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Methodenartikel

Sexuelle Kreuzungen mit dem Mucoromyceten Phycomyces blakesleeanus

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DOI:

10.3791/67790

6. Juni 2025

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier stellen wir ein grundlegendes Protokoll für die Induktion der Paarung von P. blakesleeanus vor.

Zusammenfassung

Phycomyces blakesleeanus, ein filamentöser Pilz aus dem Stamm der Mucoromycota, zeichnet sich durch seine bemerkenswerte Fähigkeit zur Umweltwahrnehmung und adaptiven Reaktionen aus. Während frühere Arbeiten gezeigt haben, dass Umweltreize wie Schwerkraft, Licht, Feuchtigkeit und Nährstoffverfügbarkeit die Wachstumsdynamik und die Fortpflanzungsstrategien beeinflussen, bleiben die zugrunde liegenden Mechanismen ein Schwerpunkt der Forschung. Umwelteinflüsse lösen sexuelle oder asexuelle Fortpflanzung aus. Die sexuelle Fortpflanzung beginnt mit der Pheromonsignalisierung, die eine Hyphen-Chemoattraktion auslöst und schließlich zu seriellen morphologischen Übergängen führt, die in der Bildung einer Zygospore gipfeln.

In einer Laborumgebung führen Kreuzungen von P. blakesleeanus zu komplementären Myzelien, die den Sexualzyklus in verschiedenen Stadien durchlaufen. Unsere Arbeit zielt darauf ab, zu testen, ob Umweltreize eine Paarung über das Myzel von P. blakesleeanus auslösen können. Kreuzungen von P. blakesleeanu s,die auf nährstoffbegrenzten Medien gezüchtet werden, werden nährstoffbegrenztem Agar unterzogen, um eine sexuelle Reaktion in Übereinstimmung mit dem Nährstoffmangel auszulösen. Die erfolgreiche Auslösung der Paarung bei P. blakesleeanus wird zukünftige Studien erleichtern, die eine große Menge an sexuell reproduzierenden Myzelien in bestimmten Stadien erfordern. Das Ergebnis dieser Forschung wird unser Verständnis darüber, wie die Fortpflanzungsmechanismen von P. blakesleeanus durch Umweltfaktoren beeinflusst werden, weiter verbessern und zu einer breiteren Wissensbasis über die sexuelle Fortpflanzung von filamentösen Pilzen beitragen.

Einleitung

Die Induktion der Paarung in Pilzsystemen unter Laborbedingungen hat das Verständnis der eukaryotischen Genetik, Zellbiologie, Evolutionsbiologie und Biotechnologie vorangetrieben. Die dikarischen Pilze, insbesondere die Ascomycota, verfügen über das umfangreichste Wissen über die Paarungsinduktion in einer Laborumgebung1. Interessanterweise ist der erste Pilz, bei dem die sexuelle Fortpflanzung vorgeschlagen wurde, Syzygites megalocarpus, kein Mitglied der Ascomycota, sondern ein Mitglied des Stammes Mucoromycota2. Der Stamm Mucoromycota ist eine frühe divergierende Gruppe, die früher als "Zygomycota" klassifiziert wurde, heute aber als Schwester der dikaryischen Linien gilt 3,4. Die Mucoromycota sind zusammen mit Zoopagomycota evolutionär bedeutsam, da diese Stämme den Übergang von Pilzen zu terrestrischen Ökosystemen darstellen 4,5. Wie andere Pilze auch, verwenden die Mukoromyceten asexuelle und sexuelle Fortpflanzungsstrategien als Reaktion auf ihre Umwelt 3,6. Unter nährstoffarmen Bedingungen beginnen Mukoromyceten den Sexualzyklus6. Mukoromyceten weisen sowohl homothallische als auch heterothallische Paarungsmechanismen auf, wobei die Kompatibilität durch die Paarungstyp-Gene sexM und sexP bestimmt wird, die als (-) bzw. (+) bezeichnet werden 7,8,9.

Blakeslee10 betonte die Empfindlichkeit des Mukoromyceten-Sexualzyklus gegenüber äußeren Bedingungen und stellte fest, dass Feuchtigkeit für ihre Bildung entscheidend ist und dass die Nährstoffverfügbarkeit im Substrat eine wichtige Rolle spielt. Komplementäre Paarungstypen beginnen den Sexualzyklus durch kooperative Synthese von Trisporinsäuren (TA) unter Verwendung von Beta-Carotin als Vorläufer 11,12,13. Nach dem Nachweis von TA verdicken sich die reagierenden vegetativen Hyphen und werden zu stark verzweigten Zygophoren 14,15,16. Die Zygophoren setzen die Produktion von TA fort und ziehen sich gegenseitig chemoan. In P. blakesleeanus differenzieren sich Zygophoren innerhalb des Substrats und sind auf festen Agarmedien nicht ohne weiteres sichtbar17. Bei Kontakt verflechten sich die Zygophoren und werden zu Zygophoren in der Luft.

