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Methodenartikel

Isolierung von Mitochondrien aus der Skelettmuskulatur der Maus für respirometrische Assays

5.8K Ansichten

DOI:

10.3791/63336

10. Februar 2022

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier beschreiben wir eine detaillierte Methode zur Isolierung der Mitochondrien aus der Skelettmuskulatur der Maus und die anschließende Analyse der Atmung mittels Oxygen Consumption Rate (OCR) unter Verwendung von mikroplattenbasierten respirometrischen Assays. Diese Pipeline kann angewendet werden, um die Auswirkungen mehrerer umweltbedingter oder genetischer Eingriffe auf den mitochondrialen Stoffwechsel zu untersuchen.

Zusammenfassung

Der größte Teil der Energie der Zelle wird durch den Abbau von Glukose, Fettsäuren und Aminosäuren über verschiedene Wege gewonnen, die auf dem mitochondrialen oxidativen Phosphorylierungssystem (OXPHOS) zusammenlaufen, das als Reaktion auf zelluläre Anforderungen reguliert wird. Das Lipidmolekül Coenzym Q (CoQ) ist in diesem Prozess essentiell, indem es Elektronen durch konstante Oxidations- / Reduktionszyklen in den Komplex III in der Elektronentransportkette (ETC) überträgt. Der Zustand der Mitochondrien und letztendlich die Zellgesundheit können durch Messung des ETC-Sauerstoffverbrauchs mithilfe von respirometrischen Assays beurteilt werden. Diese Studien werden typischerweise in etablierten oder primären Zelllinien durchgeführt, die mehrere Tage lang kultiviert wurden. In beiden Fällen können die erhaltenen Atmungsparameter von den normalen physiologischen Bedingungen in einem bestimmten Organ oder Gewebe abgewichen sein.

Darüber hinaus behindern die intrinsischen Eigenschaften von kultivierten Einzelfasern, die aus der Skelettmuskulatur isoliert wurden, diese Art der Analyse. Dieses Papier stellt ein aktualisiertes und detailliertes Protokoll für die Analyse der Atmung in frisch isolierten Mitochondrien aus der Skelettmuskulatur der Maus vor. Wir bieten auch Lösungen für potenzielle Probleme, die in jedem Schritt des Prozesses auftreten können. Die hier vorgestellte Methode könnte angewendet werden, um Sauerstoffverbrauchsraten in verschiedenen transgenen Mausmodellen zu vergleichen und die mitochondriale Reaktion auf medikamentöse Behandlungen oder andere Faktoren wie Altern oder Geschlecht zu untersuchen. Dies ist eine praktikable Methode, um auf entscheidende Fragen zum mitochondrialen bioenergetischen Stoffwechsel und zur Regulation zu antworten.

Einleitung

Mitochondrien sind die primären Stoffwechselorganellen in der Zelle1. Diese spezialisierten membranumschlossenen Organellen verwenden Nährstoffmoleküle, um Energie in Form von Adenosintriphosphat (ATP) von OXPHOS zu erzeugen. Dieser Prozess beruht auf dem Transfer von Elektronen aus Donormolekülen in einer Reihe von Redoxreaktionen im ETC2. CoQ ist das einzige redoxaktive Lipid, das endogen in allen Zellmembranen und zirkulierenden Lipoproteinen produziert wird und eine antioxidative Funktion zeigt3. Es ist ein wesentlicher Bestandteil des ETC und überträgt Elektronen vom NADH-abhängigen Komplex I....

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Protokoll

Mausgehäuse und Gewebeentnahme wurden unter Verwendung von Protokollen durchgeführt, die von der Ethikkommission der Universidad Pablo de Olavide (Sevilla, Spanien; Protokolle 24/04/2018/056 und 12/03/2021/033) in Übereinstimmung mit dem spanischen Königlichen Dekret 53/2013, der europäischen Richtlinie 2010/63/EU und anderen relevanten Richtlinien genehmigt wurden.

1. Vorbereitung von Beständen, Puffern und Reagenzien für die Atmungstests

  1. Bereiten Sie die folgenden Lagerlösungen vor, die monatelang bei der angegebenen Temperatur gelagert werden können. Verwenden Sie in allen Fällen hochreines H2O.
      ....

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Ergebnisse

Das hier vorgestellte Protokoll ermöglicht die In-vivo-Analyse der mitochondrialen Atmung durch die Isolierung von Mitochondrien aus der Skelettmuskulatur der Maus. Ein Überblick über die Methode ist in Abbildung 1 dargestellt. Nach der Sezierung der Skelettmuskulatur von den Hinterbeinen (Abbildung 2) werden die Gewebe homogenisiert und die Mitochondrien unter isotonischen Bedingungen durch serielle Zentrifugationen gereinigt. Die Reinheit der verschie.......

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Diskussion

Alle Methoden, die zur Untersuchung der mitochondrialen Atmung verwendet werden, haben ihre Grenzen; Daher ist es entscheidend, die Methode auszuwählen, die am besten zu einer bestimmten experimentellen Fragestellung passt. Diese Arbeit bietet ein aktualisiertes und detailliertes Protokoll zur Isolierung von Mitochondrien aus der Skelettmuskulatur der Maus, um verschiedene Atemassays zur Untersuchung der mitochondrialen Funktion durchzuführen. Tatsächlich ist die Untersuchung der mitochondrialen Bioenergetik in isolierte.......

