Das vorliegende Protokoll beschreibt die Hochfrequenz-Sonographie zur Darstellung der gesamten Schilddrüse der Maus und zur Überwachung des Wachstums des anaplastischen Schilddrüsenkarzinoms.
Ein Abonnement von JoVE ist erforderlich, um diesen Inhalt anzuzeigen. Melden Sie sich an oder beginnen Sie noch heute mit einer kostenlosen Testphase.
Methodenartikel
Hochauflösende Sonographie zur Analyse orthotoper ATC-Tumoren in einem gentechnisch veränderten Mausmodell
In diesem Artikel
Zusammenfassung
Zusammenfassung
Das anaplastische Schilddrüsenkarzinom (ATC) ist mit einer schlechten Prognose und einer kurzen medianen Überlebenszeit verbunden, aber keine wirksame Behandlung verbessert die Ergebnisse signifikant. Gentechnisch veränderte Mausmodelle, die das Fortschreiten von ATC nachahmen, könnten Forschern helfen, Behandlungen für diese Krankheit zu untersuchen. Kreuzung von drei verschiedenen Genotypen von Mäusen, einem TPO-cre/ERT2; BrafCA/wt; Trp53 Δex2-10/Δex2-10 transgenes ATC-Modell wurde entwickelt. Das ATC-Mausmodell wurde durch eine intraperitoneale Injektion von Tamoxifen mit Überexpression von BrafV600E und Deletion von Trp53 induziert, und die Tumoren wurden innerhalb von etwa 1 Monat erzeugt. Mittels hochauflösendem Ultraschall wurde die Tumorinitiation und -progression untersucht und die dynamische Wachstumskurve durch Messung der Tumorgrößen ermittelt. Im Vergleich zur Magnetresonanztomographie (MRT) und Computertomographie hat Ultraschall Vorteile bei der Beobachtung des ATC-Mausmodells, z. B. nicht-invasiv, tragbar, in Echtzeit und ohne Strahlenbelastung. Hochauflösender Ultraschall eignet sich für dynamische und Mehrfachmessungen. Die ultrasonographische Untersuchung der Schilddrüse bei Mäusen erfordert jedoch einschlägige anatomische Kenntnisse und Erfahrungen. In diesem Artikel wird ein detailliertes Verfahren zur Verwendung von hochauflösendem Ultraschall zum Scannen von Tumoren im transgenen ATC-Modell beschrieben. In der Zwischenzeit werden die Einstellung der Ultraschallparameter, die Fähigkeiten des Ultraschallscans, die Anästhesie und die Genesung der Tiere sowie andere Elemente, die während des Prozesses beachtet werden müssen, aufgelistet.
Einleitung
Obwohl das anaplastische Schilddrüsenkarzinom (ATC) weniger als 2 % der Schilddrüsenkrebserkrankungen ausmacht, verursacht es jährlich mehr als 50 % der Todesfälle im Zusammenhang mit Schilddrüsenkrebs. Die mediane Überlebenszeit nach der Diagnose mit ATC beträgt nur etwa 6 Monate, und es gibt keine Behandlungen, die das Überleben signifikant verbessern 1,2.
Die Seltenheit von ATC hat die Erforschung des Beginns und des aggressiven Fortschreitens der Krankheit behindert. Seit kurzem gibt es gentechnisch veränderte Mausmodelle, die die Krankheit nachahmen und Einblicke in die Krankheitund ihr Ansprechen auf mögliche Behandlungen geben 3,4,5. Solche Untersuchungen erfordern eine genaue Bildgebung des Tumors für Messungen und Überwachung, die in der Regel mit Magnetresonanztomographie, Computertomographie oder hochauflösendem Ultraschall durchgeführt wird 6,7. Die Ultraschalluntersuchung ist bei Mausorganen weit verbreitet. Es hat Vorteile gegenüber der Magnetresonanztomographie und der Computertomographie, da es in Echtzeit durchgeführt werden kann und das Subjekt keiner Strahlung ausgesetzt ist, und die erforderliche Ausrüstung klein genug ist, um tragbar zu sein 8,9. Studien zur kontinuierlichen Überwachung des ATC-Wachstums mittels Ultraschall sind jedoch selten. Daher untersucht diese Arbeit den Nutzen von Ultraschall in diesem Zusammenhang.
In dieser Arbeit wird ein Protokoll zur Verwendung hochauflösender Ultraschalluntersuchungen zur genauen Untersuchung, Überwachung und Vermessung von Tumoren in einem Mausmodell der ATC vorgestellt.
Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.
