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Methodenartikel

Pneumatisch angetriebene mikrofluidische Plattform für die Mikropartikelkonzentration

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DOI:

10.3791/63301

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1. Februar 2022

 ,  , 
1Department of Digital Anti-Aging Health Care, Inje University, 2Micro device Lab Co., Ltd, 3Department of Biomedical Engineering, Inje University

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Das vorliegende Protokoll beschreibt eine pneumatische mikrofluidische Plattform, die für eine effiziente Mikropartikelkonzentration verwendet werden kann.

Zusammenfassung

Der vorliegende Artikel stellt ein Verfahren zur Herstellung und zum Betrieb eines pneumatischen Ventils zur Steuerung der Partikelkonzentration unter Verwendung einer mikrofluidischen Plattform vor. Diese Plattform verfügt über ein dreidimensionales (3D) Netzwerk mit gekrümmten Fluidkanälen und drei pneumatischen Ventilen, die Netzwerke, Kanäle und Räume durch Duplexreplikation mit Polydimethylsiloxan (PDMS) erzeugen. Das Gerät arbeitet auf der Grundlage des Einschwingverhaltens einer Flüssigkeitsdurchflussrate, die von einem pneumatischen Ventil in der folgenden Reihenfolge gesteuert wird: (1) Probenbeladung, (2) Probenblockierung, (3) Probenkonzentration und (4) Probenfreigabe. Die Partikel werden durch dünne Membranschichtverformung der Siebventilplatte (Vs) blockiert und reichern sich im gekrümmten mikrofluidischen Kanal an. Das Arbeitsfluid wird durch die Betätigung von zwei Ein-/Aus-Ventilen ausgetragen. Als Ergebnis der Operation wurden alle Partikel verschiedener Vergrößerungen erfolgreich abgefangen und ausgebremst. Wenn diese Technologie angewendet wird, können der Betriebsdruck, die für die Konzentration erforderliche Zeit und die Konzentrationsrate je nach Geräteabmessungen und Partikelgrößenvergrößerung variieren.

Einleitung

Aufgrund der Bedeutung der biologischen Analyse werden mikrofluidische und biomedizinische mikroelektromechanische Systeme (BioMEMS)1,2 verwendet, um Geräte für die Reinigung und Sammlung von Mikromaterialien zu entwickeln und zu untersuchen2,3,4. Die Partikelabscheidung wird als aktiv oder passiv kategorisiert. Aktive Fallen wurden für externe dielektrische5, magnetophorische6, auditive7, visuelle8 oder thermische9-Kräfte verwendet, die auf unabhängige Partikel wirken und eine präzise Steuerung ihrer Bewegungen ermöglichen. Es ist jedoch eine Wechselwirkung zwischen dem Teilchen und der äußeren Kraft erforderlich; Somit ist der Durchsatz gering. In mikrofluidischen Systemen ist die Kontrolle der Durchflussrate sehr wichtig, da die äußeren Kräfte auf die Zielpartikel übertragen werden.

Im Allgemeinen haben passive mikrofluidische Bauelemente Mikrosäulen in Mikrokanälen10,11. Partikel werden durch Wechselwirkung mit einer strömenden Flüssigkeit gefiltert, und diese Geräte sind einfach zu entwerfen und kostengünstig herzustellen. Sie verursachen jedoch Partikelverstopfungen in Mikrosäulen, so dass komplexere Geräte entwickelt wurden, um eine Verstopfung von Partikelnzu verhindern 12. Mikrofluidische Bauelemente mit komplexen Strukturen eignen sich im Allgemeinen für die Verwaltung einer begrenzten Anzahl von Partikeln 13,14,15,16,17,18.

