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Methodenartikel

Lichtgesteuerte Fermentationen für die mikrobielle Chemikalien- und Proteinproduktion

4.1K Aufrufe

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DOI:

10.3791/63269

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22. März 2022

 ,  , 

* These authors contributed equally

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Die optogenetische Kontrolle des mikrobiellen Stoffwechsels bietet eine flexible dynamische Kontrolle über Fermentationsprozesse. Das Protokoll zeigt hier, wie man blaulichtregulierte Fermentationen für die chemische und Proteinproduktion auf verschiedenen volumetrischen Skalen aufbaut.

Zusammenfassung

Mikrobielle Zellfabriken bieten eine nachhaltige Alternative zur Herstellung von Chemikalien und rekombinanten Proteinen aus nachwachsenden Rohstoffen. Die Überlastung eines Mikroorganismus mit genetischen Veränderungen kann jedoch die Fitness und Produktivität des Wirts verringern. Dieses Problem kann durch dynamische Kontrolle überwunden werden: induzierbare Expression von Enzymen und Signalwegen, typischerweise unter Verwendung von chemischen oder nährstoffbasierten Zusätzen, um das Zellwachstum und die Zellproduktion auszugleichen. Die Optogenetik bietet eine nicht-invasive, hochgradig abstimmbare und reversible Methode zur dynamischen Regulierung der Genexpression. Hier beschreiben wir, wie man lichtgesteuerte Fermentationen von technisch hergestellten Escherichia coli und Saccharomyces cerevisiae zur Herstellung von Chemikalien oder rekombinanten Proteinen aufbaut. Wir diskutieren, wie Licht zu ausgewählten Zeiten und Dosierungen angewendet werden kann, um mikrobielles Wachstum und Produktion für eine verbesserte Fermentationskontrolle und Produktivität zu entkoppeln, sowie die wichtigsten Optimierungsüberlegungen für beste Ergebnisse. Darüber hinaus beschreiben wir, wie Lichtsteuerungen für Bioreaktorexperimente im Labormaßstab implementiert werden können. Diese Protokolle erleichtern die Einführung optogenetischer Kontrollen in technisch hergestellten Mikroorganismen zur Verbesserung der Fermentationsleistung.

Einleitung

Die Optogenetik, die Steuerung biologischer Prozesse mit lichtempfindlichen Proteinen, bietet eine neue Strategie zur dynamischen Steuerung mikrobieller Fermentationen für die chemische und Proteinproduktion1,2. Die Belastung durch technische Stoffwechselwege und die Toxizität einiger Zwischenprodukte und Produkte beeinträchtigen häufig das Zellwachstum3. Solche Belastungen können zu einer schlechten Biomasseakkumulation und einer verminderten Produktivität führen3. Dieser Herausforderung kann begegnet werden, indem die Fermentationen zeitlich in eine Wachstums- ....

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Protokoll

1. Lichtgesteuerte chemische Produktion mit dem S. cerevisiae OptoINVRT7 Schaltkreis

  1. Dehnungsbau
    1. Erhalten Sie einen Stamm mit his3-Auxotrophie, da dieser Marker für die meisten vorhandenen OptoINVRT-Plasmide5 erforderlich ist. Wenn Sie eine optogenetische Regulation eines Gens anstreben, das in S. cerevisiae beheimatet ist, konstruieren Sie einen Stamm, bei dem jede endogene Kopie des Gens gelöscht wird.
    2. Linearisieren Sie das Plasmid, das die OptoINVRT7-Schaltung enthält, wie z. B. EZ-L4395, und integrieren Sie es mit Standard-Lithiumacetat-Transformationsmethoden in den....

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Ergebnisse

Die optogenetische Regulation des mikrobiellen Stoffwechsels wurde erfolgreich zur Herstellung einer Vielzahl von Produkten implementiert, darunter Biokraftstoffe, Massenchemikalien, Proteine und Naturstoffe5,6,7,12,13. Die meisten dieser Prozesse sind so konzipiert, dass das Zellwachstum im Licht stattfindet (wenn eine niedrige Zelldichte minimale Herausforde.......

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Diskussion

Dynamische Kontrolle wird seit langem angewendet, um die Ausbeute für metabolisches Engineering und rekombinante Proteinproduktion zu verbessern4. Verschiebungen in der enzymatischen Expression werden am häufigsten mit chemischen Induktoren wie IPTG21, Galactose22 und Tetracyclin23 durchgeführt, aber auch unter Verwendung von Prozessbedingungen wie Temperatur und pH-Wert vermittelt. Die optogenetische Kontrolle der Genexpressi.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben mehrere Patente für die in diesem Artikel beschriebenen optogenetischen Schaltkreise und Verfahren angemeldet.