Protokoll
Die vorliegende Studie wurde mit Genehmigung des Animal Care and Use Committee der Universität Sichuan durchgeführt. TPO-cre/ERT2; BrafCA/wt; Trp53 Δex2-10/Δex2-10 transgene Mäuse10 wurden in dieser Studie verwendet (siehe Materialtabelle). Die Protokollschritte können bei Bedarf für verschiedene Tierarten modifiziert werden. Zwölf Mäuse, darunter sechs Weibchen und sechs Männchen, mit einem Durchschnittsalter von 93 Tagen, wurden hier eingesetzt.
1. Versuchsvorbereitung
- Schalten Sie das Ultraschallgerät ein (siehe Materialtabelle) und erstellen Sie einen neuen Ordner für die Aufnahme der Bilder und die Erfassung der Daten. Wählen Sie die 40-MHz-Zeilensonde aus und klicken Sie auf das oberflächliche Gewebemuster, um den oberflächlichen Gewebeschallkopf zu aktivieren. Verwenden Sie den "B-Modus" für die Bildgebung der Schilddrüse (Abbildung 1A).
Anmerkungen: Der B-Modus ist der grundlegende Ultraschall-Bildgebungsmodus. Das Auftreten von Ultraschallbildern beruht auf den physikalischen Wechselwirkungen von Schall mit dem Gewebe im Körper. B-Mode-Bilder werden als graue Bilder11,12 erzeugt. - Halten Sie die Mäuse in speziellen Käfigen mit freiem Zugang zu Futter und Wasser. Stellen Sie den Käfig auf ein zusätzliches Heizgerät (siehe Materialtabelle), um die Wärmeregulierung zu gewährleisten.
- Stellen Sie sicher, dass ausreichend Isofluran im Verdampfer und O2 im Tank vorhanden ist. Wenn die Vorräte nicht ausreichen, tauschen Sie die Tanks gegen neue aus.
- Reinigen Sie die Tierbildgebungsplattform mit steriler Kochsalzlösung und schalten Sie den Heizknopf ein. Stellen Sie sicher, dass die Temperatur 38-40 °C beträgt, bevor Sie das Tier auf die Plattform setzen (Abbildung 1C).
2. Vorbereitung der Tiere für die Bildgebung
- Schalten Sie den Isofluran-Verdampfer ein. Übertragen Sie die Maus aus dem Käfig in die Anästhesiebox.
- Betäuben Sie das Tier mit einer Mischung aus 1%-2% Isofluran aus dem Verdampfer und Sauerstoff, der mit 0,8 l/min fließt.
- Tragen Sie die Enthaarungscreme von der Brust bis zum Hals auf, warten Sie 30 Sekunden und wischen Sie dann die Creme und das Fell vollständig ab. Spülen Sie den Bereich und das umgebende Fell gründlich mit warmer, steriler Kochsalzlösung ab.
- Legen Sie das betäubte Tier auf die beheizte Plattform. Decken Sie die Schnauze mit einem Nasenkegel ab, der mit dem Anästhesieausgang verbunden ist (Abbildung 2A, B).
HINWEIS: Die Maus muss innerhalb von 1-2 Minuten vollständig sediert sein. Wenn das Tier noch aktiv ist, führen Sie eine verlängerte Isofluran-Induktion durch, bis das Tier keinen Pedalrückzugsreflex mehr zeigt. Stellen Sie sicher, dass das Tier stabil atmet. - Überwachen Sie während der Bildgebung die Herzfrequenz der Maus über die beheizte Plattform.
HINWEIS: Das Ultraschall-Bildgebungssystem ist mit einem Herzfrequenzmesser ausgestattet. - Verwenden Sie Klebeband, um die Gliedmaßen der Maus auf der beheizten Plattform zu befestigen, während sich das Tier in Rückenlage befindet. Stellen Sie sicher, dass der Nasenkonus mit einem konstanten Anästhesiegasfluss (1,5 l/min) stabil positioniert ist.
- Schützen Sie die Augen, indem Sie Augensalbe auftragen.
3. Bildgebung des Tumors
- Passen Sie das Bildgebungssystem an, um die Auflösung zu optimieren. Stellen Sie die folgenden Parameter ein: zweidimensionale Verstärkung, 25-30 dB; Bildtiefe, 10 mm; Anzahl der Fokuszonen, 3; und Mitte, 3-6 mm.
HINWEIS: Für die vorliegende Studie wurde eine 40-MHz-Sonde verwendet. Für die Datenerfassung wurde der B-Modus spezifiziert. - Tragen Sie das Ultraschallgel (siehe Materialtabelle) großzügig auf den Bereich der nackten Haut auf.
