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Analyse der Übersetzung im sich entwickelnden Mausgehirn mit Polysome Profiling

DOI:

10.3791/62088

May 22nd, 2021

In This Article

Summary

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Die Entwicklung des Säugetiergehirns erfordert eine ordnungsgemäße Kontrolle der Genexpression auf der Ebene der Translation. Hier beschreiben wir ein Polysomen-Profiling-System mit einer einfach zu montierenden Sucrose-Gradientenerstellungs- und Fraktionierungsplattform, um den Translationsstatus von mRNAs im sich entwickelnden Gehirn zu bewerten.

Abstract

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Die richtige Entwicklung des Säugetiergehirns beruht auf einem feinen Gleichgewicht der proliferation neuronaler Stammzellen und der Differenzierung in verschiedene neuronale Zelltypen. Dieses Gleichgewicht wird streng durch genexpression kontrolliert, die auf mehreren Ebenen fein abgestimmt ist, einschließlich Transkription, Posttranskription und Übersetzung. In dieser Hinsicht unterstreicht eine wachsende Zahl von Beweisen eine entscheidende Rolle der translationalen Regulierung bei der Koordinierung von Entscheidungen über das Schicksal neuronaler Stammzellen. Polysome Fractionation ist ein leistungsfähiges Werkzeug für die Beurteilung des mRNA-Translationalstatus sowohl auf globaler als auch auf individueller Genebene. Hier stellen wir eine hauseigene Polysomen-Profiling-Pipeline vor, um die Translationseffizienz in Zellen aus der sich entwickelnden Mausgroßrinde zu bewerten. Wir beschreiben die Protokolle zur Saccharosegradientenvorbereitung, Gewebelyse, Ultrazentrifugation und Fraktionierungs-basierte Analyse des mRNA-Translationalstatus.

Introduction

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Während der Entwicklung des Säugetierhirns vermehren sich neuronale Stammzellen und differenzieren sich, um Neuronen und Glia1,2 zu erzeugen. Die Störung dieses Prozesses kann zu Veränderungen in der Gehirnstruktur und -funktion führen, wie in vielen neuroentwicklungsbedingten Störungengesehen 3,4. Das richtige Verhalten neuronaler Stammzellen erfordert die orchestrierte Expression spezifischer Gene5. Während die epigenetische und transkriptionelle Kontrolle dieser Gene intensiv untersucht wurde, deuten jüngste Ergebnisse darauf....

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Protocol

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Der gesamte Gebrauch von Tieren wurde vom Animal Care Committee der University of Calgary überwacht. CD1-Mäuse, die für das Experiment verwendet wurden, wurden von kommerziellen Anbietern gekauft.

1. Vorbereitung von Lösungen

HINWEIS Um den ABBAU der RNA zu verhindern, sprühen Sie die Werkbank und alle Geräte mit RNase-Dekontaminationslösung. Für das Experiment werden RNase-freie Spitzen verwendet. Alle Lösungen werden in RNase-freiem Wasser vorbereitet.

  1. Cycloheximid-Stammlösung (100 mg/ml) in DMSO vorbereiten und bei -20 °C lagern.
  2. 2,2 M Saccharose-Stammlösung vorbereiten, indem 75,3 g Saccha....

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Results

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Als Demonstration wurde das kortikale Lysat, das 75 g RNA (gepoolt aus 8 Embryonen) enthält, durch den Saccharosegradienten in 12 Fraktionen getrennt. Spitzen der UV-Absorption bei 254 nm identifizierten Fraktionen, die die 40S-Untereinheit, 60S-Untereinheit, 80S-Monosomen und Polysomen enthalten (Abbildung 4A). Die Analyse der Fraktionen nach Western Blot für die große ribosomale Untereinheit randalierte Rpl10 in der 60S-Untereinheit (Fraktion 3), Monosomen (Fraktion 4) und Polysomen (Frakt.......

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Discussion

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Polysome Profiling ist eine häufig verwendete und leistungsfähige Technik, um den Translationsstatus sowohl auf einzelnen Gen- als auch auf genomweiten Ebenen14 zu bewerten. In diesem Bericht stellen wir ein Protokoll der Polysomenprofilierung mit einer selbst zusammengesetzten Plattform und deren Anwendung zur Analyse des sich entwickelnden Mauskortex vor. Diese kostengünstige Plattform lässt sich einfach montieren und robuste, reproduzierbare Saccharosegradienten und Polysomenprofilierung mit ho.......