Dieser Artikel beschreibt ein Verfahren zur Herstellung und zum Betrieb einer pneumatisch angetriebenen mikrofluidischen Plattform für große Partikelkonzentrationen, die die oben genannten Mängel18 überwindet. Diese Plattform kann Partikel durch Verformung und Betätigung der dünnen Membranschicht der Siebventilplatte (Vs), die sich in gekrümmten mikrofluidischen Kanälen ansammelt, blockieren und konzentrieren. Partikel sammeln sich in gekrümmten mikrofluidischen Kanälen an, und die konzentrierten Partikel können sich trennen, indem sie das Arbeitsfluid über die Betätigung von zwei Ein- / Aus-Ventilen der PDMS-Dichtungenablassen 18. Diese Methode ermöglicht es, eine begrenzte Anzahl von Partikeln zu verarbeiten oder eine große Anzahl kleiner Partikel zu konzentrieren. Betriebsbedingungen wie die Größe der Durchflussrate und des Druckluftdrucks können unerwünschte Zellschäden verhindern und die Effizienz des Zellfangs erhöhen.

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Protokoll

1. Design der mikrofluidischen Plattform für die Partikelkonzentration

  1. Entwerfen Sie die pneumatische mikrofluidische Plattform, bestehend aus einem pneumatischen Ventil für den Flüssigkeitsfluss im 3D-Strömungsnetzwerk und drei pneumatischen Ventilen für den Sieb- (Vs), Fluid- (Vf) und Partikel- (Vp) Ventilbetrieb (Abbildung 1).
    HINWEIS: Vs-Blöcke konzentrieren Partikel aus der Flüssigkeit, und Vf und Vp ermöglichen die Freisetzung von Flüssigkeit und Partikeln nach der Konzentration. Drei pneumatische Anschlüsse liefern Druckluft aus der Flüssigkeits-/pneumatischen Versorgungsschicht (normalerweise offen) und dem pneumatischen Ventillichtauslass zur Betätigung des Ventils. Das mikrofluidische Kanalnetzwerk wird mit einem CAD-Programm18,19 ausgelegt.
  2. Entwerfen Sie den Kanal als pneumatische Versorgungsschicht und als 3D-Kanalnetzwerkschicht (Abbildung 2).
    HINWEIS: Das Fluidnetzwerk ist mit den gekrümmten Kanälen im vorderen Teil und der rechteckigen Kammer im hinteren Bereich verbunden. Vs blockieren den Einlass, und Partikel sammeln sich im Sammelbereich des gekrümmten Flüssigkeitskanals an. Partikelfreie Flüssigkeiten (partikelfreie Flüssigkeiten) werden durch den Qf-Auslass und die konzentrierten Partikel durch den Qp-Auslass austreten (Abbildung 3).
  3. Bereiten Sie gemäß den oben genannten Bedingungen vier Arten von SU-8-Formen vor.
    HINWEIS: Die vier Formen enthalten eine Form, mit der das Ventil über Pneumatik gesteuert werden kann, zwei Formen, die Flüssigkeitskanäle erzeugen, und eine saubere Form ohne Form (Abbildung 4 und Tabelle 1). Die vier genannten Arten von Formen werden mit Standard-Photolithographie-Verfahren hergestellt. Dieser Formenbau besteht aus einer SU-8-Form auf einem Siliziumwafer gemäß den zuvor veröffentlichten Berichten18,19. Abbildung 5 zeigt den Gerätechip.

2. Herstellung der mikrofluidischen Plattform zur Partikelkonzentration

HINWEIS: Abbildung 6 zeigt die Herstellung einer mikrofluidischen Plattform, die Partikel konzentriert.

