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Label-Retention-Expansionsmikroskopie (LR-ExM) ermöglicht hochauflösende Bildgebung und hocheffiziente Markierung

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DOI:

10.3791/63793

11. Oktober 2022

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Ein Protokoll der Markierungsretentionsexpansionsmikroskopie (LR-ExM) wird demonstriert. LR-ExM verwendet einen neuartigen Satz trifunktionaler Anker, der im Vergleich zu zuvor eingeführten Expansionsmikroskopien eine bessere Markierungseffizienz bietet.

Zusammenfassung

Die Expansionsmikroskopie (ExM) ist eine Probenvorbereitungstechnik, die mit den meisten lichtmikroskopischen Methoden kombiniert werden kann, um die Auflösung zu erhöhen. Nach dem Einbetten von Zellen oder Geweben in quellbares Hydrogel können die Proben im Vergleich zur ursprünglichen Größe physikalisch um das Drei- bis Sechzehnfache (lineare Dimension) erweitert werden. Daher wird die effektive Auflösung eines Mikroskops um den Expansionsfaktor erhöht. Eine wesentliche Einschränkung des zuvor eingeführten ExM ist die reduzierte Fluoreszenz nach der Polymerisation und dem Aufschlussverfahren. Um diese Einschränkung zu überwinden, wurde die Markierungs-Retention-Expansionsmikroskopie (LR-ExM) entwickelt, die Signalverluste verhindert und die Markierungseffizienz mit einer Reihe neuartiger trifunktionaler Anker erheblich verbessert. Diese Technik ermöglicht es, eine höhere Auflösung zu erreichen, wenn zelluläre oder subzelluläre Strukturen im Nanometerbereich mit minimalem Fluoreszenzsignalverlust untersucht werden. LR-ExM kann nicht nur zur Immunfluoreszenzmarkierung, sondern auch mit selbstmarkierenden Proteinmarkierungen wie SNAP- und CLIP-Tags verwendet werden, wodurch eine höhere Markierungseffizienz erreicht wird. Diese Arbeit präsentiert das Verfahren und die Fehlerbehebung für diesen immunfärbungsbasierten Ansatz sowie die Diskussion von selbstmarkierenden Tagging-Ansätzen von LR-ExM als Alternative.

Einleitung

Die Expansionsmikroskopie (ExM) wird von Forschern seit ihrer Einführung als bequemer Ansatz verwendet, um hochauflösende Bildgebung mit herkömmlichen Mikroskopen wie Epifluoreszenz und konfokalen Mikroskopen zu erreichen 1,2,3,4,5,6,7 . Mit ExM ist es möglich, auch mit normalen konfokalen Mikroskopen eine laterale Auflösung von ~70 nm zu erreichen. Wenn ExM mit hochauflösender Bildgebung kombiniert wird, wird die Auflösung weiter verbes....

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Protokoll

1. Zellkultur

  1. Verwenden Sie U2OS-Zellen, die in McCoys 5A-Medium kultiviert wurden, ergänzt mit 10% FBS bei 37 °C in 5%CO2.
  2. Kulturzellen auf ein 16 gut abnehmbares Kammerdeckglas (Kulturfläche 0,4 cm2) für eine einfache Handhabung.

2. Fixierung und Permeabilisierung

HINWEIS: Die Fixierungs- und Permeabilisierungsbedingungen hängen von den optimierten Immunfärbungsprotokollen ab. Das Folgende ist ein Fixierungs- und Permeabilisierungsprotokoll für Co-Immunfärbung von Mikrotubuli und Clathrin-beschichteten Pits (CCPs).

  1. Sobal....

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Ergebnisse

Clathrin-beschichtete Gruben (CCPs) werden mit trifunktionalen Ankern immungefärbt (Abbildung 1B) und LR-ExM wird wie in Abbildung 1A beschrieben durchgeführt. LR-ExM (Abbildung 2C,E) zeigt eine viel höhere Fluoreszenzintensität im Vergleich zur Proteinretentionsexpansionsmikroskopie (proExM, Abbildung 2A) oder Biotin-ExM (Abbildung 2B); Das Signal für LR-.......

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Diskussion

Die Schlüsselinnovation von LR-ExM besteht darin, trifunktionale Anker zu verwenden, um die Zielproteine effektiv zu markieren und die Bildqualität zu verbessern. Diese Methode wird durch trifunktionale Anker begrenzt, die den Forschern nicht so leicht zur Verfügung stehen. Trifunktionale Anker können jedoch auf Anfrage mit anderen Forschern geteilt werden, und ähnliche Produkte wie ExM-Sonden von Chrometa sind jetzt auch kommerziell erhältlich.

