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Methodenartikel

In vivo Visualisierung der spontanen Aktivität im sensorischen Kortex von Neonatalen Mäusen mit einer Auflösung von einzelnen Neuronen

1.7K Aufrufe

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DOI:

10.3791/65899

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21. November 2023

 ,  ,  , 

* These authors contributed equally

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Primäre sensorische Areale im Neokortex zeigen während der Entwicklung einzigartige spontane Aktivitäten. In diesem Artikel wird beschrieben, wie einzelne Neuronenaktivitäten und primäre sensorische Areale visualisiert werden können, um bereichsspezifische synchrone Aktivitäten bei neugeborenen Mäusen in vivo zu analysieren.

Zusammenfassung

Das Gehirn von Säugetieren durchläuft während der pränatalen und postnatalen Periode dynamische Entwicklungsveränderungen sowohl auf zellulärer als auch auf Schaltkreisebene. Nach der Entdeckung zahlreicher Gene, die zu diesen Entwicklungsveränderungen beitragen, ist nun bekannt, dass auch die neuronale Aktivität diese Prozesse wesentlich moduliert. In der sich entwickelnden Großhirnrinde weisen Neuronen synchronisierte Aktivitätsmuster auf, die auf jeden primären sensorischen Bereich spezialisiert sind. Diese Muster unterscheiden sich deutlich von denen, die in der reifen Hirnrinde beobachtet werden, was ihre Rolle bei der Regulierung bereichsspezifischer Entwicklungsprozesse unterstreicht. Defizite in der neuronalen Aktivität während der Entwicklung können zu verschiedenen Erkrankungen des Gehirns führen. Diese Ergebnisse unterstreichen die Notwendigkeit, die Regulationsmechanismen zu untersuchen, die den Aktivitätsmustern in der neuronalen Entwicklung zugrunde liegen. Diese Arbeit fasst eine Reihe von Protokollen zusammen, um primäre sensorische Areale und neuronale Aktivität bei neonatalen Mäusen zu visualisieren, die Aktivität einzelner Neuronen innerhalb der kortikalen Teilfelder mittels Zwei-Photonen-Mikroskopie in vivo abzubilden und teilfeldbezogene Aktivitätskorrelationen zu analysieren. Wir zeigen repräsentative Ergebnisse der Patchwork-artigen synchronen Aktivität innerhalb einzelner Fässer im somatosensorischen Kortex. Wir diskutieren auch verschiedene mögliche Anwendungen und einige Einschränkungen dieses Protokolls.

Einleitung

Die Großhirnrinde umfasst mehrere sensorische Areale mit unterschiedlichen Funktionen. Die Areale erhalten Eingaben, die von den entsprechenden Sinnesorganen ausgehen und meist über das Rückenmark oder den Hirnstamm weitergeleitet und über den Thalamus 1,2 weitergeleitet werden. Bemerkenswert ist, dass Neuronen in jedem primären sensorischen Bereich während der frühen Entwicklungsstadien eine einzigartig synchronisierte Aktivität aufweisen, die ebenfalls von den Sinnesorganen oder den unteren Nervenzentren ausgeht, sich aber im Wesentlichen von den Aktivitäten unterscheidet, d....

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Protokoll

Alle Versuche wurden in Übereinstimmung mit den Richtlinien für Tierversuche der Universität Kumamoto und des Nationalen Instituts für Genetik durchgeführt und von den Tierversuchskommissionen genehmigt.

1. In-utero-Elektroporation (IUE)

  1. Verpaaren Sie männliche TCA-RFP-Mäuse mit ICR-Hintergrund mit weiblichen Wildtyp-ICR-Mäusen. Beobachten Sie den Vaginalpfropfen, um am frühen Morgen des nächsten Tages nach Paarung zu suchen. Beobachten Sie den Bauch, um 2 Wochen später nach einer Schwangerschaft zu suchen.
  2. Bereiten Sie eine Plasmidlösung her, die 5 ng/μl TRE-nCre, 1 μg/μl CAG-loxP-stop-loxP-GCa....