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Offenlegungen

Die Autoren erklären, dass sie keine Interessenkonflikte offenlegen müssen.

Danksagungen

Wir danken Juan J. Tena für den Einsatz des Homogenisators und der CABD Proteomics and Animal Husbandry Einrichtungen für die technische Unterstützung. Diese Arbeit wurde vom spanischen Ministerium für Bildung, Kultur und Sport durch ein Stipendium FPU16/03264 an J.D.H.C., die Association Française contre les Myopathies (AFM) durch Fellowship Grant #22450 an C.V.-G., ein Institutional Grant MDM-2016-0687 (Maria de Maeztu Excellence Unit, Department of Gene Regulation and Morphogenesis at CABD) und BFU2017-83150-P an J.J.C unterstützt. Der Junta de Andalucía-Zuschuss P18-RT-4572, das RENDER-Förderprogramm der Europäischen Union und das spanische Ministerium für Wissens....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
ADPSigmaA5285Aktie bei -20 ° C
AKT AntikörperCell Signaling TechnologyC67E7Kaninchen (Wirtsspezies)
Anti-Ziege HRPSigma401504Kaninchen (Wirtsspezies)
Anti-Maus HRPCell Signaling#7076Pferd (Wirtsspezies)
Antimycin ASigmaA8674Bestand bei -20 ° C
anti-Rabbit HRPCell Signaling#7074Ziege (Wirtsspezies)
AscorbinsäureSigmaA5960Bestand bei RT
Bactin-AntikörperSigmaMBS4-48085Ziege (Wirtsspezies)
Bio-Rad Protein Assay Kit IIBio-Rad5000002Es enthält 5x Bradford-Reagenz und BSA mit bekannter Konzentration für die Standardkurve
BSA, Fraktion V, FettsäurefreiesCalbiochem126575Lager bei 4 ° C
C RöhrchenMiltenyi Biotec130-093-237Purpurdeckel
Calnexin-AntikörperThermoFisherMA3-027Maus (Wirtsspezies)
D-mannitolSigmaM4125Bestand bei RT
EDTABDH280254DBestand bei 4 ° C
EGTASigmaE-4378Bestand bei RT
FCCPSigmaC2920Bestand bei -20 ° C
gentleMACS DissoziatorMiltenyi Biotec130-093-235Homogenisator
HEPESSigmaH3375Bestand bei RT
HSP70 AntikörperProteintech10995-1-APKaninchen (Wirtsspezies)
LDH-A AntikörperSanta Cruz BiotechnologieSC27230Ziege (Wirtsart)
MagnesiumchloridChemCruzsc-255260ALager bei RT
ApfelsäureSigmaP1645Bestand bei RT
Mikroplatten-SpektralphotometerBMG LABTECH GmbHPOLARstar OMEGA S/N 415-0292Bestand bei RT
Milli-Q WasserMillipore SystemF7HA17757AReinstwasser
mtTFA AntikörperSanta Cruz BiotechnologieSC23588Ziege (Wirtsspezies)
Na+/K+-ATPase α 1 AntikörperNovus BiologicalsNB300-14755Maus (Wirtsspezies)
OligomycinSigmaO4876Lagerbestand bei -20 ° C
Palmitoyl-L-CarnitinSigmaP1645Lagerbestand bei -20 ° C
PBS TablettenSigmaP4417-100TAB1x Lagerbestand bei RT
KaliumdihydrogenphosphatChemCruzsc-203211Lagerbestand bei RT
KaliumhydroxidSigma60377Lagerbestand bei RT
BrenztraubensäureSigma107360Lagerbestand bei 4 ° C
RotenonSigmaR8875Bestand bei -20 ° C
Seahorse XF24 Mitochondrienfluss-AnalysatorAgilent Technologies420179XFe24-Modell
Seahorse XFe24 FluxPak miniAgilent Technologies102342-100Das Kit enthält Kartuschen, Mikrotiterplatten und Kalibrierlösung
SuccinatSigmaS7626Bestand bei RT
SaccharoseSigmaS9378Bestand bei RT
TIMM23 AntikörperAbcamab230253Kaninchen (Wirtsart)
TMPDSigmaT7394Lagerbestand bei -20 ° C
TOMM20 AntikörperAbcamab56783Maus (Wirtsspezies)
VDAC AntikörperAbcamab15895Kaninchen (Wirtsspezies)

Referenzen

  1. Spinelli, J. B., Haigis, M. C. The multifaceted contributions of mitochondria to cellular metabolism. Nature Cell Biology. 20 (7), 745-754 (2018).
  2. Alberts, B., et al. The mitochondrion. Molecular Biology of the Cell, 4th edition. , Garland Science. New York. (2002).
  3. Turunen, M.....

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Nachdrucke und Genehmigungen

Schlagwörter

MitochondrienisolationSauerstoffverbrauchElektronentransportkettemitochondriale Respirationserielle ZentrifugationProteinquantifizierungBlue Native Elektrophoresemitochondriale Membranmarker