Methodenartikel

Rekonstitution der Msp1-Extraktionsaktivität mit vollständig gereinigten Komponenten

DOI:

10.3791/62928

10. August 2021

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Hier stellen wir ein detailliertes Protokoll zur Rekonstitution der Msp1-Extraktionsaktivität mit vollständig gereinigten Komponenten in definierten Proteoliposomen vor.

Zusammenfassung

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Als Zentrum für oxidative Phosphorylierung und apoptotische Regulation spielen Mitochondrien eine wichtige Rolle für die menschliche Gesundheit. Die richtige mitochondriale Funktion hängt von einem robusten Qualitätskontrollsystem ab, um die Proteinhomöostase (Proteostase) aufrechtzuerhalten. Der Rückgang der mitochondrialen Proteostase wurde mit Krebs, Alterung, Neurodegeneration und vielen anderen Krankheiten in Verbindung gebracht. Msp1 ist eine AAA+ ATPase, die in der äußeren mitochondrialen Membran verankert ist und die Proteostase aufrechterhält, indem sie falsch lokalisierte schwanzverankerte Proteine entfernt. Unter Verwendung von gereinigten Komponenten, die zu Proteoliposomen rekonstituiert wurden, haben wir gezeigt, dass Msp1 notwendig und ausreichend ist, um ein modellhaftes schwanzverankertes Protein aus einer Lipiddoppelschicht zu extrahieren. Unser vereinfachtes rekonstituiertes System überwindet mehrere der technischen Barrieren, die eine detaillierte Untersuchung der Membranproteinextraktion behindert haben. Hier stellen wir detaillierte Methoden zur Generierung von Liposomen, zur Membranproteinrekonstitution und zum Msp1-Extraktionsassay zur Verfügung.

Einleitung

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Die richtige zelluläre Funktion hängt von einem Prozess namens Proteostase ab, der sicherstellt, dass funktionelle Proteine in der richtigen Konzentration und zellulären Position sind1. Versagen in der Proteostase führen zu einer beeinträchtigten Organellenfunktion und sind mit vielen neurodegenerativen Erkrankungen verbunden2,3,4. Membranproteine stellen einzigartige Herausforderungen an das Proteostasenetzwerk dar, da sie auf die richtige Membran ausgerichtet werden müssen, während die Aggregation aus den hydrophoben Transmembrandomänen (TMDs) vermie....

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Protokoll

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1. Liposomen-Vorbereitung

  1. Kombinieren Sie Chloroform-Bestände von Lipiden in geeigneten Verhältnissen, um die äußere mitochondriale Membran nachzuahmen.
    1. Bereiten Sie 25 mg Lipidmischung vor. Wir verwenden eine zuvor etablierte Mischung von Lipiden, die mitochondriale Membranen nachahmen, bestehend aus einem molaren Verhältnis von 48:28:10:10:4 aus Hühnerei-Phosphatidylcholin (PC), Hühnerei-Phosphatidylethanolamin (PE), Rinderleberphosphatidyl-Inositol (PI), synthetischem 1,2-Dioleoyl-sn-glycero-3-phospho-L-Serin (DOPS) und synthetischem 1',3'-Bis[1,2-Dioleoyl-sn-glycero-3-phospho]-glycerin (TOCL)58,

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Ergebnisse

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Um die Ergebnisse richtig zu interpretieren, müssen das fleckenfreie Gel und der Western Blot zusammen betrachtet werden. Das fleckenfreie Gel sorgt für eine gleichmäßige Belastung aller Proben. Bei der Betrachtung des fleckenfreien Gels sind die Chaperone (GST-Calmodulin und GST-SGTA) in den Spuren INPUT (I) und ELUTE (E) sichtbar. Überprüfen Sie, ob die Intensität dieser Bänder in allen INPUT-Samples einheitlich ist. Stellen Sie außerdem sicher, dass die Intensität in den ELUTE-Proben gleichmäßig ist. Der ELUTE ist 5x .......

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Diskussion

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Die richtige mitochondriale Funktion hängt von einem robusten Proteinqualitätskontrollsystem ab. Aufgrund inhärenter Grenzen in der Genauigkeit der TA-Protein-Targeting-Pfade sind falsch lokalisierte TA-Proteine eine ständige Stressquelle für Mitochondrien. Eine Schlüsselkomponente des mitochondrialen Proteostasenetzwerks ist Msp1, eine membranverankerte AAA + ATPase, die fehllokalisierte TA-Proteine aus dem OMM entfernt. Hier haben wir beschrieben, wie man Proteoliposomen herstellt, Msp1 und ein Modell-TA-Protein co-rek.......

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Danksagungen

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MLW entwickelte einen Teil dieses Protokolls während seines Postdoc-Studiums bei Dr. Robert Keenan an der University of Chicago.

Diese Arbeit wird durch den NIH-Zuschuss 1R35GM137904-01 an MLW finanziert.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
BiobeadsBio-Rad1523920
Rinderleber-Phosphatidyl-InositolAvanti840042CPI
Hühnerei-PhosphatidylcholinAvanti840051C
PC Hühner-Ei-PhosphatidylethanolaminAvanti840021CPE
ECL Select Western Blotting DetektionsreagenzGERPN2235
FilterhalterungenAvanti610014
GlasfläschchenVWR60910L-1
Glutathion-Spin-SäuleThermo FisherPI16103
Ziege Anti-KaninchenThermo FisherNC1050917
Mini-ExtruderAvanti610020
Polycarbonat-MembranAvanti610006200 nM
PVDF-MembranThermo Fisher8851845 µ M
Rabbit anti-FLAGSigma-AldrichF7245
Synthetisches 1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phospho-L-serinAvanti840035CDOPS
Synthetisches 1',3'-bis[1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phospho]-glycerolAvanti710335CTOCL
Spritze, 1 mLNorm-Ject53548-001
Spritze, 1 mL, gasdichtAvanti610017

Referenzen

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  1. Song, J., Herrmann, J. M., Becker, T. Quality control of the mitochondrial proteome. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 22, 54-70 (2021).
  2. Phillips, B. P., Miller, E. A. Membrane protein folding and quality control. Current Opinion in Structural Biology.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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Schlagwörter

Protein ReconstitutionAAA ATPaseMitochondrial ProteostasisLiposome GenerationMembrane Protein ExtractionTail Anchored ProteinsGlutathione Spin ColumnsSDS PAGE AnalysisWestern Blot

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