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Methodenartikel

Nachweis von Phytophthora capsici im Bewässerungswasser mit Loop-Mediad Isothermale Amplifikation

5.8K Aufrufe

DOI:

10.3791/61478

25. Juni 2020

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir haben eine Methode entwickelt, um Phytophthora capsici zoospores in Wasserquellen mit einer Filterpapier-DNA-Extraktionsmethode in Verbindung mit einem schleifenvermittelten isothermen Amplifikationstest (LAMP) zu detektieren, der im Feld oder im Labor analysiert werden kann.

Zusammenfassung

Phytophthora capsici ist ein verheerender Oomycete-Erreger, der viele wichtige solanaceous und cucurbit Kulturen betrifft, die erhebliche wirtschaftliche Verluste in der Gemüseproduktion jährlich verursachen. Phytophthora capsici ist bodenbedingt und aufgrund seiner langlebigen Überlebensstrukturen (Oosporen und Chlamydosporen), die Witterung und Degradation widerstehen, ein anhaltendes Problem auf Gemüsefeldern. Die Hauptmethode der Dispersion ist durch die Herstellung von Zoosporen, die einzellig sind, flagellated Sporen, die durch dünne Wasserschichten auf Oberflächen oder in wassergefüllten Bodenporen schwimmen können und in Pfützen und Teichen ansammeln können. Daher können Bewässerungsteiche eine Quelle des Erregers und der Anfangspunkte von Krankheitsausbrüchen sein. Der Nachweis von P. capsici in Bewässerungswasser ist mit traditionellen kulturbasierten Methoden schwierig, da andere Mikroorganismen, die in der Umwelt vorkommen, wie Pythium spp., in der Regel P. capsici überwuchern, was es nicht nachweisbar macht. Um das Vorhandensein von P. capsici-Sporen in Wasserquellen (Bewässerungswasser, Abflusses usw.) zu bestimmen, haben wir ein Handpumpen-basiertes Filterpapier (8-10 m) entwickelt, das die Sporen des Erregers (Zoosporen) erfasst und später verwendet wird, um die DNA des Erregers durch eine neuartige, schleifenvermittelte isotherme isotherme Amplifikation (LAMP) zu verstärken. Diese Methode kann DNA aus einer Konzentration von bis zu 1,2 x 102 Zoosporen/ml verstärken und detektieren, was 40-mal empfindlicher ist als herkömmliche PCR. Bei der Prüfung eng verwandter Arten wurde keine Kreuzverstärkung erreicht. LAMP wurde auch mit einem kolorimetrischen LAMP-Master-Mix-Farbstoff durchgeführt, der Ergebnisse anzeigte, die mit bloßem Auge für die schnelle Erkennung vor Ort gelesen werden konnten. Dieses Protokoll könnte an andere Krankheitserreger angepasst werden, die sich über kontaminierte Bewässerungssysteme aufhalten, ansammeln oder dispergieren.

Einleitung

Das Recycling von Wasser in landwirtschaftlichen Betrieben und Baumschulen wird aufgrund der steigenden Wasserkosten und der Umweltbedenken hinter der Wassernutzung immer beliebter. Viele Bewässerungsmethoden wurden für Züchter entwickelt, um die Ausbreitung und das Auftreten von Pflanzenkrankheiten zu reduzieren. Unabhängig von der Quelle des Wassers (Bewässerung oder Niederschlag) wird Abflusses erzeugt, und viele Gemüse- und Gärtnereien haben einen Teich, um Abflusses zu sammeln und zu recyceln1. Dadurch entsteht ein Reservoir für eine mögliche Anhäufung von Krankheitserregern, die die Ausbreitung von Krankheitserregern begünstigt, wenn das ....

