Methodenartikel

Kohärente Raman-Mikroskopie: Von der Instrumentierung bis zur Anwendung

DOI:

10.3791/64882

20. Januar 2023

In diesem Artikel

Zusammenfassung

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DISKUTIERTE ARTIKEL:

Clark, M. G., Brasseale III, K. A., Gonzalez, G. A., Eakins, G., Zhang, C. Direkter Vergleich der hyperspektral stimulierten Raman-Streuung und der kohärenten Anti-Stokes-Raman-Streumikroskopie für die chemische Bildgebung. Zeitschrift für visualisierte Experimente. (182), e63677 (2022)

De la Cadena, A. et al. Chemische Multiplex-Bildgebung basierend auf breitbandstimuliertem Raman

Streumikroskopie. Zeitschrift für visualisierte Experimente. (185), e63709 (2022).

Shi, L., Wei, M., Min, W. Hochgemultiplexte Gewebebildgebung mit Raman-Farbstoffen. Zeitschrift für visualisierte Experimente. (182), e63547 (2022).

Espinoza, R., Wong, B., Fu, D. Zweifarbige Raman-Streubildgebung in Echtzeit des Mausgehirns für die Gewebediagnose. Zeitschrift für visualisierte Experimente. (180), e63484 (2022).

Miao, K., Lin, L. E., Qian, C., Wei, L. Markierungsfreie hochauflösende Bildgebung durch Vibrationsbildgebung von geschwollenem Gewebe und Analyse. Zeitschrift für visualisierte Experimente. (183), e63824 (2022).

Yuan, Y., Lu, F. Eine flexible Kammer für die Bildgebung lebender Zellen im Zeitraffer mit stimulierter Raman-Streumikroskopie. Zeitschrift für visualisierte Experimente. (186), e64449 (2022).

Wu, W., Li, X., Qu, J. Y., He, S. In vivo Bildgebung von biologischen Geweben mit kombinierter Zwei-Photonen-Fluoreszenz und stimulierter Raman-Streumikroskopie. Zeitschrift für visualisierte Experimente. (178), e63411 (2021).

Editorial

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In den letzten zehn Jahren ist das Interesse an der Anwendung der kohärenten Raman-Mikroskopie (CRM) in der Zell- und Gewebebildgebung gestiegen 1,2. CRM ist ein leistungsstarkes chemisches Bildgebungsverfahren mit zwei beliebten Varianten: der kohärenten Anti-Stokes-Raman-Streuung (CARS) und der stimulierten Raman-Streuung (SRS)-Mikroskopie. SRS wird im Vergleich zu CARS immer beliebter, da es weniger von Nicht-Raman-Hintergrundinterferenzen beeinflusst wird und eine lineare Abhängigkeit von der Konzentration3 aufweist. CRM erfasst molekulare Schwingungsinformationen ähnlich wie die Raman-Spektroskopie, bietet aber eine deutlich verbesserte Erfassungsgeschwindigkeit4. Dies wird durch kohärente Schwingungsanregung durch ein Paar gepulster Laser mit hoher Spitzenintensität erreicht. Da CRM eine ortsaufgelöste chemische Kartierung mit hoher räumlicher und zeitlicher Auflösung ermöglicht, hat es wichtige Anwendungen in der Krebsdiagnose, im Fettstoffwechsel, im Zellstoffwechsel, beim Medikamententransport und vielen anderen gefunden 5,6,7,8. Ein großer Engpass, der eine breite Einführung der Technik behindert, ist jedoch ihre technische Komplexität und das Fehlen standardisierter Protokolle. Obwohl kommerzielle Laser und Mikroskope bereits verfügbar sind, beinhalten fast alle Systeme, die derzeit in diesem Feld eingesetzt werden, verschiedene Stufen der Anpassung von Lasern, Optiken, Mikroskopen und Detektoren, was ein erhebliches Hindernis für Forscher darstellt, die daran interessiert sind, in das Feld einzusteigen oder diese Technologie zu übernehmen. Der fehlende Zugang behindert biologische Anwendungen zusätzlich. Das Ziel dieser Methodensammlung ist es, detaillierte Beispiele und Anleitungen zu Instrumenten, neuen Bildgebungsansätzen und in vitro/in vivo Zell- oder Gewebebildgebungsanwendungen bereitzustellen. Wir haben sieben Veröffentlichungen von Experten auf diesem Gebiet aufgenommen, die hier zusammengefasst sind.

