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Methodenartikel

Blinde Endotrachealintubation bei neonatalen Kaninchen

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DOI:

10.3791/61874

26. Februar 2021

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Wir beschreiben eine Technik der endotrachealen Intubation bei neugeborenen Kaninchen nach Ösophaderkatheterisierung mit einem Magenrohr.

Zusammenfassung

Das neugeborene Kaninchen ist ein nützliches Tiermodell für verschiedene Pathologien und Verfahren. Das Atemwegsmanagement des Kaninchens ist aufgrund seiner anatomischen Eigenschaften komplex, was bei Neugeborenen noch komplizierter ist. Von den verschiedenen Methoden des fortgeschrittenen Atemwegsmanagements ist die endotracheale Intubation weniger aggressiv als die Tracheostomie und ist angesichts des Mangels an supraglottischen Geräten von so geringer Größe machbarer als supraglottisches Management. Da die direkte Glottis-Visualisierung bei Tieren dieser Größe sehr schwierig ist, wird dieses blinde Intubationsmodell als wirksame Alternative vorgestellt, insbesondere für Experimente, die eine längere Anästhesie erfordern. Mit dieser Methode führten wir blinde Intubationen mit einer Erfolgsrate von 90% durch.

Einleitung

Die eigentümliche Anatomie des Atmungssystems des Kaninchens erschwert die endotracheale Intubation. Die Mundhöhle ist tief und schmal mit einem begrenzten Bereich der Mundöffnung und einer relativ großen Zunge, was die direkte Visualisierung des Kehlkopfes auch bei Verwendung eines Laryngoskops1,2erschwert. Darüber hinaus ist die Intubation des neugeborenen Kaninchens, das 10-20 Mal kleiner ist als der Erwachsene, noch schwieriger. Zusätzlich zu diesen anatomischen Eigenschaften sind Kaninchen anfällig für Laryngospasmus sekundär zur Manipulation der Atemwege.

Mehrere Intubationstechniken wurden in der Literatur beschrieben, wie Laryngoskop Trachealintubation, blinde Intubation, Echooskopintubation, retrograde Intubation, Endoskopintubation, Tracheostomie und supraglottische Gerätebelüftung3,4,5,6,7,8,9. Alle diese Techniken wurden erfolgreich bei erwachsenen Kaninchen durchgeführt; es gibt jedoch nur wenige Veröffentlichungen über das fortgeschrittene Atemwegsmanagement beim neugeborenen Kaninchen10. Eine Studie beschreibt die Durchführung von Tracheostomien bei Tieren dieses Alters, um Atemmechanik und Lungenvolumen zu bewerten, obwohl dies eine aggressive und irreversible Technik ist11. Diese Methode zur endotrachealen Intubation hat sich als effektive und kostengünstige Methode des Atemwegsmanagements bei neugeborenen Kaninchen erwiesen.

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Protokoll

Das nachstehend beschriebene Intubationsverfahren wurde vom Ausschuss für institutionelle Tierpflege und -nutzung der Universität Barcelona genehmigt (CEEA 180/19).

1. Experimentelle Zubereitung

  1. Erhalten Sie folgende Materialien: 2 mm Durchmesser Polyvinylchlorid (PVC) Endotrachealrohr, 6 Französisch (Fr) Polyurethan-Fütterungsrohr, flache und breite Spitze Sezierzange und steriles Schmiermittel (Abbildung 1).
  2. Während der Intubation und Operation Prozesse, sterile Bedingungen zu erhalten.

2. Anästhesie

  1. Anästhesisieren Sie das Tier mit 5 mg/kg Xylazin und 25 mg/kg Ketamin, die intramuskulär in der Vastus lateralis der femoralen Quadrizeps aufgetragen werden. Alpha-2-Agonisten wie Dexmedetomidin können auch anstelle von Xylazin verwendet werden.
  2. Lassen Sie 3-5 Minuten für das Medikament wirksam werden.
  3. Lesen Sie die gleiche Dosis, bis eine tiefe Anästhesie erreicht ist (negative Pedal-, Palpebrale- und Hornhautreflexe). Im Idealfall wird das Kaninchen spontan bis zur Intubation atmen.