Im weiteren Verlauf des Sexualzyklus heften sich die Spitzen der Zygophoren an, und die Mitte der Zellen schiebt sich heraus, um eine ringförmige Struktur mit einer koralloiden Schwellung an der Basis zu bilden, die den Übergang zum Progametangium vervollständigt. Die Spitzen der Zellen, die das Progametangium bilden, beginnen zu verschmelzen und entwickeln sich zum Gametangium. Im Gametangia-Stadium weisen die Zygophoren dornenartige Verzierungen auf. Die Zellwand an den Spitzen löst sich auf und es erscheinen Adventivsepten, die den Bereich abgrenzen, in dem sich die Zygospore bilden wird, und die Zygophoren wirken als zangenartige Suspensoren18. Die Zygospore wird pigmentiert, wenn sich ihre Zellwand verdickt und sie zusätzliche dornenartige Verzierungen erhält17,18. Sobald sich die Zygospore gebildet hat, tritt sie in eine Ruhephase ein, bevor sie den Wachstumszyklus wieder aufnimmt.

Phycomyces blakesleeanus ist ein heterothallischer Mukoromycet, der sich durch seine großen Zellen und umweltrelevanten Sporangiophoren auszeichnet 6,8,18. Dieser Organismus lässt sich leicht im Labor kultivieren und die Teile des Sexualzyklus, die zur Bildung von Zygosporen führen, können innerhalb von 8-10 Tagen beobachtet werden. Als Modell wurde P. blakesleeanus auf seine Fähigkeit untersucht, Licht in seiner Umgebung wahrzunehmen17,19. Die einfache Kultivierung und die Fähigkeit, Paarungen zu induzieren, machten sie auch zu einem idealen Modell, um den Mechanismus hinter ihrer Fähigkeit, Licht wahrzunehmen, zu untersuchen20; Diese Ergebnisse unterstreichen auch die evolutionäre Konservierung der Lichtsensormechanismen in Pilzen. Bei P. blakesleeanus wurde gezeigt, dass Licht die sexuelle Fortpflanzung über diese konservierten lichtempfindlichen Proteine hemmt21. Neuere evolutionäre Entwicklungsstudien haben versucht zu verstehen, welche Gene zur Zelldifferenzierung während des Sexualzyklus von P. blakesleeanus beitragen6. Die Korrelation der Morphogenese mit bestimmten Genen würde erfordern, dass ausreichend Gewebe derselben Zelltypen isoliert wird, um Genexpressionsstudien durchführen zu können.

Während Protokolle zur Induktion der Paarung von P. blakesleeanus in einer Laborumgebung bereits beschrieben wurden, erwähnen einige nur die Art des zu verwendenden Mediums und die relevanten Stämme18. Einige Protokollbeschreibungen enthalten keine spezifische Medienformulierung, beschreiben jedoch, wo mutmaßliche komplementäre Stecktypen auf einer Platte10 positioniert werden müssen. Neuere Protokolle ermöglichen eine erhöhte Produktion von Zygosporen, indem entweder Sporen jedes Paarungstyps gemischt und mit der gemischten Sporensuspension21 geimpft werden, oder indem die Paarungstypen in einiger Entfernung voneinander platziert und die Kultur 20 Tage lang inkubiert wird22. Diese Ansätze sind nützlich für die Erzeugung großer differenzierter Zellen, insbesondere Zygosporen, sind aber möglicherweise nicht geeignet für die Beobachtung eines Entwicklungszeitverlaufs oder die Auswahl sexueller Strukturen, die sich vor den Zygosporen für die Einzelzelltranskriptomik bilden. Andere Arbeiten haben sich damit befasst, indem sie komplementäre Paarungstypen mit Abstand voneinander auf festen Medien platzierten, um die Beobachtung serieller morphologischer Übergänge zu Beginn des Sexualzyklus zu ermöglichen 6,22,23. Wie andere Pilze auch, dehnt sich das Myzel von P. blakesleeanus radial aus24,25. Wenn also komplementäre Paarungstypen auf derselben Platte gezüchtet werden, kommen verschiedene Teile ihres Myzels zu unterschiedlichen Zeiten in Kontakt. Da der Kontakt zwischen Myzelien zu einem der ersten Schritte im Sexualzyklus von P. blakesleeanus gehört, bedeutet dies, dass sich verschiedene Teile des interagierenden Myzels in unterschiedlichen Stadien des Sexualzyklus befinden. Diese Asynchronität könnte sich auf das Ergebnis einer Genexpressionsstudie auswirken, so dass es schwierig wäre, die Rolle eines Gens einer bestimmten Struktur zuzuschreiben, wenn differenzierte Zelltypen gemischt werden und wenn sie unterschiedliche Genexpressionsprogramme haben.

