Hier stellen wir ein Protokoll zur Transplantation von Zellen mit hoher räumlicher und zeitlicher Auflösung in Zebrafischembryonen und -larven in jedem Stadium zwischen mindestens 1 und 7 Tagen nach der Befruchtung vor.
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Methodenartikel
Hier stellen wir ein Protokoll zur Transplantation von Zellen mit hoher räumlicher und zeitlicher Auflösung in Zebrafischembryonen und -larven in jedem Stadium zwischen mindestens 1 und 7 Tagen nach der Befruchtung vor.
Entwicklung und Regeneration erfolgen durch einen Prozess genetisch kodierter raumzeitlich dynamischer zellulärer Interaktionen. Der Einsatz von Zelltransplantationen zwischen Tieren, um das Zellschicksal zu verfolgen und Diskrepanzen in den genetischen, räumlichen oder zeitlichen Eigenschaften von Spender- und Wirtszellen zu induzieren, ist ein wirksames Mittel, um die Art dieser Wechselwirkungen zu untersuchen. Organismen wie Küken und Amphibien haben entscheidende Beiträge zu unserem Verständnis von Entwicklung bzw. Regeneration geleistet, vor allem aufgrund ihrer Eignung für Transplantationen. Die Leistungsfähigkeit dieser Modelle wurde jedoch durch die geringe genetische Rückverfolgbarkeit begrenzt. Ebenso sind die wichtigsten genetischen Modellorganismen weniger anfällig für Transplantationen.
Der Zebrafisch ist ein wichtiges genetisches Modell für Entwicklung und Regeneration, und während Zelltransplantationen bei Zebrafischen üblich sind, beschränken sie sich im Allgemeinen auf den Transfer undifferenzierter Zellen in den frühen Entwicklungsstadien der Blastula und Gastrula. In diesem Artikel stellen wir eine einfache und robuste Methode vor, die das Zeitfenster für eine Zebrafischtransplantation auf jedes Embryonal- oder Larvenstadium zwischen mindestens 1 und 7 Tagen nach der Befruchtung erweitert. Die Präzision dieses Ansatzes ermöglicht die Transplantation von nur einer Zelle mit nahezu perfekter räumlicher und zeitlicher Auflösung sowohl bei Spender- als auch bei Wirtstieren. Während wir hier die Transplantation von embryonalen und larvalen Neuronen zur Untersuchung der Nervenentwicklung bzw. -regeneration hervorheben, ist dieser Ansatz auf ein breites Spektrum von Vorläufer- und differenzierten Zelltypen und Forschungsfragen anwendbar.
Die Zelltransplantation hat eine lange und geschichtsträchtige Geschichte als grundlegende Technik in der Entwicklungsbiologie. Um die Wende zum 20. Jahrhundert verwandelten Ansätze, die physikalische Manipulationen zur Störung des Entwicklungsprozesses, einschließlich der Transplantation, nutzten, um die Embryologie von einer beobachtenden Wissenschaft in eine experimentelle Wissenschaft 1,2. In einem bahnbrechenden Experiment transplantierten Hans Spemann und Hilde Mangold ektopisch die dorsale blastopore Lippe eines Salamanderembryos auf die gegenüberliegende Sei....
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Alle Aspekte dieses Verfahrens, die sich auf die Arbeit mit lebenden Zebrafischen beziehen, wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) der University of Minnesota genehmigt und werden in Übereinstimmung mit den IACUC-Richtlinien durchgeführt.
1. Einmalige Ersteinrichtung des Transplantationsgeräts (Abbildung 1)
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Die Ergebnisse von Transplantationsexperimenten werden direkt beobachtet, indem fluoreszenzmarkierte Spenderzellen in Wirtstieren zu geeigneten Zeitpunkten nach der Transplantation mit einem Fluoreszenzmikroskop sichtbar gemacht werden. Hier transplantierten wir einzelne anteriore Vagusneuronen bei 3 dpf. Die Wirtstiere wurden dann für 12 oder 48 Stunden inkubiert, anästhesiert, in LMA auf ein Glasdeckglas montiert und mit einem konfokalen Mikroskop abgebildet (Abbildung 5). 12 h nach der Tr.......
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Die Entwicklungs- und Regenerationsbiologie stützt sich seit über einem Jahrhundert auf Transplantationsexperimente, um die Prinzipien der Zellsignalübertragung und der Bestimmung des Zellschicksals zu untersuchen. Das Zebrafischmodell stellt bereits eine kraftvolle Verschmelzung von genetischen und Transplantationsansätzen dar. Die Transplantation im Blastula- und Gastrula-Stadium, um Mosaiktiere zu erzeugen, ist üblich, aber in Bezug auf die Fragestellungen, die sie beantworten kann, b.......