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Ergebnisse

Abbildung 1 zeigt die repräsentativen Ergebnisse der Neuronenaktivitäten der Schicht 4 im Fasskortex eines P6-Welpen, die mit dem vorliegenden Protokoll visualisiert wurden. Zwei-Photonen-Bilder des grünen Kanals (GCaMP) und des roten Kanals (TCA-RFP) wurden zeitlich gemittelt und in Abbildung 1A dargestellt. Da die TCA-RFP-Fluoreszenz viel schwächer war als die GCaMP-Fluoreszenz, sickerte das GCaMP-Signal in den roten Kanal (Abbildung 1A1

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Diskussion

Angesichts der Tatsache, dass die spontanen Aktivitäten aus dem Sinnesorgan oder dem unteren Nervensystem hervorgehen und über einen Weg, der dem eines reifen Nervensystems3 entspricht, zum primären sensorischen Bereich gelangen, ist es entscheidend, den primären sensorischen Bereich und die Position der abgebildeten Neuronen innerhalb des Bereichs zu definieren. In diesem Protokoll haben wir diese Anforderung erfüllt, indem wir transgene Mäuse eingesetzt haben, d.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben keine konkurrierenden finanziellen Interessen zu deklarieren.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde unterstützt von der Japan Society for the Promotion of Science Grants-in-Aid for Transformative Research Areas (B) (22H05092, 22H05094) und für Scientific Research Grants 20K06876, AMED unter der Fördernummer 21wm0525015, der Takeda Science Foundation, der Naito Foundation, der Kato Memorial Bioscience Foundation, der Kowa Life Science Foundation, NIG-JOINT (24A2021) (an H.M.); und der Japan Society for the Promotion of Science Grants-in-Aid für wissenschaftliche Forschungsstipendien 19K06887 und 22K06446, dem Kodama Memorial Fund for Medical Research, der Uehara Memorial Foundation, der Kato Memorial Bioscience Fou....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
20-fache Objektivlinse (Eintauchen in Wasser)
250 mL Vakuumfilter/VorratsflaschensystemCorning431096
4%-Paraformaldehydphosphat-Pufferlösung (4% PFA)Nacalai09154-85
Acrylharz (UNIFAST II)GCN/A
AgaroseSigmaA9793
AbsaugrohrDrummond2-040-000
CaCl2• 2H2ONacalai06731-05
ElektroporatorBEXGEB14
Augentropfen (Scopisol)Senju PharmaceuticalN/A
Fluoreszenz-StereomikroskopLeicaM165FC
GlukoseNacalai16806-25
HeizkissenMuromachi KikaiFHC-HPS
HEPESGibco15630-080
IsofluranPfizerN/A
KClNacalai28514-75
MgSO4• 7H2OWako131-00405
MikropipettenabzieherNarishigePC-100
MultiphotonenlaserSpectra-PhysicsMai Tai eHP DeepSee
MultiphotonenmikroskopZeissLSM 7MP
NaClNacalai31320-05
Vliesstoff (Kimwipe)Kimberly ClarkS-200
Phosphatgepufferte Kochsalzlösung (PBS)Nacalai27575-31
Plasmid: CAG-loxP-STOP-loxP-GCaMP6s-ires-tTA-WPREAddgenepK175
Plasmid: TRE-nCreAddgenepK031
Präzisionskalibrierte MikropipettenDrummond2-000-050
RasierklingeFederFA-10
Rimadyl (50 mg/mL Carprofen)Zoetis JPN/A
Rundes Deckglas, 3 mm Durchmesser MatsunamiCS01078
SalineOtsuka035175315
Natrium-PentobarbitalNacalai26427-72
Tisch für die Bildgebung lebender Welpen (zwei einachsige Translationstische für die XY-Positionierung, zweiachsiges Goniometer, Grundplatte, verstellbare Säule für die Z-Positionierung)ThorLabsLT1/M, GN2/M, BM2060/M, MLP01/M
TCA-RFP MausN/AN/ AMizuno et al., 2018a
Gewebekleber (Vetbond)3M1469SB
Titan StabEndo Scientific InstrumentN/ASonderanfertigung (Mizuno et al., 2018b)
Titan Stab BefestigungsplatteN/ASonderanfertigung (Mizuno et al., 2018b)
TrypanblauSigmaT8154
Pinzette mit Platinplattenelektrode, 5 mm DurchmesserBEXCUY650P5
Wildtyp-ICR-MausNihon SLCSlc:ICR

Referenzen

  1. Rao, M. S., Mizuno, H. Elucidating mechanisms of neuronal circuit formation in layer 4 of the somatosensory cortex via intravital imaging. Neuroscience Research. 167, 47-53 (2021).
  2. Iwasato, T., Erzurumlu, R. S. Development of....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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