  1. Replizieren Sie die PDMS-Schicht mit einem vorbereiteten pneumatischen Ventilkanal SU-8 (Schritt 1.3) zur pneumatischen Steuerung des Ventils.
    1. Gießen Sie 10 ml flüssiges PDMS und 1 ml Härter (siehe Materialtabelle) in eine vorbereitete pneumatische Ventilkanalform (Schritt 1.3) und aktivieren Sie sie bei 90 °C für 30 min.
    2. Nachdem die PDMS-Strukturen ausgehärtet sind, trennen Sie die SU-8-Form von Schritt 2.1.1.
    3. Mit einer 1,5-mm-Punktion (siehe Materialtabelle) werden drei 1,5-mm-Pneumatikanschlüsse (Vs, Vf und Vp) in den gemäß Schritt 2.1.2 hergestellten pneumatischen Ventilkanal gestanzt (siehe Materialtabelle).
    4. Gießen Sie 10 ml flüssiges PDMS und 1 ml Härter in eine vorbereitete, saubere SU-8-Form, die in Schritt 1.3 vorbereitet wurde, und schleudern Sie sie bei 1.500 U / min für 15 s mit einem Spin-Coater (siehe Materialtabelle). Dann bei 90 °C für 30 min wärmeaktivieren.
    5. Nachdem die PDMS-Strukturen ausgehärtet sind, trennen Sie die SU-8-Form von Schritt 2.1.4.
      HINWEIS: Die Ventilmembranschicht steuert den Flüssigkeitsfluss entsprechend dem pneumatischen Druck.
    6. Atmosphärisches Plasma (siehe Materialtabelle) werden mit den in den Schritten 2.1.3 und 2.1.5 für 20 s hergestellten PDMS-Strukturen behandelt.
    7. Direkt plasmabehandelte PDMS-Strukturen aus Schritt 2.1.6 entsprechend der Kanalstruktur durch Überprüfung mit einem Mikroskop ausrichten.
    8. Die in Schritt 2.1.7 vorbereiteten ausgerichteten PDMS-Strukturen werden durch Erhitzen auf 90 °C 30 min lang verklebt.
    9. Stanzen Sie ein Loch mit einem Durchmesser von 1,5 mm in den Flüssigkeitskanaleinlass (Qfp) und die Flüssigkeitskanalauslässe (Qf und Qp) innerhalb des pneumatischen Kanalteils, mit dem die dünne Membranschicht verbunden ist, mit einer Punktion von 1,5 mm.
  2. Replizieren Sie beide Seiten der PDMS-Schicht mit zwei SU-8-Formen, um einen mikrofluidischen Kanal zu erzeugen. Verwenden Sie eine gekrümmte und rechteckige mikrofluidische Kanalform auf der Vorderseite und eine mikrofluidische Verbindungskanalform auf der Rückseite.
    1. Gießen Sie 10 ml flüssiges PDMS und 1 ml Härter in die gekrümmte und rechteckige mikrofluidische Kanalform und drehen Sie sie bei 1.200 U / min für 15 s. Erstellen Sie dann Formen für die gekrümmte Fluidkammer und die Fluidkanäle durch thermische Aktivierung bei 90 °C für 30 min (Abbildung 6A).
    2. Trennen Sie die PDMS-Schicht, auf der der mikrofluidische Kanal gebildet wird, und machen Sie dann eine wärmeaktivierte Form, die die versiegelte Entlüftungswand bedeckt, indem Sie sich an den Glaswafer binden, indem Sie atmosphärisches Plasma für 20 s behandeln (Abbildung 6B).
    3. Gießen Sie 3 ml flüssiges PDMS in den Verbindungskanal der SU-8-Form (Abbildung 6C).
    4. Die in Schritt 2.2.2 hergestellte Struktur wird mit der Verbindungskanalform in flüssigem PDMS auf der mikrofluidischen Verbindungskanalform angeordnet und die überlagerte Struktur bei 130 °C für 30 min getrocknet (Abbildung 6D).
      HINWEIS: Beim Aushärten der hinteren Struktur wird die in Schritt 2.2.2 hergestellte PDMS-Form durch den thermischen Druck der Luftschicht aufgeblasen, und die verformte PDMS-Schicht wird thermisch aktiviert (Abbildung 6E)16.
    5. Entfernen Sie nach dem Aushärten die vordere SU-8-Form von der mikrofluidischen Kanalnetzwerkschicht und ziehen Sie die hintere PDMS-Form vorsichtig ab (Abbildung 6F).
      HINWEIS: Die 3D-Fluidik-Netzwerkschicht ermöglicht die Erstellung einer vorderen gekrümmten Fluidkammer und mikrofluidischer Kanäle.
    6. Gießen Sie 10 ml flüssiges PDMS und 1 ml Härter in eine saubere SU-8-Form. Dann bei 90 °C für 30 min wärmeaktivieren.
    7. Nachdem die PDMS-Strukturen ausgehärtet sind, trennen Sie die SU-8-Form.
      HINWEIS: In diesem Schritt wird die zusätzliche Dichtschicht erstellt.
    8. Das atmosphärische Plasma wird mit PDMS-Strukturen behandelt, die in den Schritten 2.2.3 und 2.2.7 für 20 s hergestellt wurden.
    9. Richten Sie direkt plasmabehandelte PDMS-Strukturen entsprechend der Kanalstruktur aus, indem Sie dies mit einem Mikroskop überprüfen.
    10. Verkleben Sie die ausgerichteten PDMS-Strukturen durch Erhitzen bei 90 °C für 30 min.
  3. Die in den Schritten 2.1 und 2.2 vorbereiteten PDMS-Strukturen werden entsprechend der Kanalstruktur ausgerichtet und durch Behandlung von atmosphärischem Plasma für 20 s gebunden.

