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Methodenartikel

Instandhaltung einer lateralen Fluid-Perkussions-Verletzungsvorrichtung

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DOI:

10.3791/64678

21. April 2023

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Die richtige Pflege und Wartung sind für die zuverlässige Funktion eines LFPI-Geräts (Lateral Fluid Percussion Injury) unerlässlich. Hier zeigen wir, wie man ein LFPI-Gerät richtig reinigt, füllt und zusammenbaut und sicherstellt, dass es für optimale Ergebnisse angemessen gewartet wird.

Zusammenfassung

Schädel-Hirn-Trauma (SHT) ist jährlich für etwa 2,5 Millionen Besuche in der Notaufnahme und Krankenhausaufenthalte verantwortlich und eine der Hauptursachen für Tod und Behinderung bei Kindern und jungen Erwachsenen. SHT wird durch eine plötzliche Krafteinwirkung auf den Kopf verursacht, und um das menschliche SHT und die zugrunde liegenden Mechanismen besser zu verstehen, sind experimentelle Verletzungsmodelle erforderlich. Die laterale Flüssigkeitsperkussionsverletzung (LFPI) ist ein häufig verwendetes Verletzungsmodell, da die pathologischen Veränderungen beim menschlichen SHT im Vergleich zum LFPI ähnlich sind, einschließlich Blutungen, Gefäßstörungen, neurologischer Defizite und Neuronenverlust. LFPI verwendet ein Pendel und einen flüssigkeitsgefüllten Zylinder, wobei letzterer an einem Ende einen beweglichen Kolben und am anderen Ende eine Luer-Lock-Verbindung zu steifen, flüssigkeitsgefüllten Schläuchen hat. Die Vorbereitung des Tieres umfasst die Durchführung einer Kraniektomie und das Anbringen eines Luer-Hubs über der Stelle. Am nächsten Tag wird der Schlauch des Verletzungsgeräts mit dem Luer-Hub am Schädel des Tieres verbunden und das Pendel auf eine bestimmte Höhe angehoben und losgelassen. Durch den Aufprall des Pendels auf den Kolben wird ein Druckimpuls erzeugt, der über den Schlauch auf die intakte Dura mater des Tieres übertragen wird und das experimentelle SHT erzeugt. Die richtige Pflege und Wartung ist für die zuverlässige Funktion des LFPI-Geräts unerlässlich, da die Art und Schwere der Verletzung je nach Zustand des Geräts stark variieren kann. Hier zeigen wir, wie man das LFPI-Gerät richtig reinigt, füllt und zusammenbaut und sicherstellt, dass es für optimale Ergebnisse angemessen gewartet wird.

Einleitung

Ein Schädel-Hirn-Trauma (SHT) wird durch eine plötzliche Krafteinwirkung auf den Kopf verursacht. Nach primären Verletzungen, die auf den körperlichen Aufprall zurückzuführen sind, erleiden SHT-Überlebende häufig sekundäre Verletzungen, einschließlich kognitiver Defizite und neurologischer Dysfunktionen, die mit physiologischen Reaktionen auf die ursprüngliche Verletzung verbunden sind1. Es wird geschätzt, dass jährlich etwa 69 Millionen Menschen weltweit an SHT leiden2. Allein in den Vereinigten Staaten kommt es jedes Jahr zu etwa 2,5 Millionen SHT-bedingten Besuchen in der Notaufnahme und zu Krankenhauseinweisungen, was SHT zu einer der Hauptursachen für Behinderungen und Todesfälle bei Kindern und jungen Erwachsenen macht3. SHT kann als leicht, mittelschwer oder schwer eingestuft werden, wobei ein leichtes SHT (mSHT) etwa 70 % bis 90 % der SHT-Fälle ausmacht4. Eine histologische und kognitive SHT-Pathologie kann innerhalb von Minuten bis Stunden nach der Verletzung auftreten, und die Auswirkungen des SHT können Monate bis Jahre nach der ersten Schädigung anhalten5.