Neben dem Wert von P. blakesleeanus als Modell für die Untersuchung von Genen, die an der Morphogenese während des Sexualzyklus beteiligt sind, machen sein kräftiges Wachstum und seine Fähigkeit, sich innerhalb weniger Tage zu differenzieren, ihn zu einem idealen Pilz für die Ausbildung von Studenten, die sich für früh divergierende filamentöse Pilze interessieren, und für den Einsatz in einem Bachelor-Klassenzimmer, um mehr über die Vielfalt von Pilzen und ihre Entwicklungsprozesse zu erfahren. Das hier vorgestellte Protokoll verwendet drei Konzentrationen von zwei verschiedenen Arten von Medien, um die Wirkung der Nährstoffverfügbarkeit auf das Aussehen des Myzels, die Induktion der Paarung und die Anreicherung für bestimmte Sexualstrukturen zu demonstrieren, entweder zur Quantifizierung, zur Beobachtung oder zur potenziellen Einzelzell-Transkriptomik.

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Protokoll

1. Vorbereitung der Medien

  1. Suspendieren Sie pulverisiertes Maismehl-Agar (CMA) oder Kartoffel-Dextrose-Agar (PDA) in entionisiertem Wasser. Befolgen Sie für 100 % CMA oder PDA die Anweisungen des Herstellers und suspendieren Sie 17 g CMA in 1 l entionisiertem Wasser oder 39 g PDA in 1 l entionisiertem Wasser. Für N% CMA oder PDA suspendieren Sie 1/N der vom Hersteller empfohlenen Menge und ergänzen Sie mit zusätzlichem Agar, um eine Agarkonzentration von 7,5 % (w/v) zu erreichen.
    HINWEIS: Optionaler Schritt: Fügen Sie vor dem Autoklavieren 25 μg/ml Chloramphenicol hinzu, wenn eine bakterielle Kontamination ein Problem darstellt.
  2. Sterilisieren Sie das Medium im Autoklaven bei 121 °C für 15 Minuten.
  3. Kühlen Sie das Medium auf ~60 °C ab, indem Sie es 30 Minuten lang in ein auf 60 °C eingestelltes Wasserbad legen.
    HINWEIS: Wenn die warme Flasche mit dem Medium 6 s lang ohne bis gar keine Beschwerden gehalten werden kann, ist sie bereit zum Ausgießen.
  4. Gießen Sie Platten unter aseptischen Bedingungen in einer Laminar-Flow-Haube oder einer biologischen Sicherheitswerkbank. Kippen Sie die Flasche mit dem Medium über eine offene, leere Petrischale und gießen Sie nur so viel ein, dass der Boden vollständig bedeckt ist.
    1. Alternativ können Sie eine serologische Glaspipette verwenden und 20 ml Medium in jede Platte pipettieren.
      HINWEIS: Dieser Ansatz erhöht die Zeit, in der die Medienflasche eine niedrigere Temperatur hat, und erhöht das Risiko, dass sich der Agar vorzeitig verfestigt.
  5. Lassen Sie die Medien wieder festigen. Lagern Sie die Platten bei 4 °C, wenn sie nicht sofort verwendet werden.

