Zellsieb, 70 μ mFalcon352350Zur Entnahme dechorionierter Embryonen
Konfokales Mikroskop, LSM 880 34-Kanal mit AiryscanZeiss0000001994956Zur Abbildung von intranukleären Aktinstäbchen
TrockenmittelDrierit24001Zum Austrocknen von Embryonen
Präpariermikroskop, Stemi 508 Stereoskop mit 8:1 Zoom Zeiss4350649000000Zum Anordnen von Embryonen auf einem Agarkeil
Präpariernadel, 5 ZollFisher Scientific08965AZum Anordnen von Embryonen auf einem Agarkeil
Dithiothreitol (DTT)Fisher ScientificBP1725Bestandteil des G-Puffers
Doppelseitiges Klebeband, Scotch Permanent, 0,5 Zoll x 250 Zoll3M021200010323Zur Herstellung von Embryokleber
Käfig für die EmbryonenentnahmeGenessee Scientific59100Zur Unterbringung erwachsener Fliegen und zum Sammeln von Embryonen
Pinzette mit feiner Spitze, Dumont Pinzette, Typ 5Elektronenmikroskopie Sciences72701DZum Anordnen von Embryonen auf Agarkeilen
Glaskapillaren, Borosilcatglas, dünn 1 mm x 0,75 mmWorld Precision Instruments, Inc.TW1004Für Mikronadeln
Halogenkohlenwasserstofföl 27Millipore-SigmaH8773100MLFür die Hydratation von Embryonen
Beheizter TischinkubatorZeiss4118579020000, 4118609020000, 4118609010000Für die konfokale
Bildgebung Laborgewebewischer, KimWipesKimberly-Clark34155Laborgewebewischer
Lichtmikroskop, Invertoskop 40C Invertierter Phasenkontrast Mikroskop, generalüberholtZeissAuslaufmodellInjektionsmikroskop
Methyl-4-hydroxybenzoatMillipore-Sigma H36471KGBestandteil von Apfelsaftplatten
Microinjector, FemtoJet4xEppendorf5253000025Microinjector
Microloader Spitzen, epT.I.P.S. 20 μ LEppendorf5242956003Zum Laden von Mikronadeln
Mikromanipulator und Injektionstisch mit X,Y,Z-Zifferblättern zur NadeleinstellungBernard Instruments, Inc (Houston, TX)CustomZur Durchführung von Mikroinjektionen
Mikropipettenabzieher, Modell P-97, Flaming/BrownSutter InstrumentsP97Zum Ziehen von Kapillarröhrchen zur Herstellung von Mikronadeln
Mikroskop-Deckglas 24x50-1,5Fisher Scientific12544EZum Einbetten von Embryonen
Objektträger, Lilac Colorfrost, vorgereinigt, 25 x 75 x 1mmFisher Scientific22037081Zum Einbetten von Embryonen zur Injektion
n-HeptanFisher ScientificH3601Bestandteil des Embryoklebers
Objektiv, 10xZeissAbgekündigt10x Objektiv für Injektionsmikroskop
Objektiv, C-Apochromat 40x/1,2 W Korr. FCSZeiss421767997171140x Wasserobjektiv für konfokales
Objektiv, LD LCI Plan-Apochromat 25x/0,8 Imm Cor DIC M27 für Öl-, Wasser-, Silikonöl- oder Glycerin-Immersion (D=0-0,17mm) (WD=0,57mm bei D=0,17mm)Zeiss420852987100025x gemischtes Immersionsobjektiv für konfokales
Objektiv, Plan-Apocrhomat 63x/1,40 Öl DIC f/ELYRAZeiss420782990079963x Ölobjektiv für konfokal
Pinsel, Robert Simmons Expression E85 Spitz Rund Größe 2Daler-Rowney038372016954Für den Embryotransfer
Papierhandtücher, Kleenex Papierhandtücher mit C-Faltung, weißKimberly-Clark 884266344845Zum Blottieren von Zellsieb
Pasteurpipette, 5 3/4 ZollFisher Scientific1367820AZum Abdecken von Embryonen mit Öl
Petrischale, Glas, 100 x 20 mmCorning3160102Für feuchte Brutkammer
Petrischale, Kunststoff, 60 x 15 mmVWR25384092Für Apfelsaftplatten
Pipette, Eppendorf Referenz 0,5-10 μ LEppendorf2231000604Zum Laden der Mikronadel-Pipettenspitze
, xTIP4 250 μ LBiotix63300006Zum Hinzufügen von Embryokleber zum Deckglas
RasierklingeVWR55411050Zum Schneiden von Agarkeilen, Klebeband, Pipettenspitzen
Rhodamin-konjugiertes globuläres Aktin, menschliches Blutplättchen (nicht Muskeln; 4x10 μ g)Cytoskeleton, Inc.APHR-AG-Aktin^Rotes
Szintillationsfläschchen, 20 mL Borosillat aus Glas mit Polyethylen-Liner und HarnstoffkappenFisher Scientific033377Zur Herstellung von Embryokleber
Schraubglas, 16 ozNalgene000194414195Zum Austrocknen von Embryonen
TischmikrometerElektronenmikroskopie Sciences602104PGZur Kalibrierung des Volumens der G-Aktin-Injektion
SaccharoseMillipore-Sigma840971KGBestandteil von Apfelsaftplatten
Trizma baseMillipore-SigmaT15031KGBestandteil von G Puffer
Hefe, Lesaffre Yeast Corporation Hefe, Red Star Active Dry, 32 ozLesaffre Yeast Corporation117929157002Bestandteil von Hefepaste

Referenzen

  1. Figard, L., et al. Cofilin-mediated Actin Stress Response is maladaptive in heat-stressed embryos. Cell Reports. 26 (49), 3493-3501 (2019).
  2. Ashworth, S. L., et al. ADF/cofilin mediates actin cytos....

Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.

Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

HitzestressMikroinjektionstechnikKonfokalmikroskopieFRAP-ExperimenteG-Aktin RotAktin-StressantwortEmbryomontageFluoreszenzerwiederherstellung