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Methodenartikel

Überwachung des Brustkrebswachstums und der metastasierenden Koloniebildung bei Mäusen mittels Biolumineszenz

3.4K Aufrufe

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DOI:

10.3791/63060

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5. November 2021

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier beschreiben wir eine nichtinvasive Überwachungsmethode, die Luciferase und grün fluoreszierende Proteinexpression in verschiedenen Brustkrebszelllinien beinhaltet. Dieses Protokoll bietet eine Technik zur Überwachung der Tumorbildung und der metastasierenden Besiedlung in Echtzeit bei Mäusen.

Zusammenfassung

Brustkrebs ist eine häufige heterogene Malignität und die zweithäufigste Todesursache bei Frauen, hauptsächlich aufgrund von entfernten Organmetastasen. Es wurden mehrere Tiermodelle erstellt, darunter die weit verbreiteten orthotopen Mausmodelle, bei denen Krebszellen in das Brustfettpolster injiziert werden. Diese Modelle können jedoch nicht dazu beitragen, die Kinetik des Tumorwachstums und die metastasierende Besiedlung zu überwachen. Modernste Werkzeuge zur Echtzeitüberwachung von Krebszellen in Mäusen werden das Verständnis der Tumorbiologie erheblich verbessern.

Hier wurden Brustkrebszelllinien etabliert, die Luziferase und grün fluoreszierendes Protein (GFP) stabil exprimieren. Insbesondere enthält diese Technik zwei aufeinanderfolgende Schritte, die durch die Messung der Luciferase-Aktivität in vitro eingeleitet werden, gefolgt von der Implantation der Krebszellen in Brustfettpolster von nicht fettleibigen diabetisch-schweren kombinierten Immunschwächemäusen (NOD-SCID). Nach der Injektion werden sowohl das Tumorwachstum als auch die metastasierende Besiedlung in Echtzeit durch das nichtinvasive Biolumineszenz-Bildgebungssystem überwacht. Dann wird die Quantifizierung von GFP-exprimierenden Metastasen in der Lunge mittels Fluoreszenzmikroskopie untersucht, um die beobachteten Biolumineszenzergebnisse zu validieren. Dieses ausgeklügelte System, das Luciferase und fluoreszenzbasierte Erkennungswerkzeuge kombiniert, bewertet Krebsmetastasen in vivo, was ein großes Potenzial für den Einsatz in Brustkrebstherapeutika und Krankheitsmanagement hat.

Einleitung

Brustkrebs ist weltweit eine häufige Krebsart, mit etwa 250.000 neuen Fällen, die jedes Jahr in den Vereinigten Staaten diagnostiziertwerden 1. Trotz seiner hohen Inzidenz hat eine neue Reihe von Krebsmedikamenten die Ergebnisse von Brustkrebspatientinnen signifikant verbessert2. Diese Behandlungen sind jedoch immer noch unzureichend, da viele Patienten einen Krankheitsrückfall und eine metastatische Ausbreitung auf lebenswichtige Organe2 erfahren, was die Hauptursache für die Morbidität und Mortalität der Patienten ist. Daher besteht eine der größten Herausforderungen in der Brustkrebsforschung d....

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Protokoll

Alle Mausexperimente wurden unter dem vom Hebrew University Institutional Animal Care and Use Committee genehmigten Protokoll MD-21-16429-5 durchgeführt. Darüber hinaus ist die Hebrew University von der Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care (AAALAC) zertifiziert.

1. Pflege der Zelllinie

HINWEIS: Die menschlichen Brustkrebs-Zelllinien (MCF-7, MDA-MB-468 und MDA-MB-231) wurden in diesem Protokoll verwendet.

  1. Kultivieren Sie alle Brustkrebszelllinien in Dulbeccos modifiziertem Eagle-Medium (DMEM), ergänzt mit 10% fetalem Rinderserum (FBS) und 1% Penicillin-Streptomycin bei 3....

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Ergebnisse

Wir erzeugten Brustkrebs-Zelllinien (MDA-MB-231, MCF-7 und MDA-MB-468), die GFP- und Luciferase-Vektoren exprimieren. Konkret wurde dies durch eine sequentielle Infektion erreicht. Zuerst wurden die Brustkrebszelllinien mit einem Lentivirus-Vektor infiziert, der fluoreszierendes GFP exprimierte. Die GFP-positiven Zellen (GFP+) wurden 2 Tage nach der Infektion sortiert (Abbildung 1A,B) und mit dem pLX304 Luciferase-V5-Vektor infiziert. Dann wurde Blasticidin verwen.......