3. Einrichten des Geräts

HINWEIS: Abbildung 7 zeigt die Herstellung einer mikrofluidischen Plattform, die Partikel konzentriert.

  1. Füllen Sie den mikrofluidischen Kanal manuell mit blasenfreiem demineralisiertem Wasser mit einer 10-ml-Spritze.
  2. Um die P_Qfp und die drei pneumatischen Ventile (P_Vs, P_Vf und P_Vp) zu steuern, die den Mikroperlenfluss steuern, setzen Sie einen Präzisionsdruckregler mit vier oder mehr Ausgangskanälen (siehe Materialtabelle) für das Arbeitsfluid (Qfp) in die mikrofluidische Plattform ein.
    HINWEIS: Ein Präzisionsdruckregler mit vier Ausgangskanälen kann durch mehrere Präzisionsdruckregler ersetzt werden. In diesem Experiment betrug der Betriebsdruck von P_Qfp 10 kPa, P_Vs 15 kPa und P_Vf und P_Vp jeweils 18 kPa (Abbildung 8 und Tabelle 2). Abbildung 8 zeigt den Arbeitsflüssigkeitsdurchfluss im Laufe der Zeit, da Partikel von der mikrofluidischen Plattform mit P_Vs von 15 kPa konzentriert werden, und Tabelle 2 zeigt die Betätigungsergebnisse entsprechend den pneumatischen Ventilen.
  3. Herstellen von Carboxylpolystyrol-Testpartikeln unterschiedlicher Größe in destilliertem Wasser (siehe Materialtabelle).
    HINWEIS: Die in diesem Experiment verwendeten Partikelgrößen waren 24,9, 8,49 und 4,16 μm; Je nach Druck der P_Vs können Partikel unterschiedlicher Größe verwendet werden.
  4. Um die Durchflussrate der Arbeitsflüssigkeit zu steuern, füllen Sie eine Glasflasche halb voll mit Wasser (Arbeitsflüssigkeit) und verbinden Sie den Glasflaschenverschluss mit dem Steuerungsausgangskanal und dem Mikroventil.
    HINWEIS: Schließen Sie einen Schlauch an das Mikroventil an, um Druckluft vom Controller zu empfangen, und den anderen Schlauch, um Wasser zu injizieren.
  5. Beobachten Sie den Plattformbetrieb durch ein inverses Mikroskop für alle Plattformoperationen und messen Sie den Betriebsdurchfluss über die Zeit am Auslass mit einem Flüssigkeitsdurchflussmesser (siehe Materialtabelle).

4. Bedienung des Gerätes

  1. Injizieren Sie das Partikel-/Flüssigkeitsgemisch unter Druck am Einlass (Qfp) mit Vp (Abbildung 9A).
    HINWEIS: Der Fluss von Partikeln und sauberer Flüssigkeit aus dem Auslass durch die miteinander verbundenen Kanäle wird über Vp bzw. Vf gesteuert (Tabelle 2).
  2. Üben Sie Druck auf Vs bei 15 kPa und Vp bei 18 kPa aus, um das Ventil zu betätigen.
    HINWEIS: Zu diesem Zeitpunkt ist die Membran verformt, die Partikel der Flüssigkeit Qfp werden im Kontaktraum zwischen dem gekrümmten Flüssigkeitskanal und dem gekrümmten Flüssigkeitsausleger blockiert, und die unerwünschte Qfp-Flüssigkeit wird durch die offene Qf freigesetzt (Abbildung 9B, C).
  3. Wenn die Partikel konzentriert sind, üben Sie Druck nur auf Vf aus.
    HINWEIS: Zu diesem Zeitpunkt, wenn nur Druck auf Vf ausgeübt wird, werden die verstopften Partikel durch Qp freigesetzt (Abbildung 9D).