Clark et al. präsentieren einen direkten Vergleich von hyperspektraler SRS und CARS in Bezug auf Empfindlichkeit, räumliche Auflösung und spektrale Auflösung9. Beide Techniken werden mit der spektralen Fokussierung von Femtosekundenlasern implementiert, einem häufig verwendeten Ansatz, bei dem die spektral chirpedierten Breitband-Femtosekundenlaser verwendet werden, um eine schmalbandige Raman-Auflösung zu erreichen. Ein direkter Vergleich ermöglicht die Beurteilung von Detektionsunterschieden und die optimale Auswahl der Modalität für verschiedene Anwendungen der chemischen Bildgebung.

De la Cadena et al. veröffentlichen eine neue Multiplex-SRS-Methode, mit der Breitband-SRS-Bilder schnell erfasst werden können10. Die Technik basiert auf einer kundenspezifischen differentiellen Mehrkanal-Lock-in-Verstärkererkennung, die die gleichzeitige Erkennung von bis zu 32 Kanälen ermöglicht. Darüber hinaus wird eine detaillierte Charakterisierung des Rauschens gezeigt und eine ausgewogene Detektionsmethode zur Eliminierung von Laserrauschen demonstriert. Dieses Protokoll bietet praktische Anleitungen für Benutzer, die am Aufbau von Multiplex-SRS-Systemen interessiert sind.

Shi et al. zeigen die Verwendung von hochmultiplexierten Raman-Farbstoffen in der SRS-Bildgebung11. Mit einer Präresonanzverstärkung zeigen sie, dass SRS eine Empfindlichkeit bieten könnte, die mit der Standard-Immunfluoreszenz vergleichbar ist. Diese Methode umgeht die Grenze der spektral auflösbaren Kanäle in der konventionellen Immunfluoreszenz und ermöglicht die gleichzeitige Überwachung vieler Proteine und die Untersuchung ihrer Wechselwirkungen. Detaillierte Anleitungen zur Probenverarbeitung und zur Raman-Farbstofffärbung werden bereitgestellt, um die Einführung dieser leistungsstarken Methode zu erleichtern.

Miao et al. stellen die Vibrationsbildgebung von geschwollenem Gewebe und Analyse (VISTA) vor, ein hochauflösendes Bildgebungsverfahren, das SRS mit Expansionsmikroskopie kombiniert12. VISTA umgeht Hindernisse, die mit der Fluoreszenzbildgebung verbunden sind, und ermöglicht eine markierungsfreie, superaufgelöste volumetrische Bildgebung in biologischen Proben mit einer räumlichen Auflösung von bis zu 78 nm. Darüber hinaus nutzen sie einen Deep-Learning-Algorithmus, um eine Segmentierung mehrerer Komponenten zu erreichen, einschließlich Proteinaggregaten in Zellen und Gehirngeweben.

Espinoza et al. stellen den Einsatz der zweifarbigen Echtzeit-SRS-Bildgebung von Proteinen und Lipiden für gewebediagnostische Anwendungenvor 13. Die zweifarbige SRS-Bildgebung kann H&E-äquivalente Bilder für Pathologieanwendungen erzeugen. Dieses Protokoll beschreibt die Details der Implementierung einer orthogonalen Modulationstechnik und spektralen Fokussierung für die simultane zweifarbige SRS-Bildgebung. Die Umwandlung von zweifarbigen SRS-Bildern in Pseudo-H&E-Bilder wird auch mit Hirngewebe von Mäusen demonstriert, um Anwendungen für die Gewebediagnose zu veranschaulichen.

Yuan et al. veröffentlichen ein flexibles Kammersystem für die Langzeit-SRS-Bildgebung von lebenden Zellen14. Die meisten der vorhandenen Beobachtungskammern für lebende Zellen sind für Hellfeld- und Fluoreszenzbildgebung ausgelegt. Sie sind mit der SRS-Detektion nicht kompatibel, da ein Objektiv und ein Kondensator mit hoher NA erforderlich sind. Die Autoren demonstrieren eine 24-Stunden-Zeitraffer-SRS-Bildgebung mit der flexiblen Kammer, die Temperatur, CO2 und Luftfeuchtigkeit konstant hält.