Die Entwicklung experimenteller Modelle hat maßgeblich dazu beigetragen, die Auswirkungen und zugrunde liegenden Mechanismen von SHT zu verstehen. Ein solches Modell, die laterale Flüssigkeitsperkussionsverletzung (LFPI), wird häufig zur Beurteilung von SHT in vivo verwendet. LFPI reproduziert Pathologien, die mit einem menschlichen SHT assoziiert sind, einschließlich Gefäßstörungen, Blutungen, neuronalem Verlust, Entzündungen, Gliose und molekularen Störungen 6,7,8. Die LFPI-Technik wird für eine Vielzahl von experimentellen Anwendungen eingesetzt, darunter die Modellierung von pädiatrischen SHT sowie chronischen neurodegenerativen Erkrankungen wie der chronischen traumatischen Enzephalopathie 9,10. LFPI ist eine gut definierte und reproduzierbare Methode des experimentellen SHT, mit der der Schweregrad der Verletzung angepasst werden kann11. Das LFPI-Gerät besteht aus mehreren wichtigen Komponenten, darunter: einem Pendel mit einem beschwerten Hammer, einem Kolben, einem flüssigkeitsgefüllten Zylinder, einem Druckwandler, einem digitalen Oszilloskop und einem kleinen Röhrchen am Ende des Zylinders mit einem Luer-Verschluss, der an einer Nabe am Schädel des Tieres befestigt wird (Abbildung 1). LFPI funktioniert, indem das Pendel in den Kolben geschwenkt wird, wodurch eine Druckwelle durch die Flüssigkeit (entgastes deionisiertes Wasser oder Kochsalzlösung) in das Gehirn des angehängten Tieres erzeugt wird. Dies erhöht den intrakraniellen Druck und repliziert so die mechanischen Merkmale und biologischen Veränderungen von SHT12. Darüber hinaus werden Tiere, die in LFPI-Experimenten verwendet werden, einer Kraniektomie unterzogen, um das Gehirn dem Einfluss des Flüssigkeitsdrucks des Geräts auszusetzen.

Routinemäßige Wartung und Überwachung sind erforderlich, um sicherzustellen, dass das LFPI-Gerät genau funktioniert. Die folgenden Methoden sind wichtig, um das Eindringen von kontaminierenden Luftblasen in das Gerät zu verhindern. Hier demonstrieren wir Methoden zum ordnungsgemäßen Reinigen, Befüllen und Zusammenbauen des LFPI-Geräts. Wir werden auch Oszilloskopausgänge und Mausaufrichtungszeiten diskutieren, um die Lebensfähigkeit des LFPI zu bestätigen.

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Protokoll

1. Reinigen des LFPI-Zylinders

  1. Trennen Sie vorsichtig die Spritzen, die am Gehäuse und an der Einfüllöffnung des Messumformers befestigt sind, sowie das Kabel, das mit dem Druckaufnehmer verbunden ist (siehe Abbildung 1 für eine schematische Darstellung der Komponenten der Verletzungsvorrichtung).
  2. Achten Sie darauf, den Zylinder nicht fallen zu lassen, und lösen Sie die Handknöpfe auf der Rückseite des Geräts von den Zylinderklemmen, um den Zylinder zu befreien.
  3. Entfernen Sie den Kolben am Ende des Zylinders, des Wandlers, des Wandlergehäuses und der O-Ringe des Kolbens.
  4. Flüssigkeit aus dem Zylinder ablassen.
  5. Geben Sie ein mildes Reinigungsmittel, z. B. Geschirrspülmittel, in den Zylinder und schrubben Sie leicht mit einer Spül- oder Flaschenbürste13.
  6. Um sicherzustellen, dass das gesamte Reinigungsmittel abgespült wird, füllen Sie den Zylinder vollständig mit Wasser und spülen Sie ihn gründlich aus.

2. Entgasen der Flüssigkeit, die zum Befüllen des Zylinders verwendet wird

  1. Verwenden Sie eine Vakuumpumpe, um die Flüssigkeit zu entgasen, bevor Sie den Zylinder wieder befüllen, um die Bildung neuer Blasen zu verhindern und vorhandene Blasen zu absorbieren.
    Anmerkungen: Zum Befüllen der Flasche werden ca. 1,5 l Flüssigkeit benötigt, obwohl beim Entgasen von ca. 2 l ein kleiner Vorrat verbleibt, um die während des Gebrauchs und der Tests verlorene Flüssigkeit zu ersetzen.
    Anmerkungen: Hausstaubsauger sind zu schwach, um die Flüssigkeit effektiv zu entgasen. Das Vakuum muss in der Lage sein, einen Druck von 25-28 inHg zu erzeugen.
  2. Geben Sie einen Rührstab in die Flüssigkeit und stellen Sie den Flüssigkeitsbehälter auf eine Rührplatte. Das Rühren der Flüssigkeit während des Entgasungsprozesses hilft, das Sprudeln und die Freisetzung von Gas anzuregen. Das Rühren verhindert auch eine große plötzliche Zunahme der Blasenbildung.
    Anmerkungen: Der Entgasungsprozess sollte beendet sein, wenn nur noch sehr wenige Blasen erzeugt werden. Dies geschieht nach ca. 45 min.

