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Methodenartikel

Messung der einzelligen mitochondrialen DNA-Kopienzahl und Heteroplasmie mittels digitaler Tröpfchenpolymerase-Kettenreaktion

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DOI:

10.3791/63870

12. Juli 2022

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier stellen wir ein Protokoll zur Messung der absoluten mitochondrialen (mt)DNA-Kopienzahl und der mtDNA-Deletionsheteroplasmie in einzelnen Zellen vor.

Zusammenfassung

Die mitochondriale (mt)DNA von Säugetieren ist ein kleines, zirkuläres, doppelsträngiges, intramitochondriales DNA-Molekül, das 13 Untereinheiten der Elektronentransportkette kodiert. Im Gegensatz zum diploiden Kerngenom enthalten die meisten Zellen viel mehr Kopien der mtDNA, die je nach Zelltyp von weniger als 100 bis über 200.000 Kopien reichen. Die MtDNA-Kopienzahl wird zunehmend als Biomarker für eine Reihe von altersbedingten degenerativen Erkrankungen und Krankheiten verwendet, und daher wird die genaue Messung der mtDNA-Kopienzahl zu einem Schlüsselinstrument sowohl in der Forschung als auch in der Diagnose. Mutationen in der mtDNA, die oft als Einzelnukleotid-Polymorphismen (SNPs) oder Deletionen auftreten, können entweder in allen Kopien der mtDNA innerhalb der Zelle (Homoplasmie genannt) oder als Mischung aus mutierten und WT-mtDNA-Kopien (Heteroplasmie genannt) existieren. Heteroplasmatische mtDNA-Mutationen sind eine Hauptursache für klinische mitochondriale Pathologie, entweder bei seltenen Krankheiten oder bei einer wachsenden Anzahl von häufigen spät einsetzenden Krankheiten wie der Parkinson-Krankheit. Die Bestimmung des Grades der Heteroplasmie in Zellen ist ein kritischer Schritt bei der Diagnose seltener mitochondrialer Erkrankungen und in der Forschung, die darauf abzielt, häufige spät einsetzende Störungen zu verstehen, bei denen Mitochondrien eine Rolle spielen können. MtDNA-Kopienzahl und Heteroplasmie wurden traditionell durch quantitative (q)PCR-basierte Assays oder Tiefensequenzierung gemessen. Die jüngste Einführung der ddPCR-Technologie hat jedoch eine alternative Methode zur Messung beider Parameter bereitgestellt. Es bietet mehrere Vorteile gegenüber bestehenden Methoden, einschließlich der Möglichkeit, die absolute mtDNA-Kopienzahl zu messen, und einer ausreichenden Empfindlichkeit, um auch bei niedrigen Kopienzahlen genaue Messungen von einzelnen Zellen durchzuführen. Hier wird ein detailliertes Protokoll vorgestellt, das die Messung der mtDNA-Kopienzahl in einzelnen Zellen mittels ddPCR beschreibt, im Folgenden als Tröpfchenerzeugungs-PCR bezeichnet, mit der Option zur gleichzeitigen Messung der Heteroplasmie in Zellen mit mtDNA-Deletionen. Die Möglichkeit, diese Methode zur Messung von Heteroplasmen in Zellen mit mtDNA-SNPs zu erweitern, wird ebenfalls diskutiert.

Einleitung

Die mitochondriale (mt)DNA von Säugetieren ist ein kleines (ca. 16,5 Kb), zirkuläres DNA-Genom, das sich in der mitochondrialen Matrix befindet und 37 Gene kodiert, bestehend aus zwei rRNAs, 22 tRNAs und 13 proteinkodierendenGenen 1. Im Gegensatz zum Kerngenom, das eine (haploide) oder zwei (diploide) Kopien jedes Gens pro Zelle enthält, ist mtDNA in mehreren Kopien in den Mitochondrien jeder Zelle vorhanden, die von Dutzenden von Kopien (z. B. reife Spermatozyten) bis zu Hunderttausenden von Kopien (z. B. Eizellen) reichen2,3. Eine Folge dieser Multi-Copy-Natur ist, dass Mutationen im ....