2. Aufbereitung von Pilzsporen oder -gewebe

  1. Besorgen Sie sich Kulturen jedes Paarungstyps von P. blakesleeanus (z. B. NRRL 1555 (-), NRRL 1554 (+), NRRL 1464 (-) und NRRL 1465 (+)). Um Kreuzungen mit Sporen zu impfen, züchten Sie zuerst jeden Paarungstyp in Reinkultur auf 100% CMA oder PDA
  2. Schneiden Sie einen Teil des hochmodernen Myzels aus vorhandenen Kulturen ab und legen Sie das herausgeschnittene Myzel auf eine 100% CMA/PDA-Platte. Inkubieren Sie Reinkulturen 1 Woche lang bei 27 °C unter einem 12-stündigen Lichtzyklus.
  3. Sobald Sporangiophoren vorhanden sind, wird eine sporulierende Reinkultur mit 0,01 % Tween 20 in sterilisiertem, deionisiertem Wasser unter Verwendung einer aseptischen Technik geflutet. Ziehen Sie mit einer P1000-Mikropipette 1,0 ml der Tween-20-Sporen-Mischung von der Platte in ein Mikrozentrifugenröhrchen.
  4. In einer Minizentrifuge 30 s zentrifugieren, dann den Überstand dekantieren.
    1. Wenn mehr Sporen benötigt werden, geben Sie weiterhin 1,0 mL der Tween 20-Sporenmischung in dasselbe Mikrozentrifugenröhrchen und wiederholen Sie Schritt 2.4. Nachdem Sie eine geeignete Menge an Sporen erhalten haben, dekantieren Sie den Überstand und ersetzen Sie ihn durch 500 μl steriles deionisiertes Wasser.
    2. Optional: Verwenden Sie ein Hämazytometer, um die Konzentration der Sporen abzuschätzen, das Aufschluss darüber gibt, ob mehr Wasser hinzugefügt werden muss oder ob die Sporen erneut zentrifugiert werden müssen.
  5. Alternativ inokulieren Sie die Kreuzungen mit hochmodernen Myzelien aus den Reinkulturen.
    1. Verwenden Sie eine sterilisierte Rasierklinge oder einen Korklochbohrer, um das Gewebe herauszuschneiden und das Inokulum sofort zu plattieren.
  6. Richten Sie die Kreuze als 2-Wege-Kreuze, 4-Wege-Kreuze oder 8-Wege-Kreuze ein (Abbildung 1).
    HINWEIS: Wenn Kreuze für transkriptomische Arbeiten eingerichtet werden, wird empfohlen, 1-2 zusätzliche Platten pro Bedingung/Medium einzurichten, die als Indikatorplatten dienen. Indikatorplatten ermöglichen es den Forschern, die Lichtexposition von Versuchsplatten zu begrenzen, da Licht die sexuelle Fortpflanzung bei P. blakesleeanus hemmt.
    1. Für ein 2-Wege-Kreuz platzieren Sie komplementäre Gegenstücke einander (Abbildung 1A).
      1. Das Myzel des Paarungstyps (-), NRRL 1555 oder NRRL 1464, mindestens 1 cm vom Rand einer Petrischale entfernt auf PDA oder CMA platzieren.
      2. Auf dieselbe Platte, gegenüber der Stelle, an der der (-) Gegenstecker platziert wurde, und 1 cm vom Rand der Petrischale entfernt, den (+) Gegentyp NRRL 1554 oder NRRL1465 platzieren (Abbildung 1A).
        HINWEIS: Der Abstand zwischen komplementären Paarungsarten beeinflusst die Größe des Gewebes, das am Sexualzyklus beteiligt ist. Paarungsarten, die weiter auseinander liegen, ermöglichen es dem Myzel, sich stärker auszudehnen, was die Anzahl der sexuellen Interaktionen zwischen den beiden Partnern erhöht.
    2. Für ein 4-Wege-Kreuz platzieren Sie ähnliche Gegenstücktypen gegenüber, aber neben einem komplementären Gegenstücktyp (Abbildung 1B).
      1. Platzieren Sie die Sporen oder Myzelien der (-) Paarungstypen NRRL 1555 und NRRL 1464 mindestens 1 cm vom Rand einer Petrischale entfernt auf PDA oder CMA.
      2. Wählen Sie auf derselben Platte einen Ort zwischen den beiden (-) Paarungstypen und mindestens 1 cm vom Rand der Platte entfernt und beimpfen Sie die Stelle mit Sporen oder Myzelien des (+) Paarungstyps NRRL 1554 oder 1465.
      3. Auf dieselbe Platte, gegenüber der Stelle, an der der erste (+) Gegentyp geimpft wurde, und mindestens 1 cm von der Platte entfernt, den anderen (+) Gegentyp platzieren.
    3. Für ein 8-Wege-Kreuz wechseln Sie die Paarungstypen entlang der Peripherie der Petrischale ab, wobei von jedem Paarungstyp vier vorhanden sind (Abbildung 1C).
  7. Verschließen Sie die Platten nach dem Impfen mit Parafilm oder (lassen Sie sie unversiegelt) und legen Sie sie in einen zweiten Behälter, bevor Sie sie bei 22 °C im Dunkeln inkubieren. Beobachten Sie die Platten täglich auf Anzeichen einer Paarung, machen Sie Fotos unter der Platte und verfolgen Sie die Myzelien, während die Kulturen wachsen.
    HINWEIS: Nach 24 Stunden nach der Impfung ist damit zu rechnen, dass sich das Myzel bei allen Medientypen ausbreitet, aber es ist unwahrscheinlich, dass Personen zu diesem Zeitpunkt in Kontakt kommen.
  8. Abhängig vom Medientyp (PDA oder CMA) und der Formulierung (25 %, 50 %, 100 %), wenn das Myzel Kontakt aufzunehmen beginnt, untersuchen Sie die Myzelien komplementärer Paarungstypen, die in Kontakt stehen, unter einem Präparierbereich auf Anzeichen einer Paarung. Machen Sie Fotos von interagierenden Myzelien mit einer Kamera oder einem Smartphone, das am Präparierfernrohr montiert ist.
    1. Erfassen Sie Bilder von Myzelien und fügen Sie sie zusammen (z. B. mit der Panorama Stitcher-Anwendung). Verwenden Sie ImageJ, um die Fläche des Myzels zu schätzen (siehe Online-Tutorials).