In diesem Protokoll wurde eine 1-stündige Inkuba.......

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Offenlegungen

Die Autoren erklären keine Interessenkonflikte.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde von den U.S. National Institutes of Health (R00 GM126136 bis X.S.), der U.S. National Science Foundation (DMS1763272 an S.P.) und der Simons Foundation (594598 an S.P.) unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Acrylamid Sigma A9099 ExM Gel
AffiniPure Donkey Anti-Kaninchen IgGJackson ImmunoResearchH+L, 711– 005-152Antikörper
AffiniPure Donkey Anti-Ratte IgGJackson ImmunoResearchH+L, 712– 005-153Antikörper
Alexa Fluor 488-StreptavidinJackson ImmunoResearch016-540-084Fluoreszierende Sonden
Alexa Fluor 594 StreptavidinJackson ImmunoResearch016-580-084Fluoreszierende Sonden 
Alexa Fluor 647 StreptavidinJackson ImmunoResearch016-600-084Fluoreszenzsonden 
Ammoniumpersulfat Sigma Nr. A3678 ExM Gel
anti-H3K4me3Abcamab8580Antikörper
anti-H3K9me3Abcamab176916Antikörper
DAPI DilacetatThermofisher ScientificD3571Fluoreszierende Sonden
DyLight 488 markierte Anti-Digoxigenin/Digoxin (DIG)Vector LaboratoriesDI-7488Fluoreszenzsonden 
DyLight 594 markierte Anti-Digoxigenin/Digoxin (DIG)Vector LaboratoriesDI-7594Fluoreszenzsonden 
EGTAEMD Millipore Corp.324626-25GMFixierpuffer
Ethylendiamintetraessigsäure Sigma EDTAAufschlusspuffer
Glutaraldehyd 10% EM GradeElektronenmikroskopie Sciences50-262-13Verankerung
Grace Bio-Labs CultureWell abnehmbares Deckglasmit Kammer Grace Bio-LabsGBL112358-8EAZellkulturkammer
Grace Bio-Labs CultureWell EntfernungswerkzeugGrace Bio-Labs GBL103259Entfernungswerkzeug
Guanidin HCl Sigma G3272 Aufschluss-Puffer
MagnesiumchloridSigmaM8266-1KGFixierpuffer
McCoy's 5aATCC30– 2007Cull-Kulturmedium
Methacrylsäure-N-Hydroxysuccinimidester, 98%  (MA-NHS)Sigma 730300-1GVerankerung
monoklonaler Maus-Anti-Nup153-AntikörperAbcamab24700Antikörper
N,N′ Methylenbisacrylamid Sigma M7279 ExM Gel
N,N,N′,N′ Tetramethylethylendiamin  (TEMED)Sigma T7024 ExM Gel
16% Paraformaldehyd Wässrige LösungenElektronenmikroskopie Wissenschaften50-980-487Fixierungspuffer
PIPESSigmaP6757-25GFixierungspuffer
Poly-L-LysinSigmaP8920-100MLKammerbeschichtung
Proteinase K Sigma-AldrichP4850-5MLVerdauungspuffer
Kaninchen-Anti-Clathrin-Schwerketten-AntikörperAbcamab21679Antikörper
Ratte Anti– α-Tubulin-Antikörper, tyrosiniert, Klon YL1/2Millipore SigmaMAB1864-IAntikörper
Natriumacrylat Sigma408220ExM Gel
Streptavidin / Biotin BlockierungskitVector LaboratoriesSP-2002Blockierungspuffer
Tris-HCl Life Technologies AM9855 Aufschluss-Puffer
U2OSATCCHTB-96Zelllinie
6 Well GlasbodenplattenCellvisP06-1.5H-NSpeicherfolie

Referenzen

  1. Shi, X., et al. Label-retention expansion microscopy. The Journal of Cell Biology. 220 (9), 202105067(2021).
  2. Chen, F., Tillberg, P. W., Boyden, E. S. Expansion microscopy. Science. 347 (6221), 543-548 (2015).
  3. Tillberg, P. W., et al.

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Schlagwörter

Fluoreszenzmarkierungtrifunktionale AnkerImmunfluoreszenzmarkierungProtein TaggingHydrogel EinbettungClathrin beschichtete Vertiefungenhohe Markierungseffizienz

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