Schließlich demonstrieren Wu et al. simultane in vivo Zwei-Photonen-Fluoreszenz (TPEF) und SRS-Bildgebung15. Zwei separate Lasersysteme werden kombiniert, um eine optimale Empfindlichkeit für beide Bildgebungsmodalitäten zu erreichen und komplementäre Informationen zu liefern. Im lebenden Organismus Die SRS-Bildgebung von Gewebe stellt besondere Herausforderungen dar, da depolarisiertes, rückgestreutes Licht epi-detektiert werden muss. In diesem Protokoll werden die Details des optimalen Aufbaus eines TPEF-SRS-Mikroskops erläutert und erläutert, wie es für die In-vivo-Bildgebung des Rückenmarks der Maus verwendet werden kann.

Diese Sammlung von Publikationen repräsentiert den aktuellen Stand der Technik in der CRM-Instrumentierung und den technischen Fortschritt. Forscher, die sich sowohl für die Methodenentwicklung als auch für die Anwendung interessieren, werden diese Sammlung nützlich finden, um Setups zu vergleichen und Benchmarks (Empfindlichkeit, Auflösung usw.) für den Aufbau oder die Optimierung ihrer eigenen Systeme zu erstellen. Die in diesen Protokollen enthaltenen Leitlinien und Best Practices werden in die bestehenden und zukünftigen In-vitro - und In-vivo-Anwendungen einfließen. Die großflächige Einführung der CRM-Technologie wartet noch auf wichtige und innovative Anwendungen und die Kommerzialisierung kompletter CRM-Lösungen. Nichtsdestotrotz ist die Standardisierung von Bildgebungsansätzen und Benchmarks unerlässlich, um Reproduzierbarkeit und Zuverlässigkeit zu gewährleisten und eine breitere Implementierung von CRM16 zu ermöglichen.

Der Bereich CRM wächst in rasantem Tempo. Die technischen Entwicklungen, die die Grenzen der Empfindlichkeit, Spezifität und Auflösung überschreiten, treiben die Technologie weiterhin in neue Gebiete. Zum Beispiel beginnt die räumliche Auflösung von SRS die Beugungsgrenze17,18 zu überschreiten. Die Empfindlichkeit der elektronischen Vorresonanz SRS nähert sich nun der der Fluoreszenz19 an. Im Vergleich zur Fluoreszenz hat CRM deutliche Vorteile. Zum Beispiel ermöglichte die Verwendung der Deuterium-Verfolgung zum ersten Mal die In-vivo-Untersuchung der metabolischen Dynamik kleiner Moleküle mit einer subzellulären Auflösung20. Mit kleinen Tags ist es möglich, eine hochgradig gemultiplexte Raman-Detektion von 24 oder mehr markierten Zielen21 durchzuführen. Die Fortschritte in der künstlichen Intelligenz ermöglichen neue Funktionen für CRM, indem sie den hohen Informationsgehalt und die molekularspezifischen Merkmale nutzen, um Objekte mit subtilen räumlichen und spektralen Merkmalsunterschieden zu segmentieren und zu klassifizieren22. Zusammengenommen sind diese technischen Fortschritte im Bereich CRM bereit, die Anwendungen sowohl in der biologischen als auch in der biomedizinischen Bildgebung zu beschleunigen und zu erweitern.

Offenlegungen

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Der Autor hat nichts offenzulegen.

Danksagungen

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Der Autor dankt für die finanzielle Unterstützung durch das National Institute of Health (NIH R35 GM133435) und den Eli Lilly Young Investigator Award.