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Diskussion

Tierversuche sind für die Krebsforschungobligatorisch 7,8,9, und in der Tat wurden viele Protokolle entwickelt 3,6,10,11,12,13,14. Die meisten dieser Studien bestimmten die biologische Wirkung jedoc.......

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Offenlegungen

Alle Autoren haben offengelegt, dass sie keine Interessenkonflikte haben.

Danksagungen

Wir danken den Mitgliedern des Y.D.S.-Labors. Wir danken dem Wohl Institute for Translational Medicine am Hadassah Medical Center, Jerusalem, für die Bereitstellung der Kleintierbildgebungsanlage. Diese Studie wurde durch den Research Career Development Award des Israel Cancer Research Fund unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
1,7 mL Eppendorf RöhrchenLifegeneLMCT1.7B-500
10 & Mikro; L SpitzenLifegeneLRT10
1000 µ L-SpitzenLifegeneLRT1000
15 mL RöhrchenLifegeneLTB15-500
200 µ L-SpitzenLifegeneLRT200
6-Well-ZellkulturplatteCOSTAR3516
96-Well-Platten SCHWARZFlachboden-Bar NaorBN30496
Automatisierte ZellzählerThermofisherA50298
BD FACSAria III SortiererBD
BD Mikrolanze 3 Nadeln 27 G (3/4'')BD302200
BD Plastipak Spritzen 1 mL x 120BD303172
Corning 100 mm x 20 mm Style DishCORNING430167
Corning 150 mm x 20 mm Style DishCORNING430599
Countess Zellzählkammer ObjektträgerThermofisherC10228
Dulbecco's modifiziertes Eagle's Medium (DMEM), hoher Glukosegehalt, kein GlutaminBiological Industries01-055-1A
Eclipse 80i MikroskopNikon
eppendorf Centrifuge 5810 RSigma AldrichEP5820740000
Fötales Rinderserum (FBS)Biological Industries04-127-1A
FUW GFPGeschenk aus dem Labor von Dr. Yossi Buganim (Hebräische Universität Jerusalem
)HEK293TGeschenk aus dem Labor von Dr. Lior Nissim (Hebräische Universität Jerusalem)
Isofluran, USP TerrellPiramalNDC 66794-01-25
IVIS-Spektrum In-vivo-BildgebungssystemPerkin Elmer124262
L-Glutamin-LösungBiologische Industrie03-020-1A
Lebendbild-SoftwarePerkinElmerBiolumineszenz Messung
MCF-7ATCCATCC HTB-22
MDA-MB-231ATCCATCC HTB-26
MDA-MB-468ATCCATCC HTB-132
PasteurpipettenNORMAX2430-475
PBSHylabsBP655/500D
pCMV-dR8.2-dvprAddgene#8455Zur Verfügung gestellt von David M. Sabatini' s lab (Whitehead Institute, Boston, USA)
pCMV-VSV-GAddgene#8454Bereitgestellt von David M. Sabatini' s lab (Whitehead institute, Boston, USA)
Penicillin-Streptomycin-LösungBiological Industries03-031-1B
Petrischale 90 mm (90x15)MINI PLAST820-090-01-017
Pipetten 10mlLifegeneLG-GSP010010S
Pipetten 25mlLifegeneLG-GSP010050S
Pipetten 5mlLifegeneLG-GSP010005S
pLX304 Luciferase-V5 BlastenplasmidAddgene#98580
PolybreneSigma Aldrich#107689
Prism 9GraphPad
ReagenzreservoireBar NaorBN20621STR200TC
SMZ18 StereomikroskopeNikon
NatriumchloridBio-Labor
SpritzenvorsatzfilterLifegeneLG-FPV403030S
Trypanblau 0,5%ige LösungBiologische Industrie03-102-1B
Trypsin EDTA Lösung B (0,25%), EDTA (0,05%)Biologische Industrie03-052-1a
VakuumfilterSOFRA LIFE SCIENCESPE-22-500
VirusolveDesinfektionsmittel
VivoGlo Luciferin, In Vivo GradePromegaP1043
X-tremeGENE HP DNA Transfection ReagenzSigma Aldrich#6366236001
190359400

Referenzen

  1. Waks, A. G., Winer, E. P. Breast cancer treatment: A review. JAMA. 321 (3), 288-300 (2019).
  2. Jin, X., Mu, P. Targeting breast cancer metastasis. Breast Cancer: Basic and Clinical Research. 9, Suppl 1 23-34 (2015).
  3. Saha, D., et al.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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