Makrophagen sind multifunktionale Zellen, die für die Funktion des Immunsystems unerlässlich sind, und die primäre Wirtszelle bei einer Infektion mit Leishmania braziliensis (Lb). Diese Zellen sind auf die Erkennung von Mikroorganismen und die Phagozytose spezialisiert, aktivieren aber auch andere Immunzellen und präsentieren Antigene, sowie fördern Entzündungen und Gewebereparaturen. Hier beschreiben wir ein Protokoll zur Gewinnung mononukleärer Zellen aus peripherem Blut (PBMC) gesunder Spender, um Monozyten zu trennen, die sich dann zu Makrophagen differenzieren. Diese Zellen können dann in vitro in verschiedenen Lb-Konzentrationen infiziert werden, um die Fähigkeit zur Kontrolle der Infektion sowie die Immunantwort der Wirtszellen zu bewerten, die mit verschiedenen Methoden gemessen werden kann. PBMCs wurden zunächst durch Zentrifugieren mit einem Ficoll-Hypaque-Gradienten isoliert und dann plattiert, damit Monozyten an Kulturplatten haften konnten. Nicht adhärente Zellen wurden durch Waschen entfernt. Als nächstes wurden adhärente Zellen 7 Tage lang mit dem Makrophagen-Kolonie-stimulierenden Faktor (M-CSF) kultiviert, um die Makrophagendifferenzierung zu induzieren. Wir empfehlen, 2 x 106 Zellen pro Well auf 24-Well-Platten zu plattieren, um 2 x 105 Makrophagen zu erhalten. Vollständig differenzierte Makrophagen können dann für 4 oder 24 Stunden mit Lb infiziert werden. Dieses Protokoll führt zu einem signifikanten Prozentsatz infizierter Zellen, der durch optische oder Fluoreszenzmikroskopie beurteilt werden kann. Zusätzlich zum Infektionsindex kann die Parasitenlast gemessen werden, indem die Anzahl der Parasiten in jeder Zelle gezählt wird. Weitere molekulare und funktionelle Assays können auch in Kulturüberständen oder innerhalb der Makrophagen selbst durchgeführt werden, was es ermöglicht, dieses Protokoll in einer Vielzahl von Kontexten anzuwenden und auch an andere intrazelluläre Parasitenarten anzupassen.