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Disclosures

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Die Autoren erklären keine konkurrierenden Interessen.

Acknowledgements

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Diese Arbeit wurde durch einen NSERC Discovery Grant (RGPIN/04246-2018 bis G.Y.) finanziert. G.Y. ist ein Canada Research Chair. S.K. wurde vom Mitacs Globalink Graduate Fellowship und dem ACHRI Graduate Student Scholarship finanziert.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
1,5 mL RNA-freie MikroröhrchenAxygenMCT-150-C
10 cm SchaleGreiner-Bio664160
1M MgCl2InvitrogenAM9530G
21-23G NadelBD305193
2M KClInvitrogenAM8640G
30 mL SpritzeBD302832
stumpfes Ende NadelVWR20068-781
BreadboardThorlabsMB2530/M
Bromophenol blauSigma115-39-9
CD1 MausCharles River Laboratory
Pinzette mit gebogener SpitzeSigma#Z168785
CycloheximidSigma66-81-9
Software zur Datenerfassung TracerDAQMeasurement Computing
Digitaler KonverterMeasurement ComputingUSB-1208LS
Direct-zol RNA miniprep kitZymoR2070
Dithiothreitol (DTT)Bio-basic12-03-3483
DMSOBioshop67-68-5
Dumont No.5 PinzetteSigma#F6521
FraktionssammlerBio-RadModell 2110
HBSSWisent311-513-CL
LineartischantriebRattmmotorCBX1605-100A
Luziferase-Kontrolle RNAPromegaL4561
Maxima Erststrang-cDNA-SynthesekitThemo FisherM1681
Miniatur-V-KlemmeThorlabsVH1/M
Steckbrett der Mini-SerieThorlabsMSB7515/M
Optischer Pfosten der Mini-SerieThorlabsMS2R/M
Mini-Serie Sockel-Pfostenhalter BasisThorlabsMBA1
NaClBio-basic7647-14-5
Neurobasale MedienGibco21103-049
& Oslash; 12,7 mm AluminiumpfostenThorlabsTRA150/M
ParafilmBemisPM992
PerfeCTa SYBR grün fastmixQuanta BioCA101414-274
Phosphatgepufferte Kochsalzlösung (PBS)Wisent311-010-CL
PuromycinBioshop58-58-2
Rechtwinklige KlemmeThorlabsRA90/M
Rechtwinklig & Oslash; 1/2" bis Ø 6 mm PfostenklemmeThorlabsRA90TR/M
Rnase AWAYMolecular BioProducts7002
RNase freie SpitzenFrogga BioFT10, FT200, FT1000
RNase freies WasserWisent809-115-CL
RNasinPromegaN2111
Schlanke rechtwinklige HalterungThorlabsAB90B/M
Kleine V-KlemmeThorlabsVC1/M
NatriumdesoxycholatSigma302-95-4
SchrittmotortreiberSongHeTB6600
SaccharoseBioshop57501
SW 41 Ti RotorBeckman Coulter331362
SpritzenpumpeHarvard Apparatus70-4500
SpritzenpumpeHarvard Apparatus70-4500
Triton-X-100Bio-basic9002-93-1
TrizolThermofisher Scientific15596018
SchlauchstecherBrandelBR-184
UltrazentrifugeBeckman CoulterL8-70M
UltrazentrifugenröhrchenBeckman Coulter331372
UltraPure 1M Tris-HCl pH 7,5Invitrogen15567-027
UNO Projekt Super Starter KitElegooEL-KIT-003
UV-MonitorBio-RadEM-1 Econo
Vertikale HalterungThorlabsVB01A/M

References

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  1. Götz, M., Huttner, W. B. The cell biology of neurogenesis. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 6, 777-788 (2005).
  2. Guillemot, F. Spatial and temporal specification of neural fates by transcription factor codes. Development. 134, 3771-3780 (2007).

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Polysome ProfilingTranslational RegulationMouse Brain DevelopmentSucrose GradientNeural Stem CellsmRNA TranslationUltracentrifugationFraction CollectionRibosomal SubunitsWestern Blot

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