Method Article

Extra Cellular Matrix-Based und Extra Cellular Matrix-Free Generation of Murine Hodenorganoide

DOI:

10.3791/61403

October 7th, 2020

In This Article

Summary

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Hier werden vier Methoden zur Erzeugung von Hodenorganoiden aus primären neonatalen murinen Hodenzellzellen beschrieben, d.h. extrazelluläre Matrix (ECM) und ECM-freie 2D- und 3D-Kulturumgebungen. Diese Techniken haben mehrere Forschungsanwendungen und sind besonders nützlich für das Studium der Hodenentwicklung und Physiologie in vitro.

Abstract

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Hodenorganoide bieten ein Werkzeug für die Untersuchung der Hodenentwicklung, Spermatogenese und Endokrinologie in vitro. Mehrere Methoden wurden entwickelt, um Hodenorganoide zu erstellen. Viele dieser Methoden verlassen sich auf extrazelluläre Matrix (ECM), um de novo Gewebe-Montage zu fördern, jedoch gibt es Unterschiede zwischen Denkmethoden in Bezug auf biomimetische Morphologie und Funktion des Gewebes. Darüber hinaus gibt es nur wenige direkte Vergleiche veröffentlichter Methoden. Hier wird ein direkter Vergleich durch die Untersuchung von Unterschieden in Organoid-Generierungsprotokollen, mit bereitgestellten Ergebnissen gemacht. Vier archetypische Erzeugungsmethoden: (1) 2D ECM-frei, (2) 2D ECM, (3) 3D ECM-frei und (4) 3D-ECM-Kultur werden beschrieben. Zur Beurteilung der Hodenorganoid-Erzeugung wurden drei primäre Benchmarks verwendet. Dabei handelt es sich um zelluläre Selbstmontage, Die Einbeziehung wichtiger Zelltypen (Sertoli, Leydig, Keime und peritubäre Zellen) und entsprechend abgeschottete Gewebearchitektur. Von den vier getesteten Umgebungen erzeugten 2D ECM- und 3D-ECM-freie Kulturen Organoide mit internen Morphologien, die nativen Hoden am ähnlichsten sind, einschließlich der De-Novo-Abschottung von röhrenförmigen versus interstitiellen Zelltypen, der Entwicklung von Tubule-ähnlichen Strukturen und einer etablierten langfristigen endokrinen Funktion. Alle untersuchten Methoden nutzten unsortierte, primäre murine Hodenzellsuspensionen und nutzten allgemein zugängliche Kulturressourcen. Diese Hodenorganoid-Generierungstechniken bieten ein hochzugängliches und reproduzierbares Toolkit für Forschungsinitiativen zur Hodenorganogenese und Physiologie in vitro.

Introduction

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Hodenorganoide sind eine bahnbrechende Technik zur Untersuchung der Hodenentwicklung, Spermatogenese und Physiologie in vitro1,2,3,4. Mehrere Methoden wurden für die Organoid-Generierung erforscht; Dazu gehören eine Vielzahl von extrazellulären Matrix- (ECM) und ECM-freien Kultursystemen, sowohl in zweidimensionalen (2D) als auch dreidimensionalen (3D) Ausrichtungen. Unterschiedliche Erzeugungsmethoden können unterschiedliche zelluläre Montagestrategien fördern; Dies führt zu einer hohen morphologischen und funktionellen Variabilität zwische....

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Protocol

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Alle Mausexperimente wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) der Northwestern University genehmigt, und alle Verfahren wurden nach von der IACUC zugelassenen Protokollen durchgeführt.

1. Vorbereitung von enzymatischen Gewebedissoziationslösungen

  1. Verwenden Sie zwei verschiedene enzymatische Lösungen (Lösung 1 und Lösung 2), die beide mit einer Basalkultur-Medium-Lösung (BM) hergestellt werden.
  2. Zur Herstellung von BM serum und penicillin-streptomycin zu den minimalen essentiellen mittleren bis endgültigen Konzentrationen von 10% bzw. 1% hinzufügen (siehe Tabelle der Materialien für s....

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Results

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Organoide Erzeugung wurde als erfolglos, wenn Hodenzellen nicht selbst-assemble innerhalb 72 h der Kultur, jedoch, alle Methoden hier präsentiert montieren innerhalb von 24 h bei der Verwendung von juvenilen (5 dpp) murinen Zellen. Versagen der biologischen Konstrukterzeugung als Fortsetzung frei schwebender Zellen dargestellt (0 h Spalte in Abbildung 1) auch nach erweiterter Kultur (72 h). In Ermangelung einer Gewebeselbstmontage dispergierten sich alle scheinbaren Zellcluster bei schonende.......

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Discussion

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Mit der Fertigstellung dieses Organoid-Generierungsprotokolls stehen dem Benutzer vier verschiedene Kulturtechniken für die Montage von Hodenkonstrukten und Organoiden in ECM- oder ECM-freien Umgebungen zur Verfügung. Wichtig ist, dass alle vier Methoden es dem Forscher ermöglichen, die organoide Selbstmontage im Laufe der Zeit durch Zeitraffer-Bildgebung oder Videoaufzeichnung nicht-invasiv zu beobachten und konditionierte Medien für die Analyse von abgesonderten Hormonen und Zytokinen zu sammeln, ohne das Gewebe währen.......

