Methodenartikel

Das Zusammenspiel zwischen natürlichen Killerzellen und Nozizeptorneuronen herauskitzeln

DOI:

10.3791/63800

30. Juni 2022

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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Nozizeptorneuronen und NK-Zellen interagieren aktiv in einem entzündlichen Kontext. Ein Kokulturansatz ermöglicht es, dieses Zusammenspiel zu untersuchen.

Zusammenfassung

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Somatosensorische Neuronen haben sich entwickelt, um schädliche Reize zu erkennen und Abwehrreflexe zu aktivieren. Durch den Austausch von Kommunikationsmitteln stimmen Nozizeptorneuronen auch die Abwehrkräfte des Wirts ab, indem sie die Aktivität des Immunsystems steuern. Die Kommunikation zwischen diesen Systemen ist meist adaptiv und hilft, die Homöostase zu schützen, sie kann auch zum Ausbruch chronischer Krankheiten führen oder diese fördern. Beide Systeme haben sich gemeinsam entwickelt, um eine solche lokale Interaktion zu ermöglichen, wie sie in primären und sekundären lymphatischen Geweben und Schleimhäuten zu finden ist. Neuere Studien haben gezeigt, dass Nozizeptoren Fremdantigene, Immunzell-abgeleitete Zytokine und Mikroben direkt erkennen und darauf reagieren.

Die Aktivierung von Nozizeptoren führt nicht nur zu Schmerzüberempfindlichkeit und Juckreiz, sondern senkt auch die Nozizeptor-Feuerschwelle, was zur lokalen Freisetzung von Neuropeptiden führt. Die Peptide, die von den peripheren Terminals von Nozizeptoren produziert und freigesetzt werden, können die Chemotaxis und Polarisation von Lymphozyten blockieren und die Lokalisation, Dauer und Art der Entzündung kontrollieren. Jüngste Erkenntnisse zeigen, dass sensorische Neuronen mit angeborenen Immunzellen über Zell-Zell-Kontakt interagieren, zum Beispiel Gruppen-2D-Rezeptoren (NKG2D) auf natürlichen Killerzellen (NK).

Da NK-Zellen die verwandten Rezeptoren für verschiedene Nozizeptor-produzierte Mediatoren exprimieren, ist es denkbar, dass Nozizeptoren Neuropeptide verwenden, um die Aktivität von NK-Zellen zu steuern. Hier entwickeln wir eine Co-Kulturmethode, um Nozizeptor-Neuron-NK-Zell-Interaktionen in einer Schale zu untersuchen. Mit diesem Ansatz fanden wir heraus, dass lumbale Nozizeptorneuronen die NK-Zellzytokinexpression verringern. Insgesamt könnte eine solche reduktionistische Methode nützlich sein, um zu untersuchen, wie tumorinnervierende Neuronen die Antikrebsfunktion von NK-Zellen steuern und wie NK-Zellen die Eliminierung verletzter Neuronen steuern.

Einleitung

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Die Zellkörper sensorischer Neuronen stammen aus den dorsalen Wurzelganglien (DRG). Die DRG befinden sich im peripheren Nervensystem (PNS), zwischen dem Rückenhorn des Rückenmarks und den peripheren Nervenendigungen. Die pseudo-unipolare Natur von DRG-Neuronen ermöglicht die Übertragung von Informationen vom peripheren Ast, der das Zielgewebe innerviert, zum zentralen Ast, der die somatosensorische Information zum Rückenmark transportiert1. Unter Verwendung spezialisierter Ionenkanalrezeptoren spüren Neuronen erster Ordnung Bedrohungen durch Krankheitserreger, Allergene und Schadstoffe2, was zum Einstrom von Kationen (Na....

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Protokoll

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Die Institutional Animal Care and Use Committees der Université de Montréal (#22053, #22054) genehmigten alle Tierverfahren. Siehe Tabelle 1 für eine Liste der Lösungen und ihrer Zusammensetzung und die Tabelle der Materialien für eine Liste der Materialien , Ausrüstungen und Reagenzien, die in diesem Protokoll verwendet werden.

1. NK-Zellisolierung, -kultur und -stimulation

  1. Erzeugen Sie Nozizeptorneuron intakt (Wurfgeschwisterkontrolle; TRPV1wt::D TAfl/wt) und ablatierte (TRPV1 cre::D TA fl/wt) Mäuse durch Kreuzung von Lox-Stop-Lox-Diphtherietoxin-Mäusen (DT....