3. Endotracheale Intubation

  1. Das Kaninchen auf eine Wärmedecke bei 37 °C legen. Legen Sie das Tier in dorsale Recumbency mit dem Kopf in Hyperextension. Richten Sie den Kopf so gerade und Mittellinie wie möglich aus. Eine vier Zentimeter lange Rolle aus steriler Gaze, die in der Dorsalregion des Halses platziert wird, kann hilfreich sein, um mindestens 45° Verlängerung zu erreichen (Abbildung 2).
  2. Verwenden Sie flache und breite Spitzensemitschnitte, um die Mundhöhle etwa einen Zentimeter breit zu öffnen. Verwenden Sie Zangen mit einem stumpfen und breiten Ende, um Mundtrauma zu vermeiden.
  3. Messen Sie den Abstand zwischen Mund und Magenbereich (erste Rippe). Führen Sie eine geschmierte 6 französische (Fr) Polyurethan-Gasröhre in die vorgemessene Markierung ein (Abbildung 3-4).
  4. Bewegen Sie das Zuführrohr nach links und fixieren Sie es mit Klebeband auf das Operationsfeld.
  5. Führen Sie das mit sterilem Schmiermittel bedeckte PVC-Endotrachealrohr mit einem Durchmesser von 2 mm Durchmesser in die 3-cm-Marke ein.
    1. Wenn es irgendwelche Schwierigkeiten beim Vorrücken der Röhre gibt, bewegen Sie es vollständig und versuchen Sie es erneut, bis ein glatter Gleiten erreicht ist. Das Risiko eines Traumas für Den Kehlkopf und Epiglottis ist bei mehreren Intubationsversuchen signifikant. Befestigen Sie das Rohr mit Klebeband am Operationsfeld (Abbildung 5-6).
  6. Schließen Sie das Endotrachealrohr mit folgenden Einstellungen an das Beatmungsgerät an: Gezeitenvolumen - 10 ml/kg; Atemfrequenz: 40 Atemzüge/min; FiO2 100%, PEEP 6.
  7. Bestätigen Sie die korrekte Position des Rohres durch den Nachweis vonCO2 in ausgeatmeter Luft (ETCO2), direkter Visualisierung der Brustausdehnung und Beschlag der Röhre. Die Überwachung des Tieres durch Pulsoximetrie und Lungenauskultivierung kann ebenfalls hilfreich sein (Abbildung 7).
  8. Verwenden Sie am Ende des Experiments ein standardisiertes Euthanasie-Protokoll, das aus der intravenösen Verabreichung von Pentobarbital 120-240 mg/kg besteht. Wiederholen Sie Dosen, bis Atempause, Reflexabwesenheit und Asystole erreicht werden.
    HINWEIS: In den chirurgischen Experimenten ist das Tier während des Beatmungsprozesses am Leben und wird schließlich eingeschläfert.

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Ergebnisse

Im Labor wird diese Technik von medizinischem Personal mit Erfahrung im Experimentieren mit neuseeländischen Kaninchen und Expertise im pädiatrischen Atemwegsmanagement durchgeführt. Das Verfahren wurde von einem Forscher von 10 Tieren mit einer weltweiten Erfolgsquote von 90% durchgeführt. Zuvor hatte ein anderer Forscher geübt, sowohl die Position des Tieres als auch die richtige Rohrfixierungslänge zu optimieren. Keines der Tiere war in der Speiseröhre intubiert. Nur ein Versuch (10%) ...