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Ergebnisse

Abbildung 8 zeigt die Durchflussrate der Fluidraten für einen vierstufigen Plattformbetrieb, wie in Tabelle 2 erwähnt. Die erste Stufe ist der Ladezustand (ein Zustand). Die Plattform wurde mit Flüssigkeit versorgt, wobei alle Ventile geöffnet waren, und das Arbeitsfluid (Qf) und die Partikel (Qp) sind fast identisch, da das mikrofluidische Kanalnetzwerk strukturelle Symmetrie aufweist. In der zweiten Stufe (b-Zustand) wurde Druckluft nach Vs transportiert, um die Partikel z...

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Diskussion

Diese Plattform bietet eine einfache Möglichkeit, Partikel unterschiedlicher Größe zu reinigen und zu konzentrieren. Partikel werden durch pneumatische Ventilsteuerung angesammelt und freigesetzt, und es wird kein Verstopfen beobachtet, da es keine passive Struktur gibt. Mit diesem Gerät wird die Konzentration von Partikeln dreier Größen dargestellt. Der Betriebsdruck, die für die Konzentration erforderliche Zeit und die Rate können jedoch je nach Geräteabmessungen, Partikelgrößenvergrößerung und Druck bei Vs

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Offenlegungen

Die Autoren haben keine Interessenkonflikte offenzulegen.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde durch den Zuschuss der National Research Foundation of Korea (NRF) unterstützt, der von der koreanischen Regierung (Ministerium für Wissenschaft und IKT) finanziert wurde. (Nr. NRF-2021R1A2C1011380).

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
1,5 mm PunktionSelbstproduktionSelbstproduktionDiese Punktion wurde vorgenommen, indem ein Formenbauer auf Basis des Miltex® Produkt für Biopsie-Stanze mit Kolben (15110-15).
4 Zoll Silizium Wafer / SU-8 Form4science29-03573-014 Zoll (100) Ptype Silizium Wafer / SU-8 Form
Carboxyl Polystyrol vernetzte Partikel (24,9 μ m)SpherotechCPX-200-10Konzentrierte Bead-Probe1
DurchflussmesserSensirionSLI-1000Durchflussmessung
HochgeschwindigkeitskameraPhotronFASTCAM MiniBeobachtung der Konzentration
HeizplatteAls eineHI-1000Heizplatte zum Aushärten von Flüssigkeit PDMS
KOVAX-SYRINGE 10 mL/SpritzeKoreavaccine22G-10MLFüllen Sie den mikrofluidischen Kanal mit blasenfreiem, demineralisiertem Wasser.
Labor Conona Behandler/Atmosphärisches PlasmaElectro-TechnicBD-20ACChip-Bonding/Atmosphärisches Plasma
Flüssiges Polydimethylsiloxan, PDMSDow Corning Inc.Sylgard 184Komponenten des Chip-Mikroskops
OlympusIX-81Beobachtung der Konzentration
PEEK-RöhrenSAINT-GOBAIN PPL CORP.AAD04103Partikel injizieren oder sammeln
Polystyrolpartikel (4,16 μ m)SpherotechPP-40-10Konzentrierte Bead-Probe3
Polystyrolpartikel (8,49 μ m)SpherotechPP-100-10Konzentrierte Bead-Probe2
Druckregler/μ fluconAMEDμ fluconSteuerung des Luftdrucks
Der SchleudercoateriNexusACE-200verteilt das flüssige PDMS auf das SU-8-Werkzeug

