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Jüngste Fortschritte bei Methoden zur Analyse von Lipiden und Fettsäuren

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DOI:

10.3791/64976

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3. März 2023

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

DISKUTIERTE ARTIKEL:

Parrish, C. C., Wells, J. S. Bestimmung der Gesamtlipid- und Lipidklassen in marinen Proben. Zeitschrift für visualisierte Experimente. (178), e62315 (2021).

Porter, M. J., Zhang, G. L., Schnaar, R. L. Gangliosid-Extraktion, -Reinigung und -Profilierung. Zeitschrift für visualisierte Experimente. (169), e62385 (2021).

Angelini, R., Russo, S., Corcelli, A., Lobasso, S. Fingerabdruck von Cardiolipin in Leukozyten durch Massenspektrometrie für eine schnelle Diagnose des Barth-Syndroms. Zeitschrift für visualisierte Experimente. (181), e63552 (2022).

Salar-Behzadi, S., Corzo, C., Laggner, P. Ein Paket etablierter Analysewerkzeuge zur Untersuchung der Festkörperveränderung von lipidbasierten Hilfsstoffen. Zeitschrift für visualisierte Experimente. (186), e63993 (2022).

Editorial

Lipide stellen eine große Klasse von Molekülen dar, die eine wichtige Rolle in biologischen Prozessen spielen. Aufgrund der großen Anzahl und Vielfalt von Lipidspezies in verschiedenen biologischen Systemen bleibt die schnelle und genaue Quantifizierung von Lipiden eine schwierige Aufgabe, insbesondere wenn es sich bei den Zielmolekülen um Lipidspezies mit geringer Abundanz handelt, die komplex und selten sind. Jüngste Fortschritte bei der Extraktion, Identifizierung und Quantifizierung von Lipiden haben das Verständnis der Funktionen verschiedener Lipidspezies erheblich gefördert. Diese Methodensammlung zielt darauf ab, die jüngsten Fortschritte bei den Methoden abzudecken, die für die Analyse von Lipiden aus verschiedenen Quellen entwickelt wurden, einschließlich Fortschritten bei der Probenvorbereitung, -trennung, -identifizierung und -quantifizierung.

Ziel der von Parrish und Wells beschriebenen Methode ist es, den Gesamtlipidgehalt zu bestimmen und die Lipidspezies in marinen Probenzu unterscheiden 1. Die Lipide und biologischen Proben im Meerwasser werden zunächst durch Filtration gesammelt und dann durch Flüssig-Flüssig-Extraktion in unpolaren organischen Lösungsmitteln, die aus Chloroform oder Gemischen aus Chloroform und Methanol bestehen, zurückgewonnen. Letzteres Gemisch wird verwendet, wenn Feststoffe vorhanden sind. Nach der FAME-Derivatisierung mit H2SO4 in MeOH werden die Lipide mittels Stäbchen-Dünnschichtchromatographie gemessen und mittels Flammenionisation detektiert. Der Vorteil dieser Methode besteht darin, dass partikuläre lipidhaltige Fraktionen mariner Proben im Trennschritt mit Filtern an einem definierten Cutoff isoliert werden können. Darüber hinaus erleichtert die Flüssig-Flüssig-Extraktion die Trennung der Lipide von den anderen Bestandteilen der wässrigen Matrix. Die hydrophobe Natur von Lipiden trägt zur Isolierung von Lipiden aus Meeresproben und deren Anreicherung bei. Das Protokoll kann in ökologischen und biogeochemischen Studien zur Bewertung der Gesundheit von Ökosystemen Anwendung finden, z. B. in Studien, die den Grad der Auswirkungen der Anthropogenese auf ein Ökosystem messen.

Ganglioside sind Sialinsäure-haltige Glykosphingolipide und kommen im Gehirn extrem häufig vor. Ganglioside sind physiologische Modifikatoren und therapeutische Ziele für Krebs, Stoffwechsel und Gehirnfunktion. In diesem Zusammenhang beschreiben Porter et al. Methoden auf Laborebene, die für die Isolierung, Reinigung und semiquantitative oder qualitative Analyse von Gangliosiden verwendet werden können2. Diese Techniken, zu denen auch die Dünnschichtchromatographie-Analyse gehört, ermöglichen die Maximierung der Gangliosidausbeute im großen und kleinen Maßstab bei gleichzeitiger Rationalisierung der Reinigung und gewährleisten eine optimale Rückgewinnung und genaue Analysen. Die hier beschriebene Methode ist nützlich für Forscher, die sich für die Isolierung, Reinigung und Analyse von Gangliosiden in der biomedizinischen Forschung und therapeutischen Entwicklung interessieren.

Die von Angelini et al. entwickelte Methode wird zur Erzeugung eines Cardiolipin-Fingerabdrucks von Leukozyten mittels MALDI-TOF-Massenspektrometrie3 verwendet. Die Methode ermöglicht die Messung des Verhältnisses zwischen Monolysocardiolipin und Cardiolipin für die schnelle Diagnose des Barth-Syndroms. Die MALDI-TOF-Massenspektrometrie wird verwendet, um die Lipidprofile kleiner Mengen verschiedener biologischer Proben zu erhalten, um Lipid-Biomarker oder pathologische Veränderungen zu identifizieren. Der Hauptvorteil dieser Technik ist der Nachweis diagnostischer Lipidspezies durch eine einzige Runde Massenspektrometrie unmittelbar nach der Isolierung von Leukozyten aus 1 ml Blut. Die hohe Effizienz und die Augensensitivität und Spezifität dieses Assays machen ihn zu einem geeigneten diagnostischen Test, der in die Routinearbeit klinischer Laboratorien für das Screening des Barth-Syndroms integriert werden soll.