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Diskussion

Kaninchen sind in Tierversuchen aufgrund ihrer Verfügbarkeit, hoher Reproduktionsrate mit kurzen Generationenzeiten und einfacher Handhabungweit verbreitet. In unserem Zentrum verwenden wir 5-7 Tage alte neuseeländische Kaninchen (Oryctolagus cuniculus) als neonatales Modell, um die neurologischen Auswirkungen der extrakorporalen Chirurgie auf das sich entwickelnde Gehirn zu untersuchen. Als Ergebnis verwenden wir Verfahren, die eine tiefe Anästhesie erfordern und endotracheale Intubation...

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde durch Stipendien des Instituto de Salud Carlos III [PFIS2017-0224], "Beca Ruza" von der Sociedad Espaéola de Cuidados Intensivos Pediétricos und des Vanderbilt Medical Scholars Program unterstützt.

Die Sponsoren waren nicht an der Erhebung, Analyse oder Interpretation der Daten beteiligt.

Wir danken Isabel Salas für die Hilfe im Tierlabor und den Herren Carles Fébrega und Frau Gemma Fernandez-Asensio vom Audio-Visual Techincal Team vom Krankenhaus Sant Joan de Déu für die technische Unterstützung bei der Videoaufzeichnung und -produktion.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Endotrachealtubus aus Polyvinylchlorid (PVC) mit 2 mm DurchmesserVygon520.20
6 Französische Ernährungssonde aus PolyurethanVygon310.06
Anästhesie (Ketamin und Xylazin)
Multiparameter-Monitor Intellivue MP5Phillips
Dissektionszange mit einfacher und breiter SpitzeLensforVisionAK005
Steriles Schmiermittel (Silkospray)Rush
Ventilator Servo 900cMaquet

Referenzen

  1. Gilroy, B. A. Endotracheal intubation of rabbits and rodents. Journal of the American Veterinary Medical Association. 179 (11), 1295(1981).
  2. Graham, J. Common procedures in rabbits. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 9 (2), 367-388 (2006).
  3. Fick, T. E., Schalm, S. W. A simple technique for endotracheal intubation in rabbits. Laboratory Animals. 21 (3), 265-266 (1987).
  4. Conlon, K. C., et al. Atraumatic endotracheal intubation in small rabbits. Laboratory Animal Science. 40 (2), 221-222 (1990).
  5. Johnson, D. H. Endoscopic intubation of exotic companion mammals. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 13 (2), 273-289 (2010).
  6. Falcão, S. C., et al. Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization. Acta Cirurgica Brasileira. 26 (5), 352-356 (2011).
  7. Miura, H., et al. Endotracheal intubation in rabbits. The Japanese Journal of Veterinary Anesthesiology. 19 (1), 25-29 (2012).
  8. Thompson, K. L., et al. Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter. Journal of Visualized Experiments. (129), (2017).
  9. Comolli, J., et al. Comparison of endoscopic endotracheal intubation and the v-gel supraglottic airway device for spontaneously ventilating New Zealand white rabbits undergoing ovariohysterectomy. Veterinary Record. , 1-8 (2020).
  10. Hua, S., et al. Effects of different ventilation strategies on lung injury in newborn rabbits. Pediatric Pulmonology. 47 (11), 1103-1112 (2012).
  11. Kitchen, M. J., et al. The role of lung inflation and sodium transport in airway liquid clearance during lung aeration in newborn rabbits. Pediatric Research. 73 (4-1), 443-449 (2012).
  12. Boon, M. S., et al. Tubeless tracheotomy for survival airway surgery in the leporine model. The Laryngoscope. 125 (3), 680-684 (2015).
  13. Dion, G. R., et al. Morbidity and mortality associated with preclinical tracheostomy models. The Laryngoscope. 128 (2), 68-71 (2018).
  14. Phaneuf, L. R., et al. Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 45 (6), 67-72 (2006).

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Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

Blinde IntubationNeugeborenes KaninchenAtemwegsmanagementPVC-EndotrachealtubusMagensondeDissektionspinzetteXylazin-KetaminRückenlageErfolgsrate