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Protokoll

1. Vor-Ort-Nachweis von Phytophthora capsici aus Bewässerungswasser mittels tragbarer, schleifenvermittelter isothermaler Amplifikation

  1. Einrichten der Pumpe und des Filters
    1. Befestigen Sie einen Filterkolben an einem Rohr, das mit einer Handpumpe verbunden ist, so dass bei Aktivierung der Pumpe Luft durch den Mund des Filterkolbens eingezogen wird.
    2. Den Buchner-Trichter in den Gummistopfen in den Mund des Filterkolbens einbauen und das entsprechend große Stück Filterpapier in den Buchner-Trichter einbauen, so dass Luft durch das Filterpapier gezogen wird. Das Filterpapier sollte eine Retentionsgröße von 15 m haben.
      HINWEIS: Das F....

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Ergebnisse

Optimierung der LAMP-Methode
In dieser Studie haben wir das Vorhandensein von Phytophthora capsici im Bewässerungswasser mit einem tragbaren, schleifenvermittelten isothermen Amplifikationstest (LAMP) festgestellt. Zunächst wurde der vorgeschlagene LAMP-Test durch die Prüfung verschiedener LAMP-Primerkonzentrationen optimiert [F3, B3 (jeweils 0,1–0,5 m); LF, LB (je 0,5–1,0 M) und FIP, BIP (je 0,8–2,4 M)], Dauern (30–70 min) und Temperaturen (55–70 °C). Der letzte LAMP-Primer-Mix, der in diese.......

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Diskussion

Die Prüfung von Bewässerungswasser auf Phytopathogene ist ein entscheidender Schritt für Züchter, die Bewässerungsteiche und recyceltes Wasser verwenden27. Bewässerungsteiche bieten ein Reservoir und Brutplatz für eine Reihe von Phytopathogenen, da überschüssiges Bewässerungswasser vom Feld zum Teich geleitet wird, der alle Krankheitserreger mit sich führt, die möglicherweise vorhanden waren16,27. Die traditionelle Methode zum Nachweis von.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten oder Interessenkonflikte.

Danksagungen

Diese Arbeit erhielt die finanzielle Unterstützung der Georgia Commodity Commission for Vegetables Projekt ID- FP00016659. Die Autoren danken Dr. Pingsheng Ji, University of Georgia und Dr. Anne Dorrance, Ohio State University für die Bereitstellung reiner Kulturen von Phytophthora spp. Wir danken auch Li Wang und Deloris Veney für ihre technische Unterstützung während der gesamten Studie.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Agarose-GelpulverThomas ScientificC997J85
Buchner-TrichterSouthern LabwareJBF003
Bullet BlenderNext AdvanceBBX24
Centrifuge 5430Eppendorf22620509
ChloroformFischer ScientificC298-500
CTAB-LösungBiowissenschaften786-565
Dneasy ExtraktionskitQiagen69104
FilterflascheUnitedFHFL1000
FilterpapierUnited Scientific SuppliesFPR009
Gel Grün 10000XThomas ScientificB003B68 (1/EA)
Genie IIIOptiGene
HandpumpeThomas Scientific1163B06
Iso-AmylalkoholFischer ScientificBP1150-500
LAVA LAMP MastermixLucigen30086-1
Magnetbead-DNA-ExtraktionGenesiggenesigEASY-EK
PolyvinylpyrrolidonSigma AldrichPVP40-500G
PrimerSigma Aldrich
Prism Mini CentrifugeLabnetC1801
T100 Thermal CyclerBio-Rad1861096
UV Gel DocAnalytik Jena849-00502-2
Warmstart Colorimetric DyeLucigenE1800m
Wide Mini ReadySub-Cell GT CellBio-Rad1704489EDU
70% IsopropanolFischer ScientificA451-1
Magnetseparator Genesig genesigEASY-MR

Referenzen

  1. Hong, C., Moorman, G. J. Plant pathogens in irrigation water: challenges and opportunities. Critical Reviews in Plant Sciences. 24 (3), 189-208 (2005).
  2. Malkawi, H. I., Mohammad, M. J.

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Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

Nachweis von BewässerungswasserFilterpapiermethodeDNA-ExtraktionLAMP-AssayZoosporennachweiskolorimetrischer NachweisPathogenspezifitätwassergebundener Pathogen