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Wenn das Auge einer anhaltenden vollflächigen visuellen Bewegung ausgesetzt ist, entsteht in Richtung der visuellen Bewegung ein deutliches Muster aus schnellen und gleichmäßigen Augenbewegungen und Kopfbewegungen mit geringer Beschleunigung, das als optokinetischer Nystagmus (OKN) bezeichnet wird1,2. Der neurologische Signalweg der OKN verläuft von der Netzhaut zum lateralen Genikulatkörper, zum Okzipitallappen und zum Kleinhirnflocken und verbindet sich mit den okulären Motoneuronen3. Neuronale Schäden an einer beliebigen Stelle entlang dieser neuronalen Bahnen können zu Veränderungen in den OKN-Antworten führen. Das OKN-Ansprechen wird als Instrument zur Beurteilung der zerebralen Symmetrie, der psychogenen Blindheit und der Sehschärfe bei menschlichen Patienten verwendet 4,5. Die Sehschärfe wird durch die Quantifizierung funktioneller Reaktionen bewertet, die für den Erfolg von Behandlungen und Experimenten zur Wiederherstellung des aufgrund neurodegenerativer Erkrankungen verlorenen Sehvermögens eine wesentliche Rolle spielenkönnen 3,6,7. Bei Tieren können OKN-Antworten verwendet werden, um die Sehschärfe genau zu beurteilen, was den Forschern die Möglichkeit gibt, sowohl quantitative als auch qualitative Daten zur Sehfunktion zu sammeln. Bei Nagetieren ist es möglich, die Sehschärfe des linken und des rechten Auges unabhängig voneinander anhand der Drehrichtung der Streifen sowohl im Uhrzeigersinn als auch gegen den Uhrzeigersinn zu messen8. Diese Bewegung gegen den Uhrzeigersinn und im Uhrzeigersinn setzt jedes Auge entweder einer nasotemporalen (N-T) bzw. einer tempo-nasalen (T-N) Bewegung9 aus. Der T-N-Stimulus führt zu einer signifikant höheren Reaktion im Vergleich zum N-T-Stimulus, da Nagetiere empfindlicher auf die Gefahren reagieren, die von hinten oder von der Seite kommen.
Zuvor wurde die Sehfunktion bei normalen Laborratten und netzhautdegenerierten Ratten mit verschiedenen OKN-Testmethoden getestet 6,10,11,12,13. Gewisse Variabilitäten in den Sehschärfewerten werden jedoch zwischen verschiedenen Studien beobachtet, einschließlich der Daten, die in der vorliegenden Untersuchung gezeigt werden. Diese Variabilität ist vor allem auf die Unterschiede im verwendeten Testaufbau zurückzuführen. Unterschiede in der Größe der Testarena und der Art der verwendeten visuellen OKN-Reize 6,10 können die Hauptfaktoren sein. Die in diesen Experimenten verwendeten Stimuli umfassen Sinuswellengitter für das Erscheinungsbild eines virtuellen Zylinders14, austauschbare rotierende Zylinder15 und kontrastreiche (schwarz-weiße) Streifen, die auf vier Computermonitoren10 angezeigt werden. Zu den wichtigsten Einschränkungen im Zusammenhang mit diesen OKN-Testgeräten und -methoden gehören die Größe der Ausrüstung, die Bewegung der Tiere in der Testarena und das häufige Auftreten, dass das Tier von der Testplattform fällt 7,11,12.
Um die oben genannten Einschränkungen zu minimieren, wurde ein neues Gerät für OKN-Tests an Ratten entwickelt. Dieses Gerät ist vergleichsweise kostengünstig, hat sich als effizient und einfach zu bedienen erwiesen und ermöglicht die Beurteilung der Sehfunktion (Abbildung 1). Das Gerät verwendet zwei Tablet-Bildschirme, um die visuellen Reize von OKN (Visualisierungssoftware) in unterschiedlichen Raumfrequenzen anzuzeigen. Eine Mikrokamera wird verwendet, um die Aktivitäten des Tieres während der Tests aufzuzeichnen und die Daten später zu analysieren. Mit dem Ziel, ein einfach einzurichtendes OKN-Gerät in Forschungslabors zu schaffen, beschreibt dieses neue Setup kritische Änderungen an dem bestehenden OKN-Prüfgerät. Die hier verwendeten OKN-Stimuli bestehen aus schwarzen und weißen Streifen mit unterschiedlichen Ortsfrequenzen und unterschiedlichen Drehrichtungen (von links nach rechts oder von rechts nach links). Die Hauptkomponente der OKN-Testvorrichtung besteht aus zwei Touchscreen-Tablet-Bildschirmen (7,9 Zoll), die zur Anzeige der OKN-Stimuli verwendet werden (Abbildung 2). Zwei verstellbare Halterungen dienen dazu, die Tablet-Bildschirme in der gewünschten Position zu halten. Die Halterungen sind sicher an der Kante des Eingriffstisches befestigt, wodurch die Höhe und der Winkel eingestellt werden können. Die Ratten werden in einen Rattenhalter gelegt, der den Bildschirmen zugewandt ist. Die Rattenhalter sind aus transparentem Kunststoffrohr (Polymethylmethacrylat) gefertigt. Der Halter ist an einem Sockel und einem Metallständer befestigt, um einen stabilen Platz auf dem Eingriffstisch zu gewährleisten. Die Größe der Halteröhrchen variiert zwischen 4 und 6 Zoll in der Länge und 2,5 bis 3 Zoll im Durchmesser, abhängig von der Größe der verwendeten Ratten. Der Abstand zwischen der Ratte und dem Bildschirm wird durch Ändern der Position des Rattenhalters eingestellt. Der Rattenhalter trägt dazu bei, dass der Kopf der Ratte kontinuierlich den Bildschirmen ausgesetzt ist und ihre Bewegungen während des Tests reduziert werden. Eine Mikrokamera wird verwendet, um die Head-Tracking-Antworten aufzuzeichnen. Zu den Mängeln dieses neuen Setups gehören unterschiedliche Bildwiederholraten für den Bildschirm und die Möglichkeit optischer Täuschungen bei der Verwendung von schmalen Streifen. Dies kann jedoch als häufige Probleme im Zusammenhang mit einem computerbasierten OKN-Setup angesehen werden. Zusätzlich zu den oben genannten Problemen werden Ratten in der aktuellen Konfiguration nicht mit einem virtuellen Zylinder14 getestet, der die optimale OKN-Reaktion beeinflusst. Die Neuheit dieses Verfahrens liegt in der Technik und der Vorrichtung, in der das Verfahren angewendet wird. Diese Technik kann leicht in Forschungslabors für eine zuverlässige Sehschärfemessung bei Nagetieren eingesetzt werden.