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Disclosures

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Die Autoren haben nichts zu verraten.

Acknowledgements

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Diese Arbeit wurde von den National Institutes of Health, dem National Institute of Child Health and Human Development (NICHD) F31 HD089693, dem National Institute for Environmental Health Sciences / National Center for Advancing Translational Sciences (NIEHS/NCATS) UH3TR001207 und 4UH3ES029073-03 und der Thomas J. Watkin es Memorial Professorship finanziert.

Die Autoren danken Eric W. Roth für die Unterstützung bei der Transmissionselektronenmikroskopie. Diese Arbeit wurde von der BioCryo-Anlage des NUANCE Center der Northwestern University genutzt, die von der Soft and Hybrid Nanotechnology Experimental (SHyNE) Resource (NSF ECCS....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
0,22 μm SterilfilterMillipore Sigmascgpu05reFür sterile Filtermedien
3β HSD-PrimärantikörperCosmo Bio CoK0607Leydig-Zellmarker, 1:500 Verdünnung
AlexaFluor 568 α-MausThermo Fisher ScientificA-21202Fluoreszenzmarkierter Sekundärantikörper
AlexaFluor 568 α-KaninchenThermo Fisher ScientificA10042Fluoreszenzmarkierter Sekundärantikörper
Alpha Minimum Essentielles MediumThermo Fisher Scientific11-095-080Basis des Nährmediums
Kollagenase IWorthington BioLS004197Für die Dissoziationslösung 1
Corning Matrigel Membranmatrix, LDEV-freieCorning354234Extrazelluläre Matrix zum Gießen von 2D- und 3D-ECM-Kulturgelen
Countess Cell CounterThermo Fisher ScientificC10227Autmated Cell Counter (Hämazytometer)
Countess Cell Counting Chamber SlidesThermo Fisher ScientificC10228Hämazytometer-Objektträger zur Verwendung mit Countess automatisiertem Zähler
DDX4 PrimärantikörperAbcam138540Spermatogonia-Marker, 1:500 Verdünnung
Desoxyribonuklease I (2.280 u/mgDW)Worthington BioLS002140Für Dissoziationslösung 1
DPBS 1X, + CaCl + MgClThermo Fisher Scientific14040182Zur Rekonstitution von Hyaluronidase
Dulbeccos Phosphat gepufferte Kochsalzlösung +Ca/+MgThermo Fisher Scientific14040117PBS
Embryo Grade H2OMIllipore SigmaW1503Zur Rekonstitution von Kollagenase I und Dnase I
Fötales RinderserumThermo Fisher Scientific16000044Zur Sequenzierung von Enzymdissokationslösungen
Follikel stimulierendes HormonAbcamab51888Für die langfristige Organoidkultur
Humanes ChoriongonadotropinMillipore SigmaC1063Für die langfristige Organoidkultur
Hyaluronidase, aus RinderhodenMillipore SigmaH4272Für Dissoziationslösung 2
Inhibin B Enzymgebundener Immunsorbent AssayAnsh LabsAL-107Inhibin B ELISA Kit
KnockOut SerumersatzThermo Fisher Scientific10828-028Serumquelle für Basalmedien
Mikrogewebe 3D-Petrischale, Mikroschimmelpilz-Sphäroide (24-35, 5x7 Array)Millipore SigmaZ764051Für die 3D-ECM-freie Herstellung von Organoiden
Nunc, Lab Tek II Chamber Slide System, 4-Well-ThermoFisher Scientific12-565-7Für 2D-ECM-freie und 2D-3D-ECM-Kultur
Penicillin/StreptomycinThermo Fisher Scientific15-140-122Antibiotikum für Medien
Richard-Allan Scientific; Histogel, Gel für die ProbenverarbeitungThermo Fisher ScientificHG-4000-012Zur Unterstützung der Paraffineinbettung
von SOX9-PrimärantikörperMillipore SigmaAB5535Sertoli Marker, Verdünnung 1:500
Tedklad Global Mouse Chow (Züchter)Teklad Global2920Mausfutter ohne Phytoöstrogene
Tedklad Global Mouse Chow (Wartung)Teklad Global2916Mausnahrung ohne Phytoöstrogene
Testosteron Enzyme-linked Immunosorbent AssayCalbiotechTE373STestosteron ELISA Kit
Trypan Blue Lösung, 0,4 %Thermo Fisher Scientific15250061Für die Zellzählung
αSMA-PrimärantikörperMillipore SigmaA2547Peritubulärer Marker, 1:500 Verdünnung
β Catenin-PrimärantikörperBD Biosciences610154Sertoli Cytoplasma-Marker, Verdünnung 1:100

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Alves-Lopes, J. P., Stukenborg, J. B. Testicular organoids: a new model to study the testicular microenvironment in vitro. Human Reproduction Update. 24 (2), 176-191 (2018).
  2. Komeya, M., Sato, T., Ogawa, T. In vitro....

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Testicular OrganoidsECM Culture2D ECM free3D ECM freeCellular Self assemblySertoli CellsLeydig CellsGerm CellsPeritubular CellsTissue Architecture

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