- Halten Sie die Sonde und bringen Sie sie mit dem Ultraschallgel auf der Brust in Kontakt, und scannen Sie dann von der Brust in Richtung Hals, um die Schilddrüse zu lokalisieren (Abbildung 2C).
Anmerkungen: Üben Sie während des Scannens sanften Druck aus. Übermäßiger Druck auf den Hals des Tieres kann zu Keuchen oder Apnoe führen. Dieses Protokoll wurde auf der Grundlage des Handscanners entwickelt, aber es kann auch ein mechanisiertes Scannen mit einer Maschine durchgeführt werden, um die Sonde zu führen, z. B. eine Tierbildgebungsplattform, die sich entlang der x- und y-Achse bewegt. - Scannen Sie nach oben und unten, um die Grenzen des Tumors zu identifizieren und seine Größe und Form zu beurteilen.
HINWEIS: Eine gesunde Schilddrüse erscheint in der Regel als echogene, homogene Struktur vor der Luftröhre. Anaplastische Tumoren lassen die Schilddrüse viel größer erscheinen, was durch einen Halsscan leicht identifiziert werden kann (Abbildung 3). - Identifizieren Sie die ATC-Tumoren anhand der Luftröhre und der Gurtmuskulatur in Abhängigkeit von der anatomischen Lokalisation und dem Ultraschallecho.
HINWEIS: Die Gurtmuskulatur befindet sich vor der Schilddrüse und der Luftröhre sowie hinter der Schilddrüse. Das Ultraschallecho der Gurtmuskulatur erscheint höher als das des ATC, während hinter der Luftröhre eine Dämpfung besteht13.- Bestätigen Sie anhand des Abdrucks des Gesamttumors den Bildausschnitt mit dem größten Tumordurchmesser von links nach rechts. Drücken Sie die Freeze-Taste und messen Sie den anteroposterioren und den Tumordurchmesser von links nach rechts mit dem Ultraschallmessschieber.
HINWEIS: Der anteroposteriore Durchmesser muss senkrecht zum Tumordurchmesser von links nach rechts gemessen werden (Abbildung 4). Die Tumorgröße des ATC wurde berechnet, indem der anteroposteriore Durchmesser mit dem von links nach rechts verlaufenden Tumordurchmesser multipliziert wurde14. Da die Größe der Tumore auf der linken und rechten Seite uneinheitlich war, wurde jede Seite der Tumore separat berechnet. Die Gesamtgröße der Tumoren wurde durch Addition der bilateralen Tumoren ermittelt. Die Größen wurden aufgezeichnet, um die Wachstumskurve des ATC zu beobachten.
- Bestätigen Sie anhand des Abdrucks des Gesamttumors den Bildausschnitt mit dem größten Tumordurchmesser von links nach rechts. Drücken Sie die Freeze-Taste und messen Sie den anteroposterioren und den Tumordurchmesser von links nach rechts mit dem Ultraschallmessschieber.
- Speichern Sie die Aufnahme als Cine-Loop, was die Überprüfung der ausgewählten Bilder erleichtert.
4. Genesung von Tieren
- Wischen Sie nach dem Scannen das Ultraschallgel ab und entfernen Sie das Fesselband von den Gliedmaßen des Tieres.
- Setzen Sie die Maus auf das Zusatzheizgerät (Schritt 1.2). Legen Sie das Tier auf die Seite (Abbildung 2D).
- Nachdem sich die Maus erholt hat (~5 min), bringen Sie sie zurück in den Käfig.
- Reinigen Sie das Ultraschallsystem, die Sonde und die Plattform mit einem weichen Tuch und Isopropylalkohol- oder Glutaraldehydtüchern.
- Schalten Sie das Imaging-System aus.
Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.
Ergebnisse
Die durchschnittliche rechte ATC-Größe betrug zu Beginn der Studie 4,867 mm2 und die durchschnittliche linke ATC-Größe 5,189mm2. Bei der vierten Messung war die durchschnittliche rechte ATC-Größe auf 11,844 mm2 angewachsen, während die Tumorgröße des linken Lappens auf 9,280mm2 angewachsen war. Die Gesamtgröße des ATC stieg von 10,057 mm 2 auf 15,843 mm2. In der späteren Phase der Studie wuchs das ATC schnell. Bei der Maus mit der Bezeichnung "P92" (
Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.
Diskussion
Dieses Protokoll verwendet hochauflösende Ultraschalluntersuchungen, um orthotope ATC-Tumore in einem gentechnisch veränderten Mausmodell zu analysieren. Das transgene Modell mit einem Genotyp von TPO-cre/ERT2; BrafCA/wt; Trp53 Δex2-10/Δex2-10 wurde in unserem Labor entwickelt. Die Tiere überexprimieren BrafV600E und es fehlt Trp53; Die intraperitoneale Injektion von Tamoxifen führt nach ca. 1 Monat zu einem Tumorwachstum10. Die Tumore wachsen sch...
Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.
Offenlegungen
Die Autoren haben keine Interessenkonflikte zu erklären.
Danksagungen
Diese Forschung erhielt keine spezifischen Zuschüsse von öffentlichen, kommerziellen oder gemeinnützigen Förderorganisationen.
Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.
Materialien
| Name | Unternehmen | Katalognummer | Kommentare |
|---|---|---|---|
| Klebeband | Winner | ||
| Anästhesiesystem | RWDlifescience | ||
| Brafflox/wt Mäuse | Zusammenarbeit mit dem Institute of Life Science, eBond Pharmaceutical Technology Ltd, Chengdu, China | ||
| Chamber für die Anästhesieeinleitung | RWDlifescience | ||
| Wattestäbchen | Winner | ||
| Enthaarungscreme | Veet | ||
| Elektrische Heizdecke | Petbee | ||
| Isoflurane Vaporizer | RWDlifescience | ||
| Medical Handschuhe | Winner | ||
| Papierhandtücher | Breeze | B914JY | |
| TPO-cre/ERT2 Mäuse | Zusammenarbeit mit dem Institute of Life Science, eBond Pharmaceutical Technology Ltd, Chengdu, China | ||
| Trp53flox/wt mice | Zusammenarbeit mit dem Institute of Life Science, eBond Pharmaceutical Technology Ltd, Chengdu, China | ||
| Ultraschallgel | Keppler | KL-250 | |
| Ultraschallgerät | VisualSonics | Vevo 3100 |
Referenzen
- Maniakas, A., et al. Evaluation of overall survival in patients with anaplastic thyroid carcinoma, 2000-2019. JAMA Oncology. 6 (9), 1397-1404 (2020).
- Molinaro, E., et al. Anaplastic thyroid carcinoma: From clinicopathology to genetics and advanced therapies. Nature Reviews Endocrinology. 13 (11), 644-660 (2017).
- Champa, D., Di Cristofano, A. Modeling anaplastic thyroid carcinoma in the mouse. Hormones and Cancer. 6 (1), 37-44 (2015).
- Vitiello, M., Kusmic, C., Faita, F., Poliseno, L. Analysis of lymph node volume by ultra-high-frequency ultrasound imaging in the Braf/Pten genetically engineered mouse model of melanoma. Journal of Visualized Experiments. (175), e62527(2021).
- Wang, Y., et al. Low intensity focused ultrasound (LIFU) triggered drug release from cetuximab-conjugated phase-changeable nanoparticles for precision theranostics against anaplastic thyroid carcinoma. Biomaterials Science. 27 (1), 196-210 (2018).
- Mohammed, A., et al. Early detection and prevention of pancreatic cancer: Use of genetically engineered mouse models and advanced imaging technologies. Current Medicinal Chemistry. 19 (22), 3701-3713 (2012).
- Wege, A. K., et al. High resolution ultrasound including elastography and contrast-enhanced ultrasound (CEUS) for early detection and characterization of liver lesions in the humanized tumor mouse model. Clinical Hemorheology and Microcirculation. 52 (2-4), 93-106 (2012).
- Greco, A., et al. Preclinical imaging for the study of mouse models of thyroid cancer. International Journal of Molecular Sciences. 18 (12), 2731(2017).
- Renault, G., et al. High-resolution ultrasound imaging of the mouse. Journal of Radiologie. 87, 1937-1945 (2006).
- McFadden, D. G., et al. p53 constrains progression to anaplastic thyroid carcinoma in a Braf-mutant mouse model of papillary thyroid cancer. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (16), 1600-1609 (2014).
- Garassini, M. Basic principles of ultrasonic diagnosis. GEN. 39 (4), 283-289 (1985).
- Aldrich, J. E. Basic physics of ultrasound imaging. Critical Care Medicine. 35, 131-137 (2007).
- Mancini, M., et al. Morphological ultrasound microimaging of thyroid in living mice. Endocrinology. 150 (10), 4810-4815 (2009).
- Ying, M., Yung, D. M., Ho, K. K. Two-dimensional ultrasound measurement of thyroid gland volume: a new equation with higher correlation with 3-D ultrasound measurement. Ultrasound in Medicine & Biology. 34 (1), 56-63 (2008).
Zugriff eingeschränkt. Bitte melden Sie sich an oder starten Sie eine Testversion, um diesen Inhalt anzuzeigen.
Nachdrucke und Genehmigungen