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Protokoll

Alle Experimente folgten den ARRIVE-Richtlinien und wurden vom University of Cambridge Animal Welfare Ethical Review Body (AWERB) genehmigt.

HINWEIS: Alle Probenvorbereitungsschritte vor der Tröpfchenerzeugung müssen in einem sauberen Pre-PCR-Arbeitsbereich durchgeführt werden, idealerweise nach Möglichkeit in einem UV-sterilisierten Schrank. Das hier beschriebene Protokoll verwendet spezifische PCR-Geräte zur Tröpfchenerzeugung (siehe Materialtabelle), und obwohl die allgemeine Methode auf andere Systeme anwendbar sein sollte, wird empfohlen, die Richtlinien des Herstellers in Bezug auf Primer-/Sondenkonzentrationen, PCR-Z....

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Ergebnisse

Nach der Tröpfchenerzeugung ist eine klare Schicht undurchsichtiger Tröpfchen sichtbar, die auf der Ölphase in jedem Bohrloch schwimmt (Abbildung 1B). Die Tröpfchenbildung kann durch das Vorhandensein von Detergenzien im Eingangslysat bei Experimenten an einzelnen Zellen beeinträchtigt werden. Unter Verwendung des in Abschnitt 2.1.2 beschriebenen Lyseprotokolls werden trotz des Vorhandenseins einer geringen Restmenge von TWEEN-20 in der Endprobe routinemäßig Tröpfchenausbeuten über dem empfo.......

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Diskussion

Das hier beschriebene Protokoll ist zusätzlich zu den oben beschriebenen auf eine Vielzahl von Zelltypen und -spezies anwendbar, obwohl eine sorgfältige Optimierung neuer Assay-Designs von entscheidender Bedeutung sein wird, um sicherzustellen, dass Genauigkeit und Wiederholbarkeit der Methode erhalten bleiben, wenn man sich von zuvor validierten Primer/Sonden-Kombinationen entfernt. Bei der Arbeit mit Einzelzellen ist es wichtig, sicherzustellen, dass die Probenentnahme so genau wie möglich durchgeführt wird (z. B. unte.......

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Offenlegungen

Keine Interessenkonflikte offenzulegen.