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Die Autoren haben keine Interessenkonflikte offenzulegen.
Wir danken Cecilia Moens für ihre Ausbildung in der Zebrafischtransplantation; Marc Tye für die hervorragende Fischpflege; und Emma Carlson für das Feedback zum Manuskript. Diese Arbeit wurde durch NIH-Zuschüsse unterstützt, die an A.J.I. NS121595 wurden.
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| Name | Unternehmen | Katalognummer | Kommentare |
|---|---|---|---|
| 10 mL "Reservoir-Spritze" | Fisher Scientific | 14-955-459 | |
| 150 mL Einweg-Vakuumfilter, .2 & micro; m, PES | Corning | 431153 | |
| Heizblock 20 x 12 mm | Corning | 480122 | |
| 3-Wege-Absperrhahn | Braun Medical Inc. | ||
| 3 x 1 Objektträger aus Milchglas | VWR | 48312-004 | |
| 40x Wassertauchobjektiv | Nikon | MRD07420 | |
| Calciumchlorid-Dihydrat | Sigma-Aldrich | C3306 | |
| Grobmanipulator | Narishige | MN-4 | |
| Kundenspezifische Mikrospritzenpumpe | Universität von Oregon | N/A | Hergestellt von der Maschinenwerkstatt der University of Oregon (tsa.uoregon@gmail.com). Eine im Handel erhältliche Alternative ist unten aufgeführt. |
| Dumont #5 Pinzette | Fine Science Tools | 1129500 | |
| Eclipse FN1 "Transplantationsmikroskop" | Nikon | N/A | |
| Elektrodengriff | World Precision Instruments | 5444 | |
| Federsterile chirurgische Klinge, #11 | VWR | 21899-530 | |
| Feiner Mikromanipulator, Dreiachsig Ölhydraulik | Narishige | MMO-203 | |
| HEPES pH 7,2 | Sigma-Aldrich | H3375-100G | |
| Hochpräziser #3 Style Skalpellgriff | Fisher Scientific | 12-000-163 | |
| Kimble Einweg-Borosilikat-Pasteur-Pipette, breite Spitze, 5,75 Zoll | DWK Life Sciences | 63A53WT | |
| KIMBLE Chromatographie-Adapter | DWK Life Sciences | 420408-0000 | |
| Kimwipes | Kimberly-Clark Professional | 34120 | |
| Light Mineral | Oil Sigma-Aldrich | M3516-1L | |
| LSE digitale Trockenbadheizung, 1 Block, 120 | V Corning | 6875SB | |
| Manuelle Mikrospritzenpumpe | World Precision Instruments | MMP | Kommerzielle Alternative zur kundenspezifischen Mikrospritzenpumpe |
| Mikroelektrodenhalter | World Precision Instruments | MPH310 | |
| MicroFil Pipettenfüller | World Precision Instruments | MF28G67-5 | |
| Nagellack | Elektronenmikroskopie Sciences | 72180 | |
| Nukleasefreies Wasser | VWR | 82007-334 | |
| P-97 Flammender/Brauner Mikropipettenabzieher | Sutter Instruments | P-97 | |
| Penicillin-Streptomycin | Sigma-Aldrich | p4458-100ML | 5.000 Einheiten Penicillin und 5 mg Streptomycin/ml |
| Pipettenpumpe 10 mL | Bel-Art | 37898-0000 | |
| Kaliumchlorid | Sigma-Aldrich | P3911 | |
| Professioneller Sekundenkleber | Loctite | LOC1365882 | |
| Reagenzgläser | aus Polystyrol mit rundem BodenFalcon | 352054 | |
| Natriumchlorid | Sigma-Aldrich | S9888 | |
| Tischmikrometer | Meiji Techno America | MA285 | |
| Spritzen ohne Nadel, 50 mL | BD Medical | 309635 | |
| Tricain Methanosulfonat | Syndel USA | SYNCMGAUS03 | |
| Trilene XL glattes Casting Angelschnur | Berkley | XLFS6-15 | |
| Schlauch, Polyethylen Nr. 205 | BD Medical | 427445 | |
| UltraPure Low Melting Point Agarose | Invitrogen | 16520050 | |
| Wiretrol II kalibrierte Mikropipetten | Drummond | 50002010 |
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