Danksagungen

Diese Forschung wurde vom U.S. Department of Energy, Office of Science, Office of Biological and Environmental Research Award Number DE-SC0019363, dem NSF CAREER Award CBET-1751840, The Pew Charitable Trusts und dem Camille Dreyfus Teacher-Scholar Award unterstützt.

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Materialien

BP97235
Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
lichtgesteuerte chemische Produktion mit S. cerevisiae
24-Well-KulturplatteUSA ScientificCC7672-7524
Agar-PulverThermo Fisher Scientific303991049
AluminiumfolieReynoldsB004NG90YO
BioSpektrometer mit μ KüvetteEppendorf6135000923
Blau LED PanelHQRP884667106091218
EZ-L439 OptoINVRT7 PlasmidN/AN/ASiehe Referenz 1
GlukoseThermo Fisher Scientific501879892 (G8270-5KG)
MikrozentrifugeThermo Fisher Scientific75002403
MikrozentrifugenröhrchenUSA Scientific1615-5510
OrbitalschüttlerYamato Scientific AmericaSOU-300
PetrischaleCelltreat229656
PmeINew England BiolabsR0560L
QuantenmeterApogee InstrumentsMQ-510
Replica-BeschichtungsgerätThomas ScientificF37848-0000
Replica-BeschichtungspadsSunrise Science Products3005-012
SC-His-PulverSunrise Science Products1303-030
SC Komplettes PulverSunrise Science Products1459-100
Sterile SiegelfolieExcel ScientificSTR-SEAL-PLT
YPD-AgarplattenVWR100217-054
ZeocinThermo Fisher ScientificR25005<
E. coli
6X SDS Sample BufferCepham Life Sciences10502
12 % Acrylamid ProteingeleThermo FisherScientific NP0341BOX
24-Well-KulturplatteUSA ScientificCC7672-7524
AluminiumfolieReynoldsB004NG90YO
BioSpektrometer mit μ KüvetteEppendorf6135000923
Blau LED-PanelHQRP884667106091218
Coomassie Brilliant Blue G-250Thermo Fisher Scientific20279
ElektrophoresezelleBio-Rad1658004
Elektrophorese-NetzteilBio-Rad1645050
LB Bouillon (Miller)Fisher Scientific
MikrozentrifugeThermo Fisher Scientific75002403
MikrozentrifugenröhrchenUSA Scientific1615-5510
NaClThomas ScientificSX0425-1
OptoLAC PlasmideN/AN/ASiehe Referenz 2
OrbitalschüttlerYamato Scientific AmericaSOU-300
PetrischaleCelltreat229656
Quantum meterApogee InstrumentsMQ-510
SOC MediumThermo Fisher Scientific15544034
ThermomixerEppendorf5382000015
Tris baseFisher ScientificBP1521
Dreiphasige Fermentation mit S. cerevisiae
Gleiche Materialien wie das Protokoll "Light-controlled chemical production using S. cerevisiae" sowie die folgenden:
EZ-L580 OptoAMP4 PlasmidN/AN/ASiehe Referenz 10
Chemische Herstellung in einem lichtgesteuerten Bioreaktor
AluminiumfolieReynoldsB004NG90YO
AntifoamSigma-AldrichA8311
Bioreaktor mit KontrollstationEppendorfB120110001
BioSpektrometer mit μ KüvetteEppendorf6135000923
BleachVWR Scientific89501-620 (CS)
Blaue LED-PlatteHQRP884667106091218
BPT SchlauchFisher Scientific14-170-15
GlukoseThermo Fisher Scientific501879892 (G8270-5KG)
Salzsäure (HCl)Fisher Scientific7647-01-0
M9 Minimale SalzeThermo Fisher ScientificA1374401
MikrozentrifugeThermo Fisher Scientific75002403
MikrozentrifugenröhrchenUSA Scientific1615-5510
NH4OH LösungSigma-AldrichI0503-1VL
OrbitalschüttlerYamato Scientific AmericaSOU-300
QuantenmeterApogee InstrumentsMQ-510
SC Komplettes PulverSunrise Science Products1459-100
strong>Light-kontrollierte Proteinproduktion mit

Referenzen

  1. Figueroa, D., Rojas, V., Romero, A., Larrondo, L. F., Salinas, F. The rise and shine of yeast optogenetics. Yeast. 38 (2), 131-146 (2021).
  2. Pouzet, S., et al. The promise of optogenetics for bioproduction: Dynamic control strategies and scale-up instruments. Bioengi....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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