Referenzen

  1. Whitesides, G. M. The origins and the future of microfluidics. Nature. 442 (7107), 368-373 (2006).
  2. Desitter, I., et al. A new device for rapid isolation by size and characterization of rare circulating tumor cells. Anticancer Research. 31 (2), 427-441 (2011).
  3. Hayes, D. F., et al. Circulating tumor cells at each follow-up time point during therapy of metastatic breast cancer patients predict progression-free and overall survival. Clinical Cancer Research. 12 (14), 4218-4224 (2016).
  4. Choi, S., Park, J. K. Microfluidic system for dielectrophoretic separation based on a trapezoidal electrode array. Lab on a Chip. 5 (10), 1161-1167 (2005).
  5. Jung, Y., et al. Six-stage cascade paramagnetic mode magnetophoretic separation system for human blood samples. Biomedical Microdevices. 12 (4), 637-645 (2010).
  6. Li, P., et al. Acoustic separation of circulating tumor cells. Proceedings of the National Academy of Sciences. 112 (16), 4970-4975 (2015).
  7. Lin, Y. H., Lee, G. B. Optically induced flow cytometry for continuous microparticle counting and sorting. Biosensors and Bioelectronics. 24 (4), 572-578 (2008).
  8. Gramotnev, D. K., et al. Thermal tweezers for surface manipulation with nanoscale resolution. Applied Physics Letters. 90 (5), 054108(2007).
  9. Huang, L. R., et al. Continuous particle separation through deterministic lateral displacement. Science. 304 (5673), 987-990 (2004).
  10. Yin, D., et al. Multi-stage particle separation based on microstructure filtration and dielectrophoresis. Micromachines. 10 (2), 103(2019).
  11. Yoon, Y., et al. Clogging-free microfluidics for continuous size-based separation of microparticles. Scientific Reports. 6 (1), 1-8 (2016).
  12. Alvankarian, J., Majlis, B. Y. Tunable microfluidic devices for hydrodynamic fractionation of cells and beads: a review. Sensors. 15 (11), 29685-29701 (2015).
  13. Irimia, D., Toner, M. Cell handling using microstructured membranes. Lab on a Chip. 6 (3), 345-352 (2006).
  14. Huang, S. B., et al. A tunable micro filter modulated by pneumatic pressure for cell separation. Sensors and Actuators B: Chemical. 142 (1), 389-399 (2009).
  15. Chang, Y. H., et al. A tunable microfluidic-based filter modulated by pneumatic pressure for separation of blood cells. Microfluidics and Nanofluidics. 12 (1-4), 85-94 (2012).
  16. Oh, C. K., et al. Fabrication of pneumatic valves with spherical dome-shape fluid chambers. Microfluidics and Nanofluidics. 19 (5), 1091-1099 (2015).
  17. Liu, W., et al. Dynamic trapping and high-throughput patterning of cells using pneumatic microstructures in an integrated microfluidic device. Lab on a Chip. 12 (9), 1702-1709 (2012).
  18. Jang, J. H., Jeong, O. C. Fabrication of a pneumatic microparticle concentrator. Micromachines. 11 (1), 40(2020).
  19. McDonald, J. C., et al. Poly(dimethylsiloxane) as a material for fabricating microfluidic device. Accounts of Chemical Research. 35 (7), 491-499 (2002).
  20. Brivio, M., et al. A MALDI-chip integrated system with a monitoring window. Lab on a Chip. 5 (4), 378-381 (2005).
  21. Jeong, O. C., Konishi, S. The self-generated peristaltic motion of cascaded pneumatic actuators for micro pumps. Journal of Micromechanics and Microengineering. 18 (8), 085017(2008).
  22. Taff, B. M., Voldman, J. A scalable addressable positive dielectrophoretic cell-sorting array. Analytical Chemistry. 77 (24), 7976-7983 (2005).
  23. Pamme, N., et al. On-chip free-flow magnetophoresis: Separation and detection of mixtures of magnetic particles in continuous flow. Journal of Magnetism and Magnetic Materials. 307 (2), 237-244 (2006).
  24. Harris, N. R., et al. Performance of a micro-engineered ultrasonic particle manipulator. Sensors and Actuators B: Chemical. 111, 481-486 (2005).
  25. Yoon, Y., et al. Clogging-free microfluidics for continuous size-based separation of microparticles. Scientific Reports. 6 (1), 1-18 (2016).
  26. Beattie, W., et al. Clog-free cell filtration using resettable cell traps. Lab on a Chip. 14 (15), 2657-2665 (2014).
  27. Cheng, Y., et al. A bubble- and clogging-free microfluidic particle separation platform with multi-filtration. Lab on a Chip. 16 (23), 4517-4526 (2016).

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