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Ergebnisse

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NK-Zellen wurden magnetisch aus Splenozyten der Wurfgeschwisterkontrolle (TRPV1 wt::D TAfl/wt) Mäuse gereinigt und mit IL-2 und IL-15 stimuliert (48 h). Die NK-Zellen wurden dann allein kultiviert oder mit DRG-Neuronen co-kultiviert, die aus intakten Nozizeptorneuronen gewonnen wurden (Wurfgeschwisterkontrolle; TRPV1wt::D TAfl/wt) oder abgetragene (TRPV1cre::D TAfl/wt) Mäuse. Die Zellen wurden dann dem TRPV1-Agonisten Capsaicin (1 μM) oder seinem Vehikel a.......

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Diskussion

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Davies et al.11 fanden heraus, dass verletzte Neuronen RAE1 hochregulieren. Über Zell-Zell-Kontakt konnten NKG2D-exprimierende NK-Zellen dann RAE1+ -Neuronen identifizieren und eliminieren, was wiederum chronische Schmerzen begrenzt11. Angesichts der Tatsache, dass NK-Zellen auch verschiedene Neuropeptidrezeptoren exprimieren und dass diese Neuropeptide für ihre immunmodulatorischen Fähigkeiten bekannt sind, erscheint es immer wichtiger, die Interaktion .......

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Offenlegungen

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Die Autoren haben keine Interessenkonflikte offenzulegen.

Danksagungen

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Diese Arbeit wurde vom New Frontiers in Research Fund (NFRFE201901326), den Canadian Institutes of Health Research (162211, 461274, 461275), der Canadian Foundation for Innovation (37439), dem Canada Research Chair Program (950-231859), dem Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (RGPIN-2019-06824) und dem Fonds de Recherche du Québec Nature et technologies (253380) unterstützt.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Anti-Maus CD16/32Jackson LaboratoryKat.-Nr.: 017769
B-27Jackson LaboratoryKat.-Nr.: 009669
Rinderserumalbumin (BSA) KulturqualitätWorld Precision InstrumentsKat.-Nr.: 504167
BV421 Anti-Maus NK-1.1FisherScientific Kat.-Nr.: 12430112
Cell strainer (50 μ m)Fisher ScientificKat.-Nr.: A3160702
Collagenase IVFisher ScientificKat.-Nr.: 15140148
Diphteriatoxinfl/flFisher ScientificKat.-Nr.: SH3057402
Dispase IIFisher ScientificKat.-Nr.: 13-678-20B
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM)Fisher ScientificKat.-Nr.: 07-200-95
EasySep Maus NK Cell Isolation KitSigmaKatze Nr.: CLS2595
Ethylendiamintetraessigsäure (EDTA)SigmaKatze Nr.: C0130
FACSAria IIISigmaKatze Nr.: 04942078001
Fötales Rinderserum (FBS)SigmaKatze Nr.: 806552
FITC Anti-Maus NKp46SigmaKatze Nr.: L2020
96-Well-Platte mit flachem BodenSigmaKat.-Nr.: 03690
Glaspasteur-PipetteSigmaKat.-Nr.: 470236-274
Neurotropher Faktor (GDNF) für GliazelllinienVWRKat.-Nr.: 02-0131
LamininCedarlaneKat.-Nr.: 03-50/31
L-GlutaminGibcoKat.-Nr.: A14867-01
Maus rekombinant IL-15GibcoKat.-Nr.: 22400-089
Maus rekombinant IL-2GibcoKat.-Nr.: 21103-049
Nerve Growth Factor (NGF)Life TechnologiesKat.-Nr.: 13257-019
Neurobasales MediumPeproTechKat.-Nr.: 450-51-10
PE Anti-Maus GM-CSFPeproTechKat.-Nr.: 212-12
Penicillin und StreptomycinPeproTechKat.-Nr.: 210-15
PestlesStem Cell TechnologyKat.-Nr.: 19855
Phosphate Buffered Saline (PBS)BiolegendKat.-Nr.: 108732Klon PK136
RPMI 1640 mediaBiolegendKat.-Nr.: 137606Klon 29A1.4
TRPV1CreBiolegendKat.-Nr.: 505406Klon MP1-22E9
Pinzetten und Sezierwerkzeuge.BiolegendKat.-Nr.: 65-0865-14
96-Well-Platte mit U-förmigem BodenBiolegendKat.-Nr.: 101319
Viability Dye eFlour-780Becton Dickinson

Referenzen

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  1. Berta, T., Qadri, Y., Tan, P. H., Ji, R. R. Targeting dorsal root ganglia and primary sensory neurons for the treatment of chronic pain. Expert Opinion on Therapeutic Targets. 21 (7), 695-703 (2017).
  2. Baral, P., et al.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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Schlagwörter

Interaktion zwischen Neuronen und ImmunsystemCo Kultur MethodeSpinalganglionDurchflusszytometrieZytokinexpressionNeuropeptidsekretionDRG IsolierungNK Zellfunktion

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