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Vergleich zweier repräsentativer Methoden zur Differenzierung humaner induzierter pluripotenter Stammzellen in mesenchymale Stromazellen

DOI:

10.3791/65729

October 20th, 2023

In This Article

Summary

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Dieses Protokoll beschreibt und vergleicht zwei repräsentative Methoden zur Differenzierung von hiPSCs in mesenchymale Stromazellen (MSCs). Die Monolayer-Methode zeichnet sich durch geringere Kosten, einfachere Bedienung und leichtere osteogene Differenzierung aus. Die Methode der Embryoidkörper (EBs) zeichnet sich durch einen geringeren Zeitaufwand aus.

Abstract

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Mesenchymale Stromazellen (MSCs) sind adulte pluripotente Stammzellen, die in der regenerativen Medizin weit verbreitet sind. Da MSCs aus somatischem Gewebe durch begrenzte Spende, Qualitätsschwankungen und Biosicherheit eingeschränkt sind, haben in den letzten 10 Jahren die Bemühungen, MSCs aus humanen induzierten pluripotenten Stammzellen (hiPSCs) zu erzeugen, stark zugenommen. Frühere und neuere Bemühungen zur Differenzierung von hiPSCs in MSCs konzentrierten sich auf zwei Kulturmethoden: (1) die Bildung von Embryoidkörpern (EBs) und (2) die Verwendung von Monolayer-Kulturen. Dieses Protokoll beschreibt diese beiden repräsentativen Methoden zur Ableitung von MSC aus hiPSCs. Jede Methode hat ihre Vor- und Nachteile, einschließlich Zeit, Kosten, Zellproliferationsfähigkeit, der Expression von MSC-Markern und ihrer Fähigkeit zur Differenzierung in vitro. Dieses Protokoll zeigt, dass beide Methoden reife und funktionelle MSCs aus hiPSCs ableiten können. Die Monolayer-Methode zeichnet sich durch geringere Kosten, einfachere Bedienung und leichtere osteogene Differenzierung aus, während sich die EB-Methode durch einen geringeren Zeitaufwand auszeichnet.

Introduction

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Mesenchymale Stromazellen (MSCs) sind aus dem Mesoderm gewonnene adulte pluripotente Stammzellen1. MSCs sind in fast allen Bindegeweben vorhanden2. Seit MSCs in den 1970er Jahren entdeckt und 1987 von Friedenstein et al.3,4,5 erfolgreich aus dem Knochenmark isoliert wurden, wurde eine Vielzahl von menschlichen somatischen (einschließlich fetaler und adulter) Gewebe wie Knochen, Knorpel, Sehnen, Muskeln, Fettgewebe und hämatopoetisches unterstützendes Stroma zur Isolierung von MSCs verwendet 1,2....

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Protocol

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1. Wartung von hiPSCs

  1. Auftauen von hiPSC
    1. Nehmen Sie die Zellen aus dem flüssigen Stickstoff und tauen Sie die Zellen in einem 37 °C warmen Wasserbad schnell auf. Die auftauenden Zellen werden in ein 15-ml-Röhrchen überführt, das mit 3 ml iPSC-Erhaltungsmedium vorbereitet ist (Materialtabelle). Mischen Sie das Medium vorsichtig.
    2. Bei 300 x g 5 min zentrifugieren. Entfernen Sie den Überstand und resuspendieren Sie die Zellen vorsichtig in 1 ml iPSC-Erhaltungsmedium mit 10 μM Y-27632 (Pitaptieren Sie die Zellen 2-3 Mal nach oben und unten).
    3. Die Zellsuspension wird in eine 6-Well-Gewebekultur....

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Results

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In Anlehnung an das Protokoll (Abbildung 1A) wurden hiPSCs mit Hilfe der EB-Bildung und der Monolayer-Kulturmethode in MSCs differenziert. Während der Differenzierung zeigten die Zellen unterschiedliche repräsentative Morphologien (Abbildung 1B,C).

Wie in Abbildung 1B dargestellt, zeigen die hiPS-Kolonien vor der Differenzierung eine typische kompakte Morphologie mit einem klaren Rand, de.......

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Discussion

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In diesem Protokoll wurden zwei repräsentative Methoden zur Differenzierung von hiPSCs in MSCs untersucht 20,21,22,23,24,25,26,27,28,30. Beide Methoden waren in der Lage, MSCs aus hiPSCs .......

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Disclosures

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Die Autoren haben nichts zu verraten.

Acknowledgements

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Wir sind allen ehemaligen und gegenwärtigen Mitgliedern des Mao- und Hu-Labors sehr dankbar für die interessanten Diskussionen und die großartigen Beiträge zum Projekt. Wir danken dem National Clinical Research Center for Child Health für die großartige Unterstützung. Diese Studie wurde finanziell unterstützt von der National Natural Science Foundation of China (U20A20351 an Jianhua Mao, 82200784 an Lidan Hu), der Natural Science Foundation der chinesischen Provinz Zhejiang (No. LQ22C070004 an Lidan Hu).

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Alizarinrot FärbesetBeyotime  BiotechnologieC0148S
Anti-Mensch-CD105 (PE)Biolegend323206
Anti-Mensch-CD34 (FITC)Biolegende343503
Anti-Mensch-CD45 (APC)Biolegend304011
Anti-Mensch-CD73( APC)Biolegend344006
Anti-Mensch-CD90 (FITC)Biolegend328108
AscorbinsäureSolarbioA8100
BMP-6NovoproteinC012
Kohlendioxid-SchüttlerCrystalCO-06UC6
KompensationsperlenBioLegend424601
CryoStor CS10STEMCELL Technology07959
DexamethasonBeyotime  BiotechnologieST1254
DMEM/F12  MediumServicebioG4610
Fötales RinderserumHAKATAHS-FBS-500
FGF2Stammzelle78003.1
GelatineSigma-AldrichG2500-100G
GlutaMAXGibco35050061
humane IgG1-Isotypkontrolle APCBioLegend403505
humane IgG1-Isotypkontrolle FITCBioLegend403507
humane IgG1-Isotypkontrolle PEBioLegend403503
Human TGF-β 1Stammzelle78067
TruStain FcX BioLegend422301
IBMXBeyotime  BiotechnologieST1398
IndomethacinSolarbioSI9020
InsulinBeyotime  BiotechnologieP3376
iPSC-ErhaltungsmediumSTEMCELL Technology85850
ITS Media SupplementBeyotime  BiotechnologieC0341-10mL
Matrigel, Wachstumsfaktor reduziertBD Corning354230
Oli Red O FärbekitBeyotime  BiotechnologieC0158S
ProlineSolarbioP0011
NatriumpyruvatThermoFisher11360-070
TGFβ 3NovoproteinCJ44
Toluidinblau-FärbekitSolarbioG2543
TrypLE Express Enzym(1x) Gibco12604013
Ultra-Low Attachment 6 Well PlateCostar3471
VerseneGibco15040-66
Y-27632Stemcell72304
α-MEMHycloneSH30265
β-GlycerophosphatSolarbioG8100

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Weng, Z., et al. Mesenchymal stem/stromal cell senescence: Hallmarks, mechanisms, and combating strategies. Stem Cells Translational Medicine. 11 (4), 356-371 (2022).
  2. Soliman, H., et al. Multipotent stromal cells: One n....

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Induced Pluripotent Stem CellsMesenchymal Stromal CellsEmbryoid Body FormationMonolayer CultureMSC DifferentiationFlow CytometryOsteogenic DifferentiationSpindle Shaped MorphologyMSC MarkersRegenerative Medicine

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