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Es ist heute bekannt, dass strukturelle Varianten (SVs) (d. h. Deletionen, Insertionen, Duplikationen und Inversionen) eine wichtige Rolle bei der phänotypischen Variation und damit bei Prozessen wie der Bestimmung von Krankheiten oder der Anpassung an eine neue Umgebung spielen. Einzelnukleotidvarianten erhalten jedoch viel mehr Aufmerksamkeit als SVs, wahrscheinlich weil sie leichter zu erkennen sind und ihre phänotypischen Wirkungen leichter vorherzusagen sind. Die Entwicklung von Short- und Long-Read-Deep-Sequencing-Technologien hat die Detektion von SVs stark verbessert, aber die Quantifizierung ihrer Häufigkeit aus gepoolten Sequenzierungsdaten (Pooleq) ist immer noch technisch komplex und teuer.
Hier stellen wir eine recht einfache und kostengünstige Methode vor, die es Forschern ermöglicht, die Dynamik der SV-Allelfrequenz zu verfolgen. Als Anwendungsbeispiel verfolgen wir die Häufigkeit der Insertion einer Insertionssequenz (IS) in experimentellen Evolutionspopulationen von Bakterien. Diese Methode basiert auf dem Design von Tripletts von Primern um die strukturellen Variantengrenzen, so dass sich die durch Amplifikation des Wildtyps (WT) und der abgeleiteten Allele erzeugten Amplikons in der Größe um mindestens 5% unterscheiden und dass ihre Amplifikationseffizienz ähnlich ist. Die Menge jedes Amplikons wird dann durch parallele Kapillarelektrophorese bestimmt und auf eine Kalibrierkurve normiert. Diese Methode kann leicht auf die Quantifizierung der Häufigkeit anderer Strukturvarianten (Deletionen, Duplikationen und Inversionen) und auf Pool-Seq-Ansätze natürlicher Populationen, einschließlich patienteninterner Erregerpopulationen, ausgeweitet werden.