Danksagungen

Vielen Dank an Dr. L Bozhilova für die Beratung zur statistischen Analyse von PCR-Daten zur Tröpfchenerzeugung. Vielen Dank an Dr. H Zhang für die Bereitstellung der Eizellen, die zur Generierung von Daten in Abbildung 3C und Abbildung 4B verwendet wurden. Diese Arbeit wurde von SPB an der Medical Research Council Mitochondrial Biology Unit (MC_UU_00015/9) der University of Cambridge durchgeführt und durch ein Wellcome Trust Principal Research Fellowship von PFC (212219 / Z / 18 / Z) finanziert.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
50 % Tween-20-LösungNovex3005
Automatisiertes Tröpfchen-erzeugendes Öl Bio Rad1864110Kommerzielle Ölformulierung, die zur Erzeugung der Öl-/Tröpfchenemulsion verwendet wird (verwendet in Protokollschritt 4.1)
C1000 PCR-Maschine mit Deep-Well-BlockBio Rad1851197PCR-Thermocycler, ausgestattet mit einem Deep-Well-Heizblock, verwendet für die Zelllyse (Protokollschritt 2.1.2.) und PCR-Zyklus (Protokollschritt 5)
Entnahmeplatten-KühlblockBio Rad12002819Kühlblock, der die Proben während der Tröpfchenerzeugung kühl hält (verwendet in Protokollschritt 4.3)
ddPCR 96-Well-Platten Bio Rad1200192596-Well-Platten-Pipettenspitzen, die für den Einsatz im QX200 AutoDG Tröpfchengenerator entwickelt wurden und für die Probenvorbereitung (Protokollschritt 3.4) und die Tröpfchensammlung (Protokollschritt 4.3) verwendet werden.
Bio Rad1863004Kommerzielle Ölformulierung, die vom Tröpfchenleser verwendet wird (verwendet in Protokollschritt 6.1)
ddPCR Supermix für Sonden (kein dUTP)Bio Rad1863023Kommerzieller Supermix zur Verwendung in ddPCR-Experimenten mit Sonden (verwendet in Protokollschritt 3.3)
DG32 Kartuschen für automatisierte Tröpfchengenerator Bio Rad1864108Mikrofluidische Kartuschen, die im QX200 AutoDG Tröpfchengenerator zur Erzeugung der Öl-/Tröpfchenemulsion verwendet werden (verwendet in Protokollschritt 4.3)
Fötales RinderserumGibco10270-106Qualifiziertes fötales Rinderserum
Folienplattenabdeckungen Bio Rad1814040Folienplattenabdeckungen zum Verschließen von Tröpfchensammelplatten nach der Tröpfchenerzeugung (verwendet in Protokollschritt 4.6)
HEK 293T-ZellenTakara632180Kommerzieller Subklon der transformierten humanen embryonalen Nierenzelllinie, HEK 293, die das SV40 Large-T-Antigen exprimiert
HeLa-ZellenECACC93021013Menschliche Gebärmutterhals-Epitheloidkarzinomzellen
DMEM mit hohem GlukosegehaltGibco133453644,5 g/l D-Glucose, mit L-Glutamin und Natriumpyruvat
Menschliche CybridenUniversity of Miami
Maus embryonale Fibroblasten Universität NewcastleImmortalisiert aus C57Bl/6 Mäusen
Nukleasefreies WasserAmbionAM9937
PCR-PlattendichtungenPierceSP-0027Durchsichtige Klebeplattendichtungen, nur Vortröpfchenerzeugung verwendet (Foliendichtung muss in Schritt 4.6 verwendet werden)
Pipettenspitzen-AbfallbehälterBio Rad1864125Einweg-Auffangbehälter zum Sammeln von weggeworfenen Spitzen im QX200 AutoDG Tröpfchengenerator (verwendet in Protokollschritt 4.3)
Pipettenspitzen für das AutoDG-System Bio Rad1864120Gefilterte Pipettenspitzen, die für die Verwendung im QX200 AutoDG-Tröpfchengenerator entwickelt wurden (verwendet in Protokollschritt 4.3)
Primäre humane dermale FibroblastenzellenNewcastle Biobank
Primer/SondenIDT N/AGenaue Primer-/Sondensequenzen sind vom Assay abhängig. Primer und Sonden, die in dieser Studie verwendet wurden, sind in Tabelle 1
Proteinase K 20 mg/ml-LösungAmbionAM2546
PX1 PCR-PlattenversiegelungBio Rad1814000Bringt nach der Tröpfchenerzeugung Folienversiegelungen auf ddPCR-Probenplatten auf (verwendet in Protokollschritt 4.6)
QX Manager-SoftwareBio Rad12012172Droplet Reader Einrichtung und Analysesoftware (verwendet in den Protokollschritten 6 und 7)
QX200 AutoDG TröpfchengeneratorBio Rad1864101Automatisierter mikrofluidischer Tröpfchengenerator (verwendet in Protokollschritt 4)
QX200 TröpfchenleserBio Rad1864003Tröpfchenleser (verwendet in Protokollschritt 6)
Trizma voreingestellte Kristalle pH 8,3SigmaT8943-100G

Referenzen

  1. Taanman, J. W. The mitochondrial genome: structure, transcription, translation and replication. Biochimica Biophysica Acta. 1410 (2), 103-123 (1999).
  2. Wai, T., et al. The role of mitochondrial DNA copy number in mammalian fertility.

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Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

Einzelzellanalysedigitale Tropfen PCRmitochondriale HeteroplasmieTropfenerzeugungVersiegelung von PCR PlattenSchwellenwertanalyseZelllyseDeletionsheteroplasmie