3. Zusammenbau des LFPI-Gerätes

  1. Tragen Sie eine dünne Schicht Vaseline auf den Kolbenkolben auf.
  2. Befestigen Sie den Kolbenkolben so, dass der Kolben ca. 32 mm aus dem Zylinder14 herausragt.
    Anmerkungen: Luft wird häufig am Kolben vor dem führenden O-Ring eingeschlossen. Um diese überschüssige Luft loszuwerden, drehen Sie den Kolben, während Sie ihn ein- und ausfahren, um die Luft aus diesem Spalt zu arbeiten.
  3. Tragen Sie auch auf die anderen O-Ringe eine dünne Schicht Vaseline auf und befestigen Sie sie am Zylinder, mit Ausnahme des O-Rings an der Einfüllöffnung.
  4. Wickeln Sie Teflonband zweimal um die Gewinde des Schallkopfs.

4. LFPI-Gerät nachfüllen und an der Basis befestigen

  1. Schließen Sie eine 10-ml-Spritze, die mit entgaster Flüssigkeit gefüllt und frei von Luftblasen ist, an die Luer-Lock-Nabe am Schallkopfgehäuse an.
  2. Halten Sie den Schallkopf mit dem Gewindeende nach oben und füllen Sie die Vertiefung im Gewindebereich des Schallkopfs mit einer 10-ml-Spritze vollständig mit der entgasten Flüssigkeit. Ziel ist es, den Wandler gut zu füllen, ohne Luftblasen einzubringen. Achten Sie darauf, die empfindliche Membran an der Unterseite des Schallkopfschachts nicht zu beschädigen.
  3. Wenn der Zylinder schräg angeordnet ist, um zu verhindern, dass Luft wieder in das Wandlergehäuse eintritt, befestigen Sie das Wandlergehäuse am Zylinder13 und ziehen Sie es mit einem Schraubenschlüssel fest an.
  4. Entfernen Sie die Kappe von der Einfüllöffnung und dem Zylinder, sobald die entgaste Flüssigkeit etwa 2/3 des Flaschenvolumens erreicht hat.
  5. Stellen Sie den Zylinder waagerecht auf und füllen Sie den Zylinder mit entgaster Flüssigkeit.
    Anmerkungen: Um die Bildung von Luftblasen zu vermeiden, wird empfohlen, die Flüssigkeit langsam einzufüllen14.
  6. Setzen Sie die Kappe an der Einfüllöffnung wieder auf und schließen Sie alle Absperrhähne.
  7. Manipulieren Sie den Zylinder, um Luftblasen an die Einfüllöffnung14 zu bringen.
  8. Öffnen Sie den Absperrhahn an der Einfüllöffnung und injizieren Sie Flüssigkeit mit der Spritze am Wandlergehäuse, um Luftblasen aus der Öffnung14 zu drücken.
  9. Überprüfen Sie das gesamte Gerät und stellen Sie sicher, dass keine Luftblasen vorhanden sind.
  10. Geben Sie eine 10-ml-Spritze, die mit entgaster Flüssigkeit gefüllt ist, in die Luer-Lock-Nabe am Fülldeckel.
  11. Befestigen Sie den Zylinder mit den Handschrauben wieder am Sockel.
  12. Achten Sie darauf, dass der Zylinder waagerecht steht und mit der Mitte des beschwerten Hammers auf dem Pendel ausgerichtet ist.

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Ergebnisse

Wir haben die Auswirkungen einer Luftblasenkontamination in einem LFPI-Gerät auf die Wellenformbildung getestet. Wir injizierten Luftblasen in das Gerät und verglichen die Oszilloskopausgänge mit Oszilloskopdaten, die von einem nicht kontaminierten LFPI-Gerät gesammelt wurden. Die Bedingungen waren wie folgt: nicht kontaminiert, Injektion von 5 ml Luft, Injektion von 10 ml Luft und Injektion von 15 ml Luft. Wir haben das Pendel für alle Stöße unter allen Bedingungen auf einer konstanten Höhe gehalten und 15 Stöße pro Bed...

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Diskussion

Die oben beschriebenen Techniken zeigen, wie ein LFPI-Gerät ordnungsgemäß gewartet wird. Eine routinemäßige Reinigung und Überwachung ist erforderlich, damit das LFPI-Gerät ordnungsgemäß und zuverlässig funktioniert. Darüber hinaus ist es aufgrund des invasiven Charakters des LFPI-Verfahrens zwingend erforderlich, dass das Gerät gründlich gereinigt wird, um eine Infektion von Labortieren zu verhindern.

Die Vermeidung der Bildung von Luftblasen im Gerät ist entscheidend, um optimale Verletzung...

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Offenlegungen

Es wurden keine Interessenkonflikte erklärt.