Referenzen

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  1. Cheng, J. -X., Xie, X. S. Vibrational spectroscopic imaging of living systems: An emerging platform for biology and medicine. Science. 350 (6264), (2015).
  2. Hill, A. H., Fu, D. Cellular imaging using stimulated Raman scattering microscopy. Analytical Chemistry. 91 (15), 9333-9342 (2019).
  3. Min, W., Freudiger, C. W., Lu, S., Xie, X. S. Coherent nonlinear optical imaging: Beyond fluorescence microscopy. Annual Review of Physical Chemistry. 62 (1), 507-530 (2011).
  4. Freudiger, C. W., et al. Label-Free biomedical imaging with high sensitivity by stimulated Raman scattering microscopy. Science. 322 (5909), 1857-1861 (2008).
  5. Hollon, T. C., et al. Near real-time intraoperative brain tumor diagnosis using stimulated Raman histology and deep neural networks. Nature Medicine. 26 (1), 52-58 (2020).
  6. Yue, S., et al. Cholesteryl ester accumulation induced by PTEN loss and PI3K/AKT activation underlies human prostate cancer aggressiveness. Cell Metabolism. 19 (3), 393-406 (2014).
  7. Fu, D., et al. In vivo metabolic fingerprinting of neutral lipids with hyperspectral stimulated Raman scattering microscopy. Journal of the American Chemical Society. 136 (24), 8820-8828 (2014).
  8. Fu, D., et al. Imaging the intracellular distribution of tyrosine kinase inhibitors in living cells with quantitative hyperspectral stimulated Raman scattering. Nature Chemistry. 6 (7), 614-622 (2014).
  9. Clark, M. G., Brasseale, K. A., Gonzalez, G. A., Eakins, G., Zhang, C. Direct comparison of hyperspectral stimulated Raman scattering and coherent anti-Stokes Raman scattering microscopy for chemical imaging. Journal of Visualized Experiments. (182), e63677(2022).
  10. Dela Cadena, A., et al. Multiplex chemical imaging based on broadband stimulated Raman scattering microscopy. Journal of Visualized Experiments. (185), e63709(2022).
  11. Shi, L., Wei, M., Min, W. Highly-Multiplexed tissue imaging with Raman dyes. Journal of Visualized Experiments. (182), e63547(2022).
  12. Miao, K., Lin, L. E., Qian, C., Wei, L. Label-Free super-resolution imaging enabled by vibrational imaging of swelled tissue and analysis. Journal of Visualized Experiments. (183), e63824(2022).
  13. Espinoza, R., Wong, B., Fu, D. Real-Time, two-color stimulated Raman scattering imaging of mouse brain for tissue diagnosis. Journal of Visualized Experiments. (180), e63484(2022).
  14. Yuan, Y., Lu, F. A flexible chamber for time-lapse live-cell imaging with stimulated Raman scattering microscopy. Journal of Visualized Experiments. (186), e64449(2022).
  15. Wu, W., Li, X., Qu, J. Y., He, S. In vivo imaging of biological tissues with combined two-photon fluorescence and stimulated Raman scattering microscopy. Journal of Visualized Experiments. (178), e63411(2021).
  16. Manifold, B., Fu, D. Quantitative stimulated Raman scattering microscopy: Promises and pitfalls. Annual Review of Analytical Chemistry. 15 (1), 269-289 (2022).
  17. Qian, C., et al. Super-resolution label-free volumetric vibrational imaging. Nature Communications. 12 (1), 3648(2021).
  18. Graefe, C. T., et al. Far-Field super-resolution vibrational spectroscopy. Analytical Chemistry. 91 (14), 8723-8731 (2019).
  19. Wei, L., Min, W. Electronic preresonance stimulated Raman scattering microscopy. The Journal of Physical Chemistry Letters. 9 (15), 4294-4301 (2018).
  20. Zhang, L., et al. Spectral tracing of deuterium for imaging glucose metabolism. Nature Biomedical Engineering. 3 (5), 402-413 (2019).
  21. Wei, L., et al. Super-multiplex vibrational imaging. Nature. 544 (7651), 465-470 (2017).
  22. Manifold, B., Men, S., Hu, R., Fu, D. A versatile deep learning architecture for classification and label-free prediction of hyperspectral images. Nature Machine Intelligence. 3, 306-315 (2021).

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Hyperspectral Stimulated Raman ScatteringCoherent Anti Stokes Raman ScatteringChemical ImagingMultiplex Chemical ImagingStimulated Raman Scattering MicroscopyTissue ImagingVibrational ImagingLive cell ImagingIn Vivo ImagingReal time ImagingSuper resolution Imaging

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