Lipidbasierte Hilfsstoffe (LBEs) haben bestimmte Vorteile, wie z. B. geringe Toxizität, gute Biokompatibilität und natürliche Verarbeitung, und die Anwendung von LBEs trägt zur nachhaltigen Entwicklung der pharmazeutischen Herstellung bei. Daher ist das Verständnis von Festkörperveränderungen in LBEs und deren Auswirkungen auf die Leistung von LBE-Pharmaprodukten ein Schlüsselfaktor bei der Herstellung robuster lipidbasierter Darreichungsformen. Das von Salar-Behzadi et al. beschriebene Protokoll zeigt, dass Röntgenbeugung und dynamische Differenzkalorimetrie als Goldstandards bei der Untersuchung von Festkörper-LBEs bezeichnet werdenkönnen 4. Wenn LBEs als Beschichtungsmaterial oder als Verkapselungsmatrix verwendet werden, ermöglicht die dynamische Differenzkalorimetrie (DSC) das Screening des thermischen Verhaltens von Lipiden und die Beurteilung der Mischbarkeit der potenziell aktiven pharmazeutischen Wirkstoffe (API).

Obwohl Protokolle für die Lipidanalyse gut dokumentiert sind, müssen sie für die Anwendung auf verschiedene wissenschaftliche Bereiche oft je nach Forschungsbedingungen und Probentypen angepasst werden. In den Wasserwissenschaften ist die Bestimmung der Lipidspezies und des Gehalts von Wasserorganismen ein florierendes Forschungsgebiet5. Ein Chromarod Iatroscan TLC-FID-System kann schnelle synoptische Lipidklassendaten aus kleinen Proben generieren. Daher kann es zum Screening von Meeresproben verwendet werden, bevor detaillierte chromatographische Studien durchgeführt werden. In Kombination mit qualitativen mikroskopischen Methoden kann dieses System ein sehr nützliches Werkzeug sein, um die Kristallisation auf Mikroebene zu untersuchen.

Bisher ist die Charakterisierung isomerer Lipide immer noch eine Herausforderung, da Spezies vorhanden sind, die ausgefeilte Strukturen aufweisen, wie z. B. Doppelbindungspositionen, unterschiedliche Orientierungen und multiple Acylkettenkonnektivität mit unterschiedlicher funktioneller Gruppenstereochemie6. In Zukunft werden kombinierte Ansätze und/oder fortschrittliche Analysetechniken für eine effektive Lipidcharakterisierung und, was noch wichtiger ist, für ein besseres Verständnis der neuen Lipidspezies benötigt, die kontinuierlich entdeckt werden7. Passend zum gewählten Probenvorbereitungsprozess sollten weitere Analysewerkzeuge entwickelt werden. Um hochwirksame lipidbasierte Pharmazeutika zu entwickeln, ist es notwendig, die Beziehungen zwischen Struktur, Funktion und Verarbeitbarkeit von Lipiden zu verstehen. Dieses Verständnis wird wiederum zur Etablierung neuer Lipidfunktionsrollen und zur Entwicklung effizienterer Krankheitsdiagnostika und Medikamente führen. Darüber hinaus sind Hochdurchsatzverfahren für das schnelle Screening der Zellen, die Lipide oder Fettsäuren produzieren, sehr wünschenswert. In diesem Zusammenhang hat diese Methodensammlung gezeigt, dass optimierte Analysetechniken verschiedene Lipidspezies mit hoher Genauigkeit und Spezifität charakterisieren können und dass die Optimierung und Standardisierung aktueller Methoden das Verständnis der biologischen Mechanismen von Lipiden und deren Verwendung fördern könnte.

Offenlegungen

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Danksagungen

Die Autoren haben keine Danksagungen.

Referenzen

  1. Parrish, C. C., Wells, J. S. Determination of total lipid and lipid classes in marine samples. Journal of Visualized Experiments. (178), e62315(2021).
  2. Porter, M. J., Zhang, G. L., Schnaar, R. L. Ganglioside extraction, purification and profiling. Journal of Visualized Experiments. (169), e62385(2021).
  3. Angelini, R., Russo, S., Corcelli, A., Lobasso, S. Fingerprinting cardiolipin in leukocytes by mass spectrometry for a rapid diagnosis of Barth syndrome. Journal of Visualized Experiments. (181), e63552(2022).
  4. Salar-Behzadi, S., Corzo, C., Laggner, P. A package of established analytical tools to investigate the solid-state alteration of lipid-based excipients. Journal of Visualized Experiments. (186), e63993(2022).
  5. Couturier, L. I. E., et al. State of art and best practices for fatty acid analysis in aquatic sciences. ICES Journal of Marine Science. 77 (7-8), 2375-2395 (2020).
  6. Zheng, X., Smith, R. D., Baker, E. S. Recent advances in lipid separations and structural elucidation using mass spectrometry combined with ion mobility spectrometry, ion-molecule reactions and fragmentation approaches. Current Opinion in Chemical Biology. 42, 111-118 (2018).
  7. Merrill, A. H., Dennis, E. A., McDonald, J. G., Fahy, E. Lipidomics technologies at the end of the first decade and the beginning of the next. Advances in Nutrition. 4 (5), 565-567 (2013).

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