Danksagungen

Die Autoren bedanken sich bei Custom Design &; Fabrication Inc. für die technische Hilfe und Unterstützung. Diese Arbeit wurde durch die National Institutes of Health Grants R01NS120099-01A1 und R37HD059288-19 finanziert.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
2 - 10 mL Spritzen mit Luer-Lock-FunktionSorgt für einen sicheren Sitz der Nadel und reduziert mögliches Austreten von Flüssigkeit 
Entgaste FlüssigkeitHilft, die Bildung von Luftblasen während des Verletzungseingriffs zu reduzieren
Fluid Percussion Injury (FPI) Gerät (Modell 01-B)Sonderanfertigungen & Fabrications Inc.N/AVerletzungsvorrichtung zur Modellierung von TBI bei Nagetieren
Mildes ReinigungsmittelErmöglicht die gründliche Reinigung des LFPI-Zylinders 
VaselineWird als wasserabweisendes Mittel verwendet und schützt das LFPI-Gerät vor Rost
TeflonbandHilft bei der dichten Abdichtung der Rohrverbindungen am LFPI-Gerät
* Andere Materialien als das LFPI-Gerät können von jedem zuverlässigen Unternehmen erworben werden.

Referenzen

  1. Centers for Disease Control and Prevention. Surveillance Report of Traumatic Brain Injury-related Emergency Department Visits, Hospitalizations, and Deaths. Centers for Disease Control and Prevention, U.S. Department of Health and Human Services. , https://www.cdc.gov/traumaticbraininjury/get_the_facts.html (2014).
  2. Dewan, M. C. Estimating the global incidence of traumatic brain injury. Journal of Neurosurgery. 130 (4), 1080-1097 (2018).
  3. National Center for Injury Prevention and Control; Division of Unintentional Injury Prevention. Traumatic Brain Injury in the United States: Epidemiology and Rehabilitation. , Centers for Disease Control and Prevention. Atlanta, GA. (2015).
  4. Holm, L., Cassidy, J. D., Carroll, L. J., Borg, J. Summary of the WHO Collaborating Centre for neurotrauma task force on mild traumatic brain injury. Journal of Rehabilitation Medicine. 37 (3), 137-141 (2005).
  5. Pavlovic, D., Pekic, S., Stojanovic, M., Popovic, V. Traumatic brain injury: neuropathological, neurocognitive and neurobehavioral sequelae. Pituitary. 22 (3), 270-282 (2019).
  6. Dixon, C. E. A fluid percussion model of experimental brain injury in the rat. Journal of Neurosurgery. 67 (1), 110-119 (1987).
  7. McIntosh, T. K. Traumatic brain injury in the rat: characterization of a lateral fluid-percussion model. Neuroscience. 28 (1), 233-244 (1989).
  8. Ma, X., Aravind, A., Pfister, B. J., Chandra, N., Haorah, J. Animal models of traumatic brain injury and assessment of injury severity. Molecular Neurobiology. 56 (8), 5332-5345 (2019).
  9. Nwafor, D. C. Pediatric traumatic brain injury: an update on preclinical models, clinical biomarkers, and the implications of cerebrovascular dysfunction. Journal of Central Nervous System Disease. 14, (2022).
  10. Turner, R. C. Modeling chronic traumatic encephalopathy: the way forward for future discovery. Frontiers in Neurology. 6, 223(2015).
  11. Petersen, A., Soderstrom, M., Saha, B., Sharma, P. Animal models of traumatic brain injury: a review of pathophysiology to biomarkers and treatments. Experimental Brain Research. 239 (10), 2939-2950 (2021).
  12. Sullivan, H. G. Fluid-percussion model of mechanical brain injury in the cat. Journal of Neurosurgery. 45 (5), 521-534 (1976).
  13. Fluid Percussion Injury Model 01-B: General Operation. , Custom Design & Fabrication, Inc. Available from: http://www.cdf-products.com/ (2023).
  14. Fluid Percussion Injury Model 01-B: Assembly Instructions. , Custom Design & Fabrication, Inc. Available from: http://www.cdf-products.com/ (2023).
  15. Pernici, C. D. Longitudinal optical imaging technique to visualize progressive axonal damage after brain injury in mice reveals responses to different minocycline treatments. Scientific Reports. 10, 7815-78 (2020).

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Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

Schädel-Hirn-TraumaWartung des Verletzungsgerätsexperimentelles SHT-Modelltierisches VerletzungsmodellDruckwellenformEntfernen von LuftblasenKraniektomie-VerfahrenAufzeichnung der neuronalen Aktivitätflüssigkeitsgefüllter Zylinder