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Ergebnisse

Nach einer 4-Wege-Kreuzung variierte jeder Stamm leicht in seiner Wachstumsrate, die durch die Veränderung der Fläche des Myzels bestimmt wurde (Abbildung 2). Obwohl NRRL 1555 statistisch nicht signifikant ist, zeigte es eine schnellere Flächenänderung, wenn es auf 25 % CMA, 25 % PDA oder 100 % PDA plattiert wurde. In ähnlicher Weise hatte NRRL 1465 eine höhere Flächenveränderung, wenn sie auf 50% PDA oder CMA angebaut wurde. NRRL 1464 hatte die schnellste Flächenzunahme, wenn sie auf 100 % ...

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Diskussion

Ein einfaches Protokoll zur Induktion der sexuellen Fortpflanzung bei P. blakesleeanus in einer Laborumgebung wird hier vorgestellt. Eine der wichtigsten Überlegungen für dieses Protokoll ist die Nährstoffbeschränkung. Es wird angenommen, dass Pilze die sexuelle Fortpflanzung als Reaktion auf raue Umweltbedingungen wie Nährstoffbeschränkung kooptierten 6,28,29,30,31,32.

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Offenlegungen

Die Autoren haben keine Interessenkonflikte anzugeben.

Danksagungen

Wir danken dem Colorado College Natural Sciences Executive Committee, dem Organismal Biology and Ecology Department und dem Hevey Family Fund for Student Research für die Finanzierung dieser Arbeit. Wir danken auch Alice Keller und Tia Hutchens für ihre technische Unterstützung.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Agar PulverThermoFisher3453PK
ChloramphenicolFisherSciBP904-100
MaismehlAgar Carolina742460
Panorama StitcherApple App Store
Phycomyces blakesleeanus (-) NRRL 1555United States Department of Agriculture - Agricultural Research Service1555USDA-ARS versendet nur an akademische Forscher; Alternativen siehe unten
Phycomyces blakesleeanus (-) NRRL 1564United States Department of Agriculture - Agricultural Research Service1564USDA-ARS versendet nur an akademische Forscher; Alternativen siehe unten
Phycomyces blakesleeanus (-) Tube CultureCarolina Biological Supply156183Kultur auf Bildungsniveau zum Kauf erhältlich; NRRL 1555
Phycomyces blakesleeanus (+) NRRL 1554United States Department of Agriculture - Agricultural Research Service1554USDA-ARS versendet nur an akademische Forscher; Alternativen finden Sie
Phycomyces blakesleeanus (+) NRRL 1565United States Department of Agriculture - Agricultural Research Service1565USDA-ARS versendet nur an akademische Forscher; Alternativen finden Sie unten
Phycomyces blakesleeanus (+) Tube CultureCarolina156182Kultur in Bildungsqualität zum Kauf erhältlich; NRRL 1554
Kartoffel-Dextrose-AgarFisherSciDF0013-17-6
Sprout Plus Mini-ZentrifugeHeathrow ScientificSKU 120610
Tween 20Sigma-AldrichP6585-10ML

Referenzen

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Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

Filamentöse Pilzesexuelle FortpflanzungPaarungstypZygosporenbildungnährstofflimitierte Medienhyphale ChemoattraktionKartoffel-